1. 본 연구에서는 공동배양 배지에 Agrobacterium 성장 억제물질인 silver nitrate를 첨가하고 변온과 여과지처리를 추가하여 공동배양 기간을 7일로 늘였으며, 또한 항산화 물질 3종을 공동배양 배지에 첨가하여 세포의 oxidative burst를 최소화함으로써 벼 형질전환효율을 높일 수 있었다. 또한 이 방법을 적용하여 형질전환이 어려운 품종을 대상으로도 형질전환 식물체를 작성할 수 있었다. 2. 벼 형질전환체의 70%에서 도입유전자 수가 1copy인 것으로 나타나, 적은 수의 유전자가 안정적으로 도입됨을 확인 하였다. 3. 이러한 결과를 바탕으로, 새로운 공동배양 방법을 사용하여 우수한 농업적 형질을 가진 벼 육종 소재 및 품종을 신속하게 개발할 수 있을 것으로 기대된다.
${\bullet}$ 국내 품종에 적합한 콩 형질전환 방법을 확립하기 위해 배축 절단 방법을 새롭게 개발하였으며 이 방법을 통해 목적 유전자가 콩 분열조직에 안정적으로 도입되고 선발 과정을 거쳐 형질전환 식물체를 작성할 수 있었다. ${\bullet}$ 콩 형질전환체의 도입유전자 copy 수는 1~2개이고 세대 진전에 따라 도입유전자가 안정적으로 유전되고 있음을 확인하였다. ${\bullet}$ 이러한 결과를 바탕으로 배축 절단 방법을 사용하여 우리나라 환경에 적합한 우수한 형질전환 콩 품종을 신속하게 개발할 수 있을 것으로 기대된다.
The objective of this study was to identify the major parameters controlling DNA delivery by particle bombardment to immature embryos of Chinese spring wheat (Triticum aestivum L.). Efficiency of DNA (uidA gene) delivery was assessed by transient GUS (${\beta}$-glucuronidase) expression in bombarded tissues. Of the parameters analyzed, acceleration pressure, bombardment distance, chamber vacuum pressure, bombardment times, osmotic conditioning of culture had a remarkable influence on transient gene expression. A bombardment procedure suitable for Chinese spring wheat cultivars was developed which allowed high-efficiency DNA delivery combined with reduced damage to target tissues. The high efficiency made the system practical for wheat genetic transformation research and accelerating wheat breeding programs.
Binary vectors, pBI-ActR1, pBI-ActF1 and pBSH-ActR1, were constructed using pGA642, the replication origin of pTi12 and the rice actin promoter. The sizes of pBI-ActR1, pBI-ActF1 and pBSH-ActR1 were 12.9 kb, 13.2 kb and 11.95 kb, respectively. These vectors containing a rice actin promoter followed by a GUS structural gene could induce stronly the expression of GUS gene in transformed rice cells. Rice explants from 3-4 day old seedlings after germinatin were cocultured with A. tumefaceins harboring pBI-ActR1, pBI-ActF1 or pBSH-ActR1, and then GUS expression in the explants was assayed. Transformation of rice explants by these binary vectors was tissue-specific, such that the meristematic regions of shoot apex, root and hypocotyl were transformed by these binary vectors.
Kim, Hyun A.;Utomo, Setyo Dwi;Kwon, Suk Yoon;Min, Sung Ran;Kim, Jin Seog;Yoo, Han Sang;Choi, Pil Son
Plant Biotechnology Reports
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제3권4호
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pp.277-283
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2009
One of the limitations to conducting maize Agrobacterium-mediated transformation using explants of immature zygotic embryos routinely is the availability of the explants. To produce immature embryos routinely and continuously requires a well-equipped greenhouse and laborious artificial pollination. To overcome this limitation, an Agrobacterium-mediated transformation system using explants of type II embryogenic calli was developed. Once the type II embryogenic calli are produced, they can be subcultured and/or proliferated conveniently. The objectives of this study were to demonstrate a stable Agrobacterium-mediated transformation of maize using explants of type II embryonic calli and to evaluate the efficiency of the protocol in order to develop herbicide-resistant maize. The type II embryogenic calli were inoculated with Agrobacterium tumefaciens strain C58C1 carrying binary vector pTF102, and then were subsequently cultured on the following media: co-cultivation medium for 1 day, delay medium for 7 days, selection medium for $4{\times}14$ days, regeneration medium, and finally on germination medium. The T-DNA of the vector carried two cassettes (Ubi promoter-EPSPs ORF-nos and 35S promoter-bar ORF-nos). The EPSPs conferred resistance to glyphosate and bar conferred resistance to phosphinothricin. The confirmation of stable transformation and the efficiency of transformation was based on the resistance to phosphinothricin indicated by the growth of putative transgenic calli on selection medium amended with $4mg\;1^{-1}$ phosphinothricin, northern blot analysis of bar gene, and leaf painting assay for detection of bar gene-based herbicide resistance. Northern blot analysis and leaf painting assay confirmed the expression of bar transgenes in the $R_1$ generation. The average transformation efficiency was 0.60%. Based on northern blot analysis and leaf painting assay, line 31 was selected as an elite line of maize resistant to herbicide.
An Agrobacterium tumefaciens LBA4404 (harboring antisense OMT gene)-mediated transformation method has been developed for poplar (P.nigra x maximowiczii) using prolonging co-cultivation time. Explants on LT (longterm) were induced transgenic calli one month earlier than those from ST (short-term) co-cultivation and remained healthier on LT than ST. With this approach, LT method reduced time to produce transgenic calli. Shoots were successfully regenerated from transgenic calli on SIM (Shoot Induction Medium) and rooted well on the basal medium spontaneously. The presence of antisense OMT gene was verified both by PCR and Southern analysis. Each transgenic poplar was phenotypically indishtinguishable when compared with controls for their growth pattern, leaf morphologies and xylem coloration.
Chung, Mi-Young;Kim, Min Bae;Chung, Yong Mo;Nou, Ill-Sup;Kim, Chang Kil
Journal of Plant Biotechnology
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제43권2호
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pp.255-260
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2016
This research was conducted to improve the cold tolerance of the gerbera cv. Gold Eye by introduction of the Arabidopsis $Ca^{2+}/H^+$ antiporter gene (CAX1) via Agrobacterium-mediated transformation. Prior to genetic transformation, we optimized a combination of plant growth regulators; $1.0mgl^{-1}$ 6-Benzyladenine (BA) and $0.1mgl^{-1}$3-indole-acetic acid (IAA) were found to lead to proper in vitro shoot regeneration from petiole explants. In addition, $50mgl^{-1}$ kanamycin was determined to be the minimal concentration useful for selection of putative transgenic plants. In this study, transgenic gerbera expressing the Arabidopsis $Ca^{2+}/H^+$ antiporter gene (CAX1) were obtained using the optimized concentrations. We expect that introduction of the gene to the cultivar will improve cold tolerance, which will be important in the winter months.
Kim, Hyun-Soon;Jeon, Jae-Heung;Kim, Cheol-Jung;Hyouk Joung
Journal of Plant Biotechnology
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제4권4호
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pp.155-161
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2002
The HCV gene was expressed in potato plants under the control of the constitutive CaMV 355 promoter or tuber-specific patatin promoter. Solanum tuberosum plants carrying a plant expression vector harboring the encoding region of HCV gene were generated by Agrobacterium tumefaciens-mediated in vitro transformation methods. The presence of HCV gene in the plant genome was detected by PCR and DNA hybridization experiments. We obtained the 5 lines of transgenic potato with the pMBPHCV construct and 4 lines of transgenic potato with the pATHCV construct. The HCV transgenic stably integrated into the potato genome, as well as their transcription. HCV mRNA was identified in leaf and tuber tissues of transgenic plants by Northern blot analysis. The transgenic potato plants produced the expected transcript, and the corresponding HCV protein accumulated in individual transgenic plants.
Agrobacterium을 이용하여 도입된 유전자의 세대진전, 교잡 등에 따른 유전적 안정성을 확인코자, 형질 전환으로부터 얻어진 bar 유전자가 도입된 형질전환 식물체들을 상호 교배, 여교배, T$_4$ 세대까지의 자식의 반복 등에 의해 유전적 안정성을 검토하였다. 조합이나 계통에 따라서는 일부 멘델식 분리를 따르지 않고 제초제 Basta에 대한 저항성이 사라지거나 저항성개체보다 감수성개체가 기대치보다 많은 등의 경우가 있었으나, 대부분 멘델식 분리를 따르고 있어 세대진전, 교배 등에 의해서도 유전적 안정성이 높게 유지됨을 확인할 수 있었다.
pSp-Si (1.6kbp) was originally found in pediococcus halophilus to be a cryptic multicopy-plasmid. Hoping that the plasmid can also replicate in Bacillus subtilis, protoplast transformation of strain 207-25 (recE) was performed using pSP-Sl onto which was added the marker of tmrB8 (on 4.9 kbp EcoRI fragment ) or tmrB+ (on 0.9 kbp xbaI fragment) gene. Though the tmrB8 gene can expres tunicamycin-resistance at the single copy state, and the tmrB+ gene exerts the resistance only at the multicopy state, we could not confirm the replication of pSP-Sl (tmrB8) or pSP-Sl(tmrB+) in B. subtilis. During the experiment, however, we unexpectedly found that the circularized 0.9 kbp xgaI fragment (tmrB+) itself, which had no replication origin, could transform strain 207-25 to tunicamycin-resistant by protoplast transformation. Southern hybridization analyses with tmrB+ and other probes revealed the integration of the fragment at a single copy state into a position other than the homologous tmrB gene. This recE independent integration of another tmrB+ gene into the chromosome may contribute to the tunicamycinresistance in the transformants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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