Pseudoalteromonas donghaensis HJ51, isolated from the East Sea, has been reported as a novel strain to produce extracellular protease. Crude supernatant was used to determine optimal activity and optimal production conditions for the enzyme. It was found that the optimal temperature and pH of the protease were $40^{\circ}C$ and pH 7.5-10.5, respectively. The enzyme activity was kept to 88% at the pH 11. In metal requirement analysis, the enzyme exhibited the highest activity when 10 mM $Fe^{3+}$ was supplied. While supplementation of additional carbon sources used in study showed no positive effect on cell growth and enzyme activity, the addition of beef extract, tryptone, or casamino acids instead of peptone of PY-ASW containing 1% glucose increased enzyme production to 21, 7, 4%, respectively. Taken together these properties, the enzyme produced from P. donghaensis HJ51 can be applied to the industries that require protease activity under alkaline pH and low temperature.
The Rhodopseudomonas palustris KUGB306 hemA gene codes for 5-aminolevulinic acid (ALA) synthase. This enzyme catalyzes the condensation of glycine and succinyl-CoA to yield ALA in the presence of the cofactor pyridoxal 5'-phosphate. The R. palustris KUGB306 hemA gene in the pGEX-KG vector system was transformed into Escherichia coli BL21. The effects of physiological factors on the extracellular production of ALA by the recombinant E. coli were studied. Terrific Broth (TB) medium resulted in significantly higher cell growth and ALA production than did Luria-Bertani (LB) medium. ALA production was significantly enhanced by the addition of succinate together with glycine in the medium. Maximal ALA production (2.5 g/l) was observed upon the addition of D-glucose as an ALA dehydratase inhibitor in the late-log culture phase. Based on the results obtained from the shake-flask cultures, fermentation was carried out using the recombinant E. coli in TB medium, with the initial addition of 90 mM glycine and 120 mM succinate, and the addition of 45 mM D-glucose in the late-log phase. The extracellular production of ALA was also influenced by the pH of the culture broth. We maintained a pH of 6.5 in the fermenter throughout the culture process, achieving the maximal levels of extracellular ALA production (5.15 g/l, 39.3 mM).
Byeong Jun Chae;Kyung-Seo Lee;Inhwa Hwang;Je-Wook Yu
IMMUNE NETWORK
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v.23
no.3
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pp.23.1-23.17
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2023
Inflammation is a series of host defense processes in response to microbial infection and tissue injury. Inflammatory processes frequently cause extracellular acidification in the inflamed region through increased glycolysis and lactate secretion. Therefore, the immune cells infiltrating the inflamed region encounter an acidic microenvironment. Extracellular acidosis can modulate the innate immune response of macrophages; however, its role for inflammasome signaling still remains elusive. In the present study, we demonstrated that macrophages exposed to an acidic microenvironment exhibited enhanced caspase-1 processing and IL-1β secretion compared with those under physiological pH. Moreover, exposure to an acidic pH increased the ability of macrophages to assemble the NLR family pyrin domain containing 3 (NLRP3) inflammasome in response to an NLRP3 agonist. This acidosis-mediated augmentation of NLRP3 inflammasome activation occurred in bone marrow-derived macrophages but not in bone marrow-derived neutrophils. Notably, exposure to an acidic environment caused a reduction in the intracellular pH of macrophages but not neutrophils. Concordantly, macrophages, but not neutrophils, exhibited NLRP3 agonist-mediated translocation of chloride intracellular channel protein 1 (CLIC1) into their plasma membranes under an acidic microenvironment. Collectively, our results demonstrate that extracellular acidosis during inflammation can increase the sensitivity of NLRP3 inflammasome formation and activation in a CLIC1-dependent manner. Thus, CLIC1 may be a potential therapeutic target for NLRP3 inflammasome-mediated pathological conditions.
The growth and cultural characteristics of Bacillus sp. SH-8 and SH-8M were investigated at various pH conditions. Bacillus sp. SH-8 showed normal growth pattern above pH 9.0. However, with the pH adjusted below 7.7, 0.$D_{550}$ decreased rapidly with concomitant reduction in viable cell numbers. In contrast, Bacillus sp. SH-8M demonstrated growth capability at pH 7.7, but with slightly reduced growth rate at pH 6.9. Similar results were obtained when those two strains were cultivated on the solid medium. Both of them showed short rod shapes at pH 10.2. However, at pH 7.7 only Bacillus sp. SH-8 was observed to have elongated rod shape. Extracellular pH of both the strains, when cultured at initial pH of 10.2, reached to 9.0 after the incubation of 28 hours. At the initial pH of 9.0 and 9.6, the extracellular pH was reduced at the beginning of cultivation, but elevated after 12 hours. When cultured at initial pH of 6.9 and 7.7, extracelluar pH of Bacillus sp. SH-8M increased to 8.0 and 8.7, respectively, while that of Bacillus sp. SH8 remained constant pH 7.0. The highest sporulation rate of Bacillus sp. SH-8 and SH-8M was obtained at the initial pH of 10.2 and after the incubation of 3 days with the sporulation rate of 95% and 85%, respectively.
A balance between production and degradation of reactive oxygen species (ROS) is critical for maintaining cellular homeostasis. Increased levels of ROS during oxidative stress are associated with disease conditions. Antioxidant enzymes, such as extracellular superoxide dismutase (EC-SOD), in the extracellular matrix (ECM) neutralize the toxicity of superoxide. Recent studies have emphasized the importance of EC-SOD in protecting the brain, lungs, and other tissues from oxidative stress. Therefore, EC-SOD would be an excellent therapeutic drug for treatment of diseases caused by oxidative stress. We cloned both the full length (residues 1-240) and truncated (residues 19-240) forms of human EC-SOD (hEC-SOD) into the donor plasmid pFastBacHTb. After transposition, the bacmid was transfected into the Sf9-baculovirus expression system and the expressed hEC-SOD purified using FLAG-tag. Western blot analysis revealed that hEC-SOD is present both as a monomer (33 kDa) and a dimer (66 kDa), as detected by the FLAG antibody. A water-soluble tetrazolium (WST-1) assay showed that both full length and truncated hEC-SOD proteins were enzymatically active. We showed that a potent superoxide dismutase inhibitor, diethyldithiocarbamate (DDC), inhibits hEC-SOD activity.
An extracellular lipid-producing strain, Rhodotorula glutinis K-501, was isolated from soil. The extracellular lipid produced by the cell was found to have good and stable emulsifying activity. Factors affecting the extracellular lipid production were studied to optimize culture conditions for maximum production. Sucrose and ammonium sulfate were selected as best carbon and nitrogen sources, respectively because they gave the highest concentration of product. The optimum C/N ratio was 50. Optimum concentrations of $KH_2PO_4,\; Na_2HPO_4, \;and\; CaCl_2 $were 3.5, 1.0, 0.75, and 0.1g/L, respectively. The optimum temperature and initial pH were determined as $22^{\circ}C$ and 7.0, respectively. When the batch culture was conducted with a sucrose concentration of 60g/L under the optimized conditions, extracellular lipid was produced to a concentration of 8.1g/L with a high production yield of 51.9% based on dry cell weight.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1979.04a
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pp.113.2-114
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1979
$\beta-Galactosidase$ is an enzyme which catalizes hydrolysis of lactose, a natural substrate, to glucose and galctose and transferring some monosac-charide units to active acceptors as sugar or alcohol. The occurence of $\beta-Galactosidase$ is known in various microorganisms, animals and higher plants and has been studied by many investigatigators. Especially, a great deal of articles for the enzyme of E. coli have been presented in genetic control mechanism and induction-repression effects of proteins, On the other hand, in the dairly products industry, it is important to hydrolyes lactosd which is the principal sugar of milk and milk products. During the last few years, the interest in enzymatic hydrolysis of milk lactose has teen increased, because of the lactose intolerence in large groups of the population. Microbial $\beta-Galactosidases$ are considered potentially most suitable for processing milk to hydrolyse lactose and, in recent years, the immobilized enzyme from yeast has been examined. Howev, most of the microbial $\beta-Gal$ actosidase are intracellular enzymes, except a few fungal $\beta-Gala-$ ctosidases, and extracellular $\beta-Galactosidase$ which may be favorable to industrial applieation is not so well investigated. On this studies, a mold producing a potent extracellular $\beta-Galactosidase$ was isolated from soil and identified as an imperfect fungus, Beauveria bassians. In this strain, both extracellular and intracellular $\beta-Galactosidases$ were produced simultaneously and a great increase of the extracellular production was acheved by improving the cultural conditions. The extracellular enzyme was purified more than 1, 000 times by procedures including Phosphocellulose and Sephadex G-200 chromatographies. Several characteristics of the enzymewas clarified with this preparation. The enzyme has a main subunit of molecular weight of 80, 000 which makes an active aggregate. And at neutral pH range, it has optimum pH for activity and stability. The Km value was determined to be 0.45$\times$10$^{-3}$ M for $o-Nitrophenyl-\beta-Galactoside.$ In any event, it is interesting to sttudy the $\beta-Galactosidase$ of B. bassiana for the mechanism of secretion and conformational structure of enzyme.
Gonzalez, Tamara;M'Barek, Hasna Nait;Gomaa, Ahmed E.;Hajjaj, Hassan;Zhen, Chen;Dehua, Liu
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.47
no.4
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pp.546-554
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2019
This study, for the first time, reports the functional expression of lipase B derived from the yeast Candida antarctica (CALB) in Corynebacterium strain using the Escherichia coli plasmid PK18. The CALB gene fragment encoding a 317-amino-acid protein was successfully obtained from the total RNA of C. antarctica. CALB was readily produced in the Corynebacterium strain without the use of induction methods described in previous studies. This demonstrated the extracellular production of CALB in the Corynebacterium strain. CALB produced in the Corynebacterium MB001 strain transformed with pEC-CALB recombinant plasmid exhibited maximum extracellular enzymatic activity and high substrate affinity. The optimal pH and temperature for the hydrolysis of 4-nitrophenyl laurate by CALB were 9.0 and 40℃, respectively. The enzyme was stable at pH 10.7 in the glycine-KOH buffer and functioned as an alkaline lipase. The CALB activity was inhibited in the presence of high concentration of Mg2+, which indicated that CALB is not a metalloenzyme. These properties are key for the industrial application of the enzyme.
Ion fluxes across the plasma membrane activated by 1 mM $Ce^{4+}$, cell apoptosis and taxol biosynthesis in suspension cultures of Taxus cusp/data were studied. The extracellular pH sharply decreased upon the addition of 1 mM $Ce^{4+}$, then increased gradually and exceeded the initial pH value over a time period of 12 h. The extracellular $Ca^{2+}$ concentration decreased within the first 3 h after the addition of $Ce^{4+}$, then gradually decreased to one third of initial value in control at about 72 h and remained unchanged afterwards. Experiments with an ion channel blocker and a $Ca^{2+}$-channel blocker indicated that the dynamic changes in extracellular pH and the $Ca^{2+}$ concentration resulted from the $Ce^{4+}$-induced activation of W uptake and $Ca^{2+}$ influx across the plasma membrane via ion channels. A pretreatment of the ion channel blocker initiated $Ce^{4+}$-treated cells to undergo necrosis, and the prior addition of the $Ca^{2+}$-channel blocker inhibited $Ce^{4+}$-induced taxol biosynthesis and apoptosis. It is thus inferred that W uptake is necessary for cells to survive a $Ce^{4+}$-caused acidic environment and is one of the mechanisms of $Ce^{4+}$-induced apoptosis. Furthermore, the $Ca^{2+}$ influx across the plasma membrane mediated both the $Ce^{4+}$-induced apoptosis and taxol biosynthesis.
An extracellular PHB depolymerase was purified from P. simplicissimum LAR13 cultural medium by Sepharose CL-6B chromatography. When the fungus was grown in a basal salt medium with poly(3-hydroxybutyrate) (PHB) as the sole carbon source, PHB depolymerase production reached maximum at its stationary phase. The mycelial growth rate was higher at 37$^{\circ}C$ than at 30$^{\circ}C$ and even higher than at 25$^{\circ}C$, However, the enzyme production was lower at 37$^{\circ}C$ than 30$^{\circ}C$ or 25$^{\circ}C$. The isolated enzyme is composed of a single polypeptide chain with a molecular mass of about 36 kDa as determined by SDS-PAGE. The optimum conditions for the enzyme activity are pH 5.0 and 45$^{\circ}C$. The enzyme was stable for 30 min at a temperature lower than 50$^{\circ}C$, and stable at pH higher than 2.0 but it was unstable at pH 1.0.1 mM Fe$\^$2+/ reduced the enzyme activity by 56% and the enzyme was inhibited almost completely by 4 mM Fe$\^$2+/ . The enzyme was partially inhibited by phenylmethylsulfonyl fluoride and was very sensitive to diazo-DL-norleucine methyl esters dithiothreitol and mercuric ion. However, N-p - tosyl - L - Iysinechloromethyl ketone, p -hydroxymercuricbenzoate and N- acetylimidazole had no influence upon its activity.
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