The objective of this study is to prepare an artificial extracellular matrix (ECM) for cell culture by using polymer hydrogels. The polymer used is a cytocompatible water-soluble phospholipid polymer: poly[2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine (MPC)-n-butyl methacrylate-p-nitrophenyloxycarbonyl poly(ethylene oxide) methacrylate (MEONP)] (PMBN). The hydrogels are prepared using a cross-linking reaction between PMBN and diamine compounds, which can easily react to the MEONP moiety under mild conditions. The most favorable diamine is the bis(3-aminopropyl) poly(ethylene oxide) (APEO). The effects of cross-linking density and the chemical structure of cross-linking molecules on the mechanical properties of the hydrogel are evaluated. The storage modulus of the hydrogel is tailored by tuning the PMBN concentration and the MEONP/amino group ratio. The porous structure of the hydrogel networks depends not only on these parameters but also on the reaction temperature. We prepare a hydrogel with $40-50{\mu}m$ diameter pores and more than 90 wt% swelling. The permeation of proteins through the hydrogel increases dramatically with an increase in pore size. To induce cell adhesion, the cell-attaching oligopeptide, RGDS, is immobilized onto the hydrogel using MEONP residue. Bovine pulmonary artery endothelial cells (BPAECs) are cultured on the hydrogel matrix and are able to migrate into the artificial matrix. Hence, the RGDS-modified PMBN hydrogel matrix with cross-linked APEO functions as an artificial ECM for growing cells for applications in tissue engineering.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제28권6호
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pp.421-433
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2002
In order to elucidate the pathogenesis of cleft lip and palate, first of all, it is necessary to understand the developmental mechanisms of growth factors and extracellular matrix proteins in the tissues of cleft lip and palate. We have performed immunohistochemical studies on human cleft lip and palate tissues to elucidate the pathogenetic implications of cleft lip and palate. 16 specimens from postnatal human cleft lip and palate subjects and 17 specimens from autopsy of prenatal human cleft lip and palate were fixed in 10% buffered formalin, embedded in paraffin. The sections were routinely stained by hematoxylin and eosin, also stained by PAS, and followed by immunohistochemical stainings using the antiseras of growth factors and extracellular matrix proteins such as PCNA, S-100, c-erb-B2, MMP-3, MMP-10, HSP-70, transglutaninase-C, E-cadherin, VEGF, vWF. Both the prenatal and postnatal specimens of cleft lip and palate showed dysplastic proliferation of the basal cell layer, increased infiltration of melanocytes into mucosal epithelium, sebaceous gland hyperplasia ingrowing into the muscular tissue of lip and palate, and fatty infiltration into the submucosal deep connective tissue. The strong reactions of MMP-3 and HSP-70 were detected in the tissues of cleft lip and palate, especially increased in degenerating muscle bundles, while the immunostainings of PCNA and c-erb-B2 were weakly positive in the tissues of cleft lip and palate. These data suggest that the retrogressive tissue degeneration around the cleft areas persistently exist during the prenatal and postnatal period after cleft formation, and the sebaceous gland hyperplasia and fatty infiltration with the intense expression of MMP-3 and HSP-70 is closely related to the muscular degeneration around the cleft area.
Tumor cell invasion and metastasis are a complex multistep process that involves the degradation of extracellular matrix proteins by matrix metalloproteinases (MMPs). Tissue inhibitor of metalloproteinase-1 (TIMP-1) acts as a negative regulator of matrix metalloproteinase and thus prevents tumor cell invasion and metastasis by preserving extracellular matrix integrity.(omitted)
Previous studies have shown that transforming growth factor beta ($TGF-{\beta}$) is a potent regulator of cell growth and differentiation. To study the effects of $TGF-{\beta}$ on cell morphology and cytoskeleton reorganization, we conducted a survey using Mv1Lu mink lung epithelial cells with antibodies to cytoskeletal proteins and an extracellular matrix protein. While the untreated cells showed a cuboidal shape of typical epithelia, the Mv1Lu cells displayed a drastic shape change in the presence of $TGF-{\beta}$. This alteration was most prominent when near-confluent cells were treated with $TGF-{\beta}$. Since the morphology alteration is known to be accompanied by the reorganization of cytoskeletal proteins in other cell types, we investigated the intracellular distribution of the three major cytoskeletal structures: microfilaments, microtubules, and intermediate filaments. In the microfilament system, $TGF-{\beta}$ induced new stress fiber formation, which was caused primarily by the polymerization of cytoplasmic G-actin. However, $TGF-{\beta}$ appeared not to induce any significant changes in microtubular structures and vimentin filaments as determined by indirect fluorescence microscopy. Finally we confirmed the rapid accumulation of fibronectin by immunoblot analysis and chased the protein locations by immunofluorescence microscopy.
Extracellular matrix (ECM) proteins play a crucial role in culturing muscle stem cells (MuSCs). However, there is a lack of extensive research on how each of these proteins influences proliferation and differentiation of MuSCs from livestock animals. Therefore, we investigated the effects of various ECM coatings-collagen, fibronectin, gelatin, and laminin-on the proliferation, differentiation, and maturation of porcine MuSCs. Porcine MuSCs, isolated from 14-day-old Berkshire piglets, were cultured on ECM-coated plates, undergoing three days of proliferation followed by three days of differentiation. MuSCs on laminin showed higher proliferation rate than others (p<0.05). There was no significant difference in the mRNA expression levels of PAX7, MYF5, and MYOD among MuSCs on laminin, collagen, and fibronectin (p>0.05). During the differentiation period, MuSCs cultured on laminin exhibited a significantly higher differentiation rate, resulting in thicker myotubes compared to those on other ECMs (p<0.05). Also, MuSCs on laminin showed higher expression of mRNA related with maturated muscle fiber such as MYH1 and MYH4 corresponding to muscle fiber type IIx and muscle fiber type IIb, respectively, compared with MuSCs on other ECM coatings (p<0.05). In summary, our comparison of ECMs revealed that laminin significantly enhances MuSC proliferation and differentiation, outperforming other ECMs. Specifically, muscle fibers cultured on laminin exhibited a more mature phenotype. These findings underscore laminin's potential to advance in vitro muscle research and cultured meat production, highlighting its role in supporting rapid cell proliferation, higher differentiation rates, and the development of mature muscle fibers.
Jung, Gwon-Soo;Lee, Kyeong-Min;Park, Jin-Kyu;Choi, Seong-Kyoon;Jeon, Won Bae
BMB Reports
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제46권5호
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pp.276-281
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2013
In this study, we aimed to compare the morphogenetic and neuronal characteristics between monolayer cells and spheroids. For this purpose, we established spheroid formation by growing SH-SY5Y cells on the hydrophobic surfaces of thermally-collapsed elastin-like polypeptide. After 4 days of culture, the relative proliferation of the cells within spheroids was approximately 92% of the values for monolayer cultures. As measured by quantitative assays for mRNA and protein expressions, the production of synaptophysin and neuronspecific enolase (NSE) as well as the contents of cell adhesion molecules (CAMs) and extracellular matrix (ECM) proteins are much higher in spheroids than in monolayer cells. Under the all-trans-retinoic acid (RA)-induced differentiation condition, spheroids extended neurites and further up-regulated the expression of synaptophysin, NSE, CAMs, and ECM proteins. Our data indicate that RA-differentiated SH-SY5Y neurospheroids are functionally matured neuronal architectures.
Mechanical stimulation is known to activate several cellular signal transduction pathways, leading to the induction of signaling molecules and extracellular matrix (ECM) proteins, thereby modulating cellular activities, such as proliferation and survival. In this study, primary human dermal fibroblasts (HDFs) were seeded onto chitosan-based scaffolds, and then cultured for 3 weeks in a bioreactor under a cyclic strain of 1 Hz frequency. Compared to control samples cultured under static conditions, the application of a cyclic strain stimulated the proliferation of HDFs in I week, and by week 3 the thickness of the cell/scaffold composites increased 1.56 fold. Moreover, immunohistochemical staining of the culture media obtained from the cell/scaffold samples subjected to the cyclic strain, revealed increases in the expression and secretion of ECM proteins, such as fibronectin and collagen. These results suggest that the preconditioning of cell/scaffold composites with a cyclic strain may enhance the proliferation of HDFs, and even facilitate integration of the engineered artificial dermal tissue into the host graft site.
To investigate the effect of extracellular matrix proteins on the in vitro development of blastomeres isolated from 2, 4, and 8-cell embryos(termed 1/2, 1/4 and 1/8 blastomeres, respectively) of ICR strain mice, those were cultured in fibronectin, gelatin, or collagen precoated culture dishes containing 1.5ml of NaHCO3-BMOC-3 medium at 37$^{\circ}C$ for 72 hrs, under the atmosphere at 5% CO2. and 95% air. Fibronectin, gelatin, or collagen significantly(P<0.01) increased and blastocyst formation rate compared with controls in 1/2(65.3, 59.2, 60.7% vs. 21.6%), 1/4(63.7, 53.4, 57.1% vs. 26.3%), and 1/8 blastomeres(61.1, 52.3, 53.7% vs. 19.1%). Both the nuclear number(P<0.05) and diameter of blastocysts(P<0.01) developed from balstomeres were significantly affected by the origin of blastomeres. The nuclear number of blastocysts developed from 1/2, 1/4, and 1/8 blastomeres ranged 29.3$\pm$1.6, 24.5$\pm$1.3, and 20..$\pm$1.2, respectively. And the diameter of those blastocysts was 88.3$\pm$2.4, 57.6$\pm$2.1, 39.8$\pm$1.9${\mu}{\textrm}{m}$, respectively.
Decorin (DCN) is a proteoglycan belonging to the small leucine-rich proteoglycan family. It is composed of a protein core containing leucine repeats with a glycosaminoglycan chain consisting of either chondroitin sulfate or dermatan sulfate. DCN is a structural component of connective tissues that can bind to type I collagen. It plays a role in the assembly of the extracellular matrix (ECM), and it is related to fibrillogenesis. It can interact with fibronectin, thrombospondin, complement component C1, transforming growth factor (TGF), and epidermal growth factor receptor. Normal DCN expression regulates a wide range of cellular processes, including proliferation, migration, apoptosis, and autophagy, through interactions with various molecules. However, its aberrant expression is associated with oocyte maturation, oocyte quality, and poor extravillous trophoblast invasion of the uterus, which underlies the occurrence of preeclampsia and intrauterine growth restriction. Spatiotemporal hormonal control of successful pregnancy should regulate the concentration and activity of specific proteins such as proteoglycan participating in the ECM remodeling of trophoblastic and uterine cells in fetal membranes and uterus. At the human feto-maternal interface, TGF-β and DCN play crucial roles in the regulation of trophoblast invasion of the uterus. This review summarizes the role of the proteoglycan DCN as an important and multifunctional molecule in the physiological regulation of oocyte maturation and trophoblast migration. This review also shows that recombinant DCN proteins might be useful for substantiating diverse functions in both animal and in vitro models of oogenesis and implantation.
Human mesenchymal stem cells (hMSC) are multipotent stromal cells that have great potential to differentiate into a variety of cell types such as osteocytes, chondrocytes, and myocytes. Although there have been many studies on their clinical availability, little is known about how intracellular signals can be modulated by topographic features of the extracellular matrix (ECM). In this study, we investigated whether and how microwavy-patterned extracellular matrix (ECM) could affect the signaling activity of focal adhesion kinase (FAK), a key cellular adhesion protein. The fluorescence resonance energy transfer (FRET)-based FAK biosensor-transfected cells are incubated on microwavy-patterned surfaces and then platelet derived growth factor (PDGF) are treated to trigger FAK signals, followed by monitoring through live-cell FRET imaging in real time. As a result, we report that PDGF-induced FAK was highly activated in cells cultured on microwavy-patterned surface with L or M type, while inhibited by H type-patterned surface. In further studies, PDGF-induced FAK signals are regulated by functional support of actin filaments, microtubules, myosin-related proteins, suggesting that PDGF-induced FAK signals in hMSC upon microwavy surfaces are dependent on cytoskeleton (CSK)-actomyosin networks. Thus, our findings not only provide new insight on molecular mechanisms on how FAK signals can be regulated by distinct topographical cues of the ECM, but also may offer advantages in potential applications for regenerative medicine and tissue engineering.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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