Myostatin is a member of the transforming growth factor-${\beta}$(TGF-${\beta}$ super-family. It acts as a negative regulator for skeletal muscle growth. Myostatin mutations are characterized by a visible, generalized increase in muscle mass in double muscled cattle breeds. To understand the biochemistry and physiology of the Chinese Yellow bovine myostatin gene, we report here for the first time expression of the gene in Escherichia coli (E. coli). Primers of the myostatin gene of Chinese Yellow Cattle were designed on the basis of the reported bovine myostatin mRNA sequence (Gen-Bank Accession No. NM005259) and optimized for E. coli codon usage. XhoI and EcoRI restriction enzyme sites were incorporated in the primers, and then cloning vector and expression vector were constructed in a different host bacterium. The expressed protein had a molecule mass of about 16 kDa as determined by SDS-PAGE under reducing conditions. The expressed protein reacted specifically with myostatin monoclonal antibody on immunoblots. Our studies should lead to the investigation of the differences in myostatin genes of various cattle and could benefit human health and food animal agriculture.
The xynC gene, which encodes high molecular weight xylanase from Paenibacillus sp. DG-22, was cloned and expressed in Escherichia coli, and its nucleotide sequence was determined. The xynC gene comprised a 4,419bp open reading frame encoding 1,472 amino acid residues, including a 27 amino acid signal sequence. Sequence analysis indicated that XynC is a multidomain enzyme composed of two family 4_9 carbohydrate-binding modules (CBMs), a catalytic domain of family 10 glycosyl hydrolases, a family 9 CBM, and three S-layer homologous domains. Recombinant XynC was purified to homogeneity by heat treatment, followed by Avicel affinity chromatography. SDS-PAGE and zymogram analysis of the purified enzyme identified three active truncated xylanase species. Protein sequencing of these truncated proteins showed that all had identical N-terminal sequences. In the protein characterization, recombinant XynC exhibited optimal activity at pH 6.5 and $65^{\circ}C$ and remained stable at neutral to alkaline pH (pH 6.0-10.0). The xylanase activity of recombinant XynC was strongly inhibited by 1 mM $Cu^{2+}$ and $Hg^{2+}$, whereas it was noticeably enhanced by 10 mM dithiothreitol. The enzyme exhibited strong activity towards xylans, including beechwood xylan and arabinoxylan, whereas it showed no cellulase activity. The hydrolyzed product patterns of birchwood xylan and xylooligosaccharides by thin-layer chromatography confirmed XynC as an endoxylanase.
To clone the gene coding for steroid $\Delta^1$-dehydrogenase of Arthrobacter simplex, its genomic library was constructed with a , $\lambda$gt11 expression vector and immunoscreened with antiserum against the enzyme. One positive clone was found to carry a 1.6-kb EcoR I restriction endonuclease fragment of A. simplex DNA. The restriction map of the 1.6-kb EcoR I fragment was determined after cloning of the DNA into pBS vector.
An ${\alpha}-glucosidase$ gene (aglA) from thermophilic Bacillus sp. DG0303 was cloned, sequenced, and expressed in Escherichia coli. The aglA was localized to the 2.1-kb PvuI-XmnI region within the 5.9-kb DNA insert of the gybrid plasmid pAG1. The gene consisted of an open reading frame of 1,686 bp with an unusual GTG initiation codon and TGA termination codon. The amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence predicted a protein of 562 amino acid residues with a M, of 66,551 dalton. A comparative amino acid sequence analysis revealed that DG0303 ${\alpha}-glucosidase$ is related to bacillary oligo-1, 6-glucosidases. The Bacillus sp. DG0303 ${\alpha}-glucosidase$ showed a high sequence identity (36-59%) to the B. flavocaldarius, B. cereus, and B. thermoglucosidasius oligo-1, 6-glucosidases. The number of prolines in theses four ${\alpha}-glucosidases. was observed to increase with increasing thermostability of these enzymes. The cloned ${\alpha}-glucosidase was purified from E. coli $DH5{\alpha}$ bearing pAG1 and characterized. The recombinant enzyme was identical with the native enzyme in its optimum pH and in its molecular mass, estimated by sodium dodecy1 sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. The temperature optimum of the cloned ${\alpha}-glucosidase$ was lower than that of the native enzyme.
한국산 Klebsiella pnelµnoniae KNFl의 chromosomal DNA를 Hind III로 부분소화하고 pBR 322도 같은 효소로 완전소화했다. 소화된 pBR 322 의 5'- 말단연산기를 제거하여 두 DNA 표품을 ligation 한 후 E. coli K060 으로 transformation 하 였다. 이러한 transformants중 N-free 한천배지에서 자라는 단일 colony을을 얻었으며, 이들은 모두 ampicillin에 대해 저 항성을 가지고 있었고 tetracycline에 대해 저항성이 없었으며 cunng 되였을 때는 질소고정능을 잃었다. 이런 사실로부터 이 transformants가 K. pneumoniae의 질소고정능 유전자을 포함하는 recombinant plasmid를 가지고 있음을 확인할 수 있었다. 이들 transformants의 nitrogenase 역가는 K. pneumoniae KNF 1보다 더 높았다.
Virus-encoded HIV-1 reverse transcriptase (RTase) is one of the major targets for the development of drugs for HIV-1 since it is an essential enzyme-for the replication cycle of HIV-1. We cloned the entire reverse trancriptase gene into an inducible expression vector with tac promotor= RTase was stably overexpressed and induced by IPTG and the highly-expressed RTase was purified partially by use of DEAE cellulose and Mono Q column. The partially purified enzyme (663kDa, 51kDa) as exhibited by SDS-PAGE showed the high specific activity (16,570U/mg) when the assay for the RTase activity was carried out using $^3$H-dTTP and poly(rA): oligo(dT)12-18 as the substrate.
Bacillus subtilis CH3-5 was isolated from cheonggukjang prepared according to traditional methods. CH3-5 secreted at least four different fibrinolytic proteases (63, 47, 29, and 20 kDa) into the culture medium. A fibrinolytic enzyme gene, aprE2, encoding a 29kDa enzyme was cloned from the genomic DNA of CH3-5, and the DNA sequence determined. aprE2 was overexpressed in heterologous B. subtilis strains deficient in extracellular proteases using a E. coli-Bacillus shuttle vector. A 29 kDa AprE2 band was observed and AprE2 seemed to exhibit higher activities towards fibrin rather than casein.
유전자 구조 및 유전정보 흐름의 차이로 인하여 고등생물의 유전자를 미생물에 직접 cloning하면 원하는 유전자 산물을 얻지 못하는 경우가 많다. 이것을 극복하기 위해서는 화학적인 방법으로 유전자를 합성하든지, 또는 역제효소를 사용하여 고등생물의 mRNA로부터 유전자를 합성하여 cloning하는 방법을 사용한다. 본 연구에서는 oligo(dT)-cellulose column 방법으로 순수분리한 plasmid pBR322의 Pst I site에 cloning하였다. 우선 AMV reverse transcriptase로 primary cDNA를 합성하고, 알칼리를 처리하여 주형 RNA를 제거했다. 이번에는 이 primary cDNA를 주형으로 Klenow enzyme과 reverse transcriptase를 차례로 처리하여 double stranded DNA를 합성하고, 이 때 5' end 근처에 형성되는 hairpin loop을 Sl nuclease로 제거했다. Terminal deoxynucleotidyl transferase를 사용하여, 합성된 dsDNA에는 poly(dC) track을, Pst I endonuclease를 처리한 plasmid DNA에서는 poly(dG) track을 각각 붙인다음 이들을 서로 annealing시키고 E. coli에 transformation시켜서 크기가 큰 plasmid를 갖는 clone을 cracking 방법으로 일처 선별하였다. 이렇게 선별된 clone을 in 냐셔 hybridization 방법으로 조사하여 globin DNA가 들어간 colony를 이차 선별하고 여러 restriction enzyme으로 잘라보아 globin DNA가 cloning된 것을 확인하였다. 토끼 hemoglobin으로 immunize한 rat (Wistar)에서 뽑은 제일차 혈청과 염소에서 뽑은 제이차 혈청의 antibody를 사용한 radioimmunoassay방법으로, cloning된 globin gene이 대장균내에서 발현되는 지의 여부를 살펴 보았는데, 박테리아의 $\\beta$-lactamase와 토끼의 globin이 결합된 chimeric protein이 대장균 내에서 다량 합성되며, 이 단백질은 토끼 hemoglobin의 antigenic determinant를 가지고 있음을 알 수 있었다.
To investigate whether phospholipase D (PLD, EC 3.1.4.4) plays a role in adaptive response of post-harvest fruit to environment, a PLD gene was firstly cloned from grape berry (Vitis Vinifera L. cv. Chardonnay) using RT-PCR and 3'- and 5'-RACE. The deduced amino acid sequence (809 residues) showed 84.7% identity with that of PLD from Ricinus communis. The secondary structures of this protein showed the characteristic C2 domain and two active sites of a phospholipid-metabolizing enzyme. The PLD activity and its expression in response to heat acclimation were then assayed. The results indicated PLD was significantly activated at enzyme activity, as well as accumulation of PLD mRNA and synthesis of new PLD protein during the early of heat acclimation, primary suggesting that the grape berry PLD may be involved in the heat response in post-harvest grape berry. This work offers an important basis for further investigating the mechanism of post-harvest fruit adaptation to environmental stresses.
Vu, Thi Thu Hang;Quyen, Dinh Thi;Dao, Thi Tuyet;Nguyen, Sy Le Thanh
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권3호
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pp.331-338
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2012
A novel gene coding for an endo-${\beta}$-1,4-mannanase (manA) from Bacillus subtilis strain G1 was cloned and overexpressed in P. pastoris GS115, and the enzyme was purified and characterized. The manA gene consisted of an open reading frame of 1,092 nucleotides, encoding a 364-aa protein, with a predicted molecular mass of 41 kDa. The ${\beta}$-mannanase showed an identity of 90.2-92.9% ${\leq}95%$) with the corresponding amino acid sequences from B. subtilis strains deposited in GenBank. The purified ${\beta}$-mannanase was a monomeric protein on SDS-PAGE with a specific activity of 2,718 U/mg and identified by MALDI-TOF mass spectrometry. The recombinant ${\beta}$-mannanase had an optimum temperature of $45^{\circ}C$ and optimum pH of 6.5. The enzyme was stable at temperatures up to $50^{\circ}C$ (for 8 h) and in the pH range of 5-9. EDTA and most tested metal ions showed a slightly to an obviously inhibitory effect on enzyme activity, whereas metal ions ($Hg^{2+}$, $Pb^{2+}$, and $Co^{2+}$) substantially inhibited the recombinant ${\beta}$-mannanase. The chemical additives including detergents (Triton X-100, Tween 20, and SDS) and organic solvents (methanol, ethanol, n-butanol, and acetone) decreased the enzyme activity, and especially no enzyme activity was observed by addition of SDS at the concentrations of 0.25-1.0% (w/v) or n-butanol at the concentrations of 20-30% (v/v). These results suggested that the ${\beta}$-mannanase expressed in P. pastoris could potentially be used as an additive in the feed for monogastric animals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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