Whales are marine mammals that are fully adapted to aquatic environment. Whales breathe by lungs so they require adaptive system to low oxygen concentration (hypoxia) while deep and prolonged diving. However, the study for the molecular mechanism underlying cetacean adaptation to hypoxia has been limited. Hypoxia-inducible factor (HIF) is the central transcription factor that regulates hypoxia-related gene expression. Here we identified HIF-binding sites in whale genome by phylogenetic footprinting and analyzed HIF-target genes to understand how whales cope with hypoxia. By comparison with the HIF-target genes of terrestrial mammals, it was suggested that whales may retain unique adaptation mechanisms to hypoxia.
Osteocytes may function as mechanotransducers by regulating local osteoclastogenesis. Reduced availability of oxygen, i.e. hypoxia, could occur during disuse, bone development, and fracture. Receptor activator of nuclear factor-${\kappa}B$ ligand (RANKL) is an osteoblast/stromal cell derived essential factor for osteoclastogenesis. The hypoxia induced osteoclastogenesis via increased RANKL expression in osteoblasts was demonstrated. Hypoxic regulation of gene expression generally involves activation of the hypoxia-inducible factor (HIF) transcription pathway. In the present study, we investigated whether hypoxia regulates RANKL expression in murine osteocytes and HIF-$1{\alpha}$ mediates hypoxia-induced RANKL expression by transactivating RANKL promoter, to elucidate the role of osteocyte in osteoclastogenesis in the context of hypoxic condition. The expression levels of RANKL mRNA and protein, as well as hypoxia inducible factor-$1{\alpha}$ (HIF-$1{\alpha}$) protein, were significantly increased in hypoxic condition in MLO-Y4s. Constitutively active HIF-$1{\alpha}$ alone significantly increased the levels of RANKL expression in MLO-Y4s under normoxic conditions, whereas dominant negative HIF-$1{\alpha}$ blocked hypoxia-induced RANKL expression. To further explore to find if HIF-$1{\alpha}$ directly regulates RANKL transcription, a luciferase reporter assay was conducted. Hypoxia significantly increased RANKL promoter activity, whereas mutations of putative HIF-$1{\alpha}$ binding elements in RANKL promoter prevented this hypoxia-induced RANKL promoter activity in MLO-Y4s. These results suggest that HIF-$1{\alpha}$ mediates hypoxia-induced up-regulation of RANKL expression, and that in osteocytes of mechanically unloaded bone, hypoxia enhances osteoclastogenesis, at least in part, via an increased RANKL expression in osteocytes.
Our previous results showed that hypoxia inducible factor-1 (HIF-1) activated estrogen receptor (ER) in the absence of ligand. In this study, we have studied the effect ER overexpression on the activation of HIF-1. ER overexpression induced transcription activation of hypoxia response element driven luciferase and vascular endothelial growth factor. As a negative control, the effect of ER on androgen receptor response element was used. Our result indicate that the two ER$\alpha$ and HIF-1 signaling pathways shares part of the activation pathway.
목적: 저산소증은 방사선 감수성을 현저히 감소시키며, 이에 대한 적응 반응에서 hypoxia-inducible factor 1 $\alpha$(HIF-1 u$\alpha$가 중요한 역할을 하고 있다. HIF-1 $\alpha$의 발현과 방사선 감수성과의 상관 관계를 알아보고자 하였다. 대상 및 방법: 쥐의 간암 세포주인 hepalclc7 세포와 HIF-1 $\beta$가 결손되어 HIF-1 $\alpha$의 기능이 억제된 hepaIC4 세포를 사용했다 저산소 유사 물질인 desferrioxamine (DFX)을 전처치하고 6시간 뒤에 방사선조사를 하여 western blot으로 HIF-1 $\alpha$ 발현을 조사하였다. Apoptosis는 DNA 분절화, propidium iodide 핵염색, 그리고 apoptotic cell death detection ELISA kit를 이용하였다. MTT assay법으로 방사선 감수성을 측정하고 SF2$_{2}$ SF$_{8}$, 그리고 mean inactivation dose (MID)를 산출하여 통계적 분석을 하였다. 결과: Hepalclc7 세포에서는 DFX 전처치를 한 경우 방사선에 의해 HIF-1 $\alpha$의 발현이 증가했으나, hepalC4 세포 주에서는 변화가 없었다 Hepa1C4 세포의 방사선 감수성은 DFX처리에 따른 영향이 없었으나 hepalclc7 세포의 방사선 감수성은 DFX를 전처치했을 때 유의하게 감소하였다. 결론: 저산소 유사 물질인 DFX에 의해 유도된 HIF-1 $\alpha$가 쥐의 간암 세포주에서 apoptosis와 방사선 감수성을 감소시켰다 이러한 결과는 종괴내의 저산소 세포에서 방사선에 의해 HIF-1 $\alpha$가 유도되고 이로 인해 저산소 세포에서 방사선 감수성을 저하시키는 것으로 생각되었다.
Some fish live in aquatic environments with low or temporally changing $O_2$ availability. Variation in dissolved oxygen (DO) levels requires behavioral, physiological, and biochemical adaptations to ensure the uptake of sufficient $O_2$. Several species are relatively well adapted to tolerate low $O_2$ partial pressures (hypoxia). The medaka (Oryzias dancena ) is an important model organism for biomedical research that shows remarkable tolerance to hypoxia. We investigated the regulation and role of hypoxia-inducible factor-1 (HIF-$1{\alpha}$) as a general hypoxia-response gene and stanniocalcin-2 (STC2), which is one of the genes regulated by HIF-$1{\alpha}$ in mammals under hypoxia. We subjected adult male medaka to the following three acute hypoxia regimes: 1, 24, and 72 h at DO = $1.8{\pm}0.5$ ppm. The changes in STC2 and HIF-$1{\alpha}$ mRNA were monitored using quantitative real-time reverse-transcription PCR. We found strong upregulation of HIF-$1{\alpha}$ mRNA in the livers of fish exposed to hypoxia. Hypoxia rapidly upregulated STC-2 mRNA expression in muscle, but not in the brain, gills, liver, or intestine. Therefore, unlike in mammals, hypoxia might regulate O. dancena STC-2 expression in an HIF-$1{\alpha}$-independent manner.
Ruthenborg, Robin J.;Ban, Jae-Jun;Wazir, Anum;Takeda, Norihiko;Kim, Jung-Whan
Molecules and Cells
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제37권9호
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pp.637-643
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2014
Wound healing is a complex multi-step process that requires spatial and temporal orchestration of cellular and non-cellular components. Hypoxia is one of the prominent microenvironmental factors in tissue injury and wound healing. Hypoxic responses, mainly mediated by a master transcription factor of oxygen homeostasis, hypoxia-inducible factor-1 (HIF-1), have been shown to be critically involved in virtually all processes of wound healing and remodeling. Yet, mechanisms underlying hypoxic regulation of wound healing are still poorly understood. Better understanding of how the wound healing process is regulated by the hypoxic microenvironment and HIF-1 signaling pathway will provide insight into the development of a novel therapeutic strategy for impaired wound healing conditions such as diabetic wound and fibrosis. In this review, we will discuss recent studies illuminating the roles of HIF-1 in physiologic and pathologic wound repair and further, the therapeutic potentials of HIF-1 stabilization or inhibition.
Hypoxia-inducible factor-$1{\alpha}/{\beta}$ (HIF-$1{\alpha}/{\beta}$) is a heterodimeric transcriptional activator that mediates gene expression in response to hypoxia. HIF-$1{\alpha}$ has been noted as an effective therapeutic target for ischemic diseases such as myocardiac infarction, stroke and cancer. By using a yeast two-hybrid system and a random peptide library, we found a 16-mer peptide named F29 that directly interacts with the bHLH-PAS domain of HIF-$1{\alpha}$. We found that F29 facilitates the interaction of the HIF-$1{\alpha/\beta}$ heterodimer with its target DNA sequence, hypoxia-responsive element (HRE). The transient transfection of an F29-expressing plasmid increases the expression of both an HRE-driven luciferase gene and the endogenous HIF-1 target gene, vascular endothelial growth factor (VEGF). Taken together, we conclude that F29 increases the DNA-binding ability of HIF-$1{\alpha}$, leading to increased expression of its target gene VEGF. Our results suggest that F29 can be a lead compound that directly targets HIF-$1{\alpha}$ and increases its activity.
Hypoxia-inducible factor $1{\alpha}\;(HIF1{\alpha})$ is a transcription factor that plays a key role in the adaptation of cells to low oxygen stress and oxygen homeostasis. The oxygen-dependent degradation (ODD) domain of $HIF1{\alpha}$ is responsible for the negative regulation of $HIF1{\alpha}$ in normoxia. The interactions of the $HIF1{\alpha}$ ODD domain with partner proteins such as von Hippel-Lindau tumor suppressor (pVHL) and p53 are mediated by two sequence motifs, the N- and C-terminal ODD(NODD and CODD). Multiple sequence alignment with $HIF1{\alpha}$ homologs from human, monkey, pig, rat, mouse, chicken, frog, and zebrafish has demonstrated that the NODD and CODD motifs have noticeably high conservation of the primary sequence across different species and isoforms. In this study, we carried out molecular dynamics simulation of the structure of the $HIF1{\alpha}$ CODD motif in complex with the p53 DNA-binding domain (DBD). The structure reveals specific functional roles of highly conserved residues in the CODD sequence motif of $HIF1{\alpha}$ for the recognition of p53.
Hypoxia is a pathophysiological condition that occurs during injury, ischemia, and stroke. Hypoxic stress induces the expression of genes associated with increased energy flux, including the glucose transporters Glutl and Glut3, several glycolytic enzymes, nitric oxide synthase, erythropoietin and vascular endothelial growth factor. Induction of these genes is mediated by a common basic helix-loop-helix PAS transcription complex, the hypoxia-inducible factor-l${\alpha}$ (HIF-1${\alpha}$)/ aryl hydrocarbon receptor nuclear translocator (ARNT). Insulin plays a central role in regulating metabolic pathways associated with energy storage and utilization. It triggers the conversion of glucose into glycogen and triglycerides and inhibits gluconeogenesis. Insulin also induced hypoxia-induced genes. However the underlying mechanism is unestablished. Here, we study the possibility that transcription factor HIF-1${\alpha}$ is involved in insulin-induced gene expression. We investigate the mechanism that regulates hypoxia-inducible gene expression In response to insulin We demonstrate that insulin increases the transcription of hypoxia- inducible gene. Insulin-induced transcription is not detected in Arnt defective cell lines. Under hypoxic condition, HIF- l${\alpha}$ stabilizes but does not under insulin treatment. Insulin-induced gene expression is inhibited by presence of PI-3 kinase inhibitor and Akt dominant negative mutant, whereas hypoxia-induced gene expression is not. ROS inhibitor differently affects insulin-induced gene expressions and hypoxia-induced gene expressions. Our results demonstrate that insulin also regulates hypoxia-inducible gene expression and this process is dependent on Arnt. However we suggest HIF-l${\alpha}$ is not involved insulin-induced gene expression and insulin- and hypoxia- induces same target genes via different signaling pathway.
Receptor activator of nuclear factor-${\kappa}B$ ligand (RANKL) is an osteoblast/stromal cell-derived essential factor for osteoclastogenesis. During endochondral bone formation, hypertrophic chondrocytes calcify cartilage matrix that is subsequently resorbed by osteoclasts in order to be replaced by new bone. Hypoxia-induced upregulation of RANKL expression has been previously demonstrated in an in vitro system using osteoblasts; however, the involved mechanism remains unclear in chondrocytes. In the present study, we investigated whether hypoxia regulates RANKL expression in ATDC5 cells, a murine chondrogenic cell line, and hypoxia-inducible factor-$1{\alpha}$ (HIF-$1{\alpha}$) mediates hypoxia-induced RANKL expression by transactivating the RANKL promoter. The expression levels of RANKL mRNA and protein, as well as HIF-$1{\alpha}$ protein, were significantly increased in ATDC5 cells under hypoxic condition. Constitutively active HIF-$1{\alpha}$ alone significantly increased the levels of RANKL expression under normoxic conditions, whereas dominant negative HIF-$1{\alpha}$ reduced hypoxia-induced RANKL expression. HIF-$1{\alpha}$ increased RANKL promoter reporter activity in a HIF-$1{\alpha}$ binding element-dependent manner in ATDC5 cells. Hypoxia-induced RANKL levels were much higher in differentiated ATDC5 cells, as compared to proliferating ATDC5 cells. These results suggested that under hypoxic conditions, HIF-$1{\alpha}$ mediates induction of RANKL expression in chondrocytes; in addition, hypoxia plays a role in osteoclastogenesis during endochondral bone formation, at least in part, through the induction of RANKL expression in hypertrophic chondrocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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