Recombinant ${\beta}$-galactosidase from Bifidobacterium longum LL04 was expressed in Escherichia coli and partially purified by ammonium sulphate precipitation and anion-exchange chromatography (Mono-Q). The optimum temperature and pH of the partially purified enzyme were $50^{\circ}C$ and pH 7.0-8.0, respectively, when o-nitrophenyl-${\beta}$-D-galactopyranoside was used as a substrate. The enzyme was stable over the pH range of 5.0-9.0, and was active at $40^{\circ}C$ for more than 60 min at pH 7.0. The enzyme was significantly activated by $Na^+$ and $K^+$. Maximal activity was observed at the concentration of 10 mM for both $Na^+$ and $K^+$. The enzyme activity was strongly inhibited by most bivalent metal ions. The Km and Vmax on ONPG at 37 and $50^{\circ}C$ were 0.72, 167.9, and 0.507 mM, 310.9 U/mL, respectively.
An inky cap, Coprinus comatus synthesizes and secretes a laccase in the liquid yeast extract peptone dextrose medium. We have successfully purified the enzyme through the ion-exchange chromatography and the preparative gel electrophoresis. The estimated molecular weight was 67 kDa by the SDS-PAGE analysis. Optimum pH was pH 4.3 and optimum temperature was $25^{\circ}C$. The Km value was 0.45 mM and the Vmax was 0.0132 OD/min/unit for o-tolidine. Purified laccase showed 49.3% decolorizing activity against remazol brilliant blue R (RBBR) and 41.6% decolorizing activity against Poly R-478 after 12 h incubation.
Kang Yoon-Suk;Lee Dong-Heon;Yoon Byoung-Jun;Oh Duck-Chul
Journal of Microbiology
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v.44
no.2
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pp.185-191
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2006
The photosynthetic bacterium, Rhodospirillum rubrum S1, when grown under anaerobic conditions, generated three different types of catalases. In this study, we purified and characterized the highest molecular weight catalase from the three catalases. The total specific catalase activity of the crude cell extracts was 88 U/mg. After the completion of the final purification step, the specific activity of the purified catalase was 1,256 U/mg. The purified catalase evidenced an estimated molecular mass of 318 kDa, consisting of four identical subunits, each of 79 kDa. The purified enzyme exhibited an apparent Km value of 30.4 mM and a Vmax of 2,564 U against hydrogen peroxide. The enzyme also exhibited a broad optimal pH $(5.0{\sim}9.0)$, and remained stable over a broad temperature range $(20^{\circ}C{\sim}60^{\circ}C)$. It maintained 90% activity against organic solvents (ethanol/chloroform) known hydroperoxidase inhibitors, and exhibited no detectable peroxidase activity. The catalase activity of the purified enzyme was reduced to 19 % of full activity as the result of the administration of 10 mM 3-amino-1,2,4-triazole, a heme-containing catalase inhibitor. Sodium cyanide, sodium azide, and hydroxylamine, all of which are known heme protein inhibitors, inhibited catalase activity by 50 % at concentrations of $11.5{\mu}M,\;0.52{\mu}M,\;and\;0.11{\mu}M$, respectively. In accordance with these findings, the enzyme was identified as a type of monofunctional catalase.
Methionine aminopeptidase (MetAP) catalyzes the removal of an amino-terminal methionine from a newly synthesized polypeptide. The enzyme was purified to homogeneity from Bacillus stearothermophilus (KCTC 1752) by a procedure that involves heat precipitation and four sequential chromatographs (including DEAE-Sepharose ion exchange, hydroxylapatite, Ultrogel AcA 54 gel filtration, and Reactive red 120 dye affinity chromatography). The apparent molecular masses of the enzyme were 81,300 Da and 41,000 Da, as determined by gel filtration chromatography and sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), respectively. This indicates that the enzyme is comprised of two identical subunits. The MetAP specifically hydrolyzed the N-terminal residue of Met-Ala-Ser that was used as a substrate, and exhibited a strong preference for Met-Ala-Ser over Leu-Gly-Gly, Leu-Ser-Phe, and Leu-Leu-Tyr. The enzyme has an optimal pH at 8.0, an optimal temperature at $80^{\circ}C$, and pI at 4.1. The enzyme was heat-stable, as its activity remained unaltered when incubated at $80^{\circ}C$ for 45 min. The Km and Vmax values of the enzyme were 3.0mM and 1.7 mmol/min/mg, respectively. The B. stearothernmophilus MetAP was completely inactivated by EDTA and required $Co^{2+}$ ion(s) for activation, suggesting the metal dependence of this enzyme.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.18
no.3
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pp.239-246
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1989
Preventive effect of azalea pollen extracts against aniline-induced hepatic toxicity in mice was investigated in this experiment. When the biochemical and histological changes were measured, preventive effect was more striking by treatment with water extract. After treatment with azalea pollen extracts, hepatic microsomal aniline hydroxylase activity increased as compared to control. Whereas, aniline level in serum and liver significantly decreased. The Vmax value without affecting Km value increased by the water extract treatment, the results obtained suggest that the characteristics of increase in the aniline hydroxylase activity may include induction of enzyme proteins. These data indicate that the observed preventive effects of azalea pollen extracts against hepatotoxicity is due to the induction of aniline metabolizing enzyme.
Indican (indoxyl-${\beta}$-D-glucoside) is a colorless natural compound and can be used as a precursor for the production of indigo. This production step only require an enzyme, ${\beta}$-glucosidase, that readily screened from microbial resource by using selective media supplemented with indican as a sole carbon source. Agrobacterium tumefaciens was well grown in this media and thus presumed to produce a related enzyme. The corresponding gene, encoding a protein with a calculated molecular mass of 51 kDa, was cloned and overexpressed as MBP fusion proteins. The purified enzyme was determined to be a dimer and showed the maximum activity for indican at pH 7.0 and $40^{\circ}C$. The kinetic parameters for indican, Km and Vmax, were determined to be 1.4 mM and 373.8 ${\mu}M/min/mg$, respectively. The conversion yield of indican into indigo using this enzyme was about 1.7-1.8 folds higher than that of previously isolated enzyme from Sinorhizobium meliloti. Additionally, this enzyme was able to hydrolyze various ${\beta}$-1,4 glycoside substrates.
Possible mechanism of decreased catechol-O-methyltransferase (COMT) activity in cholestatic rat liver was studied. Hepatic and serum COMT activities were determined from the experimental rats with common bile duct ligation (CBDL). The Michaelis-Menten constants in this hepatic enzyme were also measured. The activities of cytosolic, mitochondrial and mircosomal COMT as well as their Vmax values were found to be decreased significantly in CBDL plus taurocholic acid (TCA) injected group than in the control group, such as CBDL alone groups. However, their Km values in the experimental groups did not vary. Serum COMT activity increased slightly in the CBDL plus TCA injected group than in the control group. The above results suggest that TCA represses biosynthesis of the COMT in the liver. The elevated activity of the serum COMT is believed to be caused by the increment of membrane permeability of hepatocytes upon TCA mediated liver cell necrosis.
The polygalacturonase (PG) production in rotten apples by Botryosphaeria dothidea was purified by using gel filtration and ion exchange column chromatography, and the biochemical characters of PG were investigated. The purified PG appeared as a single band on sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) with approximate molecular weight of 49 kilodalton (kDa). The molecular weight was equal to the native molecular weight estimated by gel filtration. The Km and Vmax values of PG were 0.51 mg/ml and 90.9 $\mu$M/min/ml, respectively. Optimum pH was 4.0~5.0, and the PG activity was stable from pH 5.0~10.0. Optimum temperature of the enzyme activity was 4$0^{\circ}C$. The PG activity was relatively stable at 2$0^{\circ}C$, but it was reduced 45% at 4$0^{\circ}C$ and completely inactivated at 8$0^{\circ}C$. The PG activity was considerably inhibited by Cu2+, Zn2+, SDS and EDTA, whereas it was not effected by Ca2+, K+, Mg2+ or Na+ ions.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.19
no.5
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pp.434-442
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1990
Aspergillus sp. CC-29 ws selected for its strong protease activity among various stains of molds found in soil. It was found that the production of alkaline protease reached to maximum when the wheat bran medium containing glucose as carbon source had been cultured for 4 days. Alkaline proteased was purified 36.10 fold from Aspergillus sp. CC-29 The purification procedures included ammonium sulfate fractunation gel filteration on Sepha-dex G-75 G-150 and DEAE-cellulose ion-exchange chromatography, The yield of the purified enzyme was 22.40% The purified enzyme was confirmed as a single band by the polyacryla-mide. When the purified enzyme was applied to SDS-PAGE the molecular weight was estima-ted 24000. The optimum pH for the enzyme activity was 9.0 and the optimum temperature was 4$0^{\circ}C$ The reaction of this enzyme followed typical Michaelis-Menten kinetics with the Km value of 2.10$\times$10-4M with the Vmax of 29.41 $\mu$g/min. The enzyme was reactively stable in alkalic condition and unstable by heat treatment. The activity of alkaline protease was increased by the addition of Ca2+ whereas it was inhibited by Hg2+ Zn2+ at concentration of 1$\times$10-3M.
${\beta}$-Galactosidase was extracted and purified from strawberry. The purified ${\beta}$-Galactosidase from strawberry was investigated their physicochemical characteristics. ${\beta}$-Galactosidase was purified 25.74 fold from strawberry. The purification procedure include ammonium sulfate fraction, acetone powder treatment and gel and ion exchange chromatography. Yield of the enzyme purification was 18.11%. The purified enzyme has native molecular weight of 116,000 dalton. Vmax value and Km value of ${\beta}$-Galactosidase were 0.077 mM ONPG/ml/15mim and 1.75x10-2mM, respectively. The optimum temperature and pH of ${\beta}$-Galactosidase were 43$^{\circ}$C and pH 4.0, respectively. The ${\beta}$-Galactosidase activity was stable below 50$^{\circ}$C and at pH 4.0 to pH 6.0. Among the metal ions Ca and Mg were did not affect, whereas K, Cu and Zn show a little effect on the enzyme activity. The ${\beta}$-Galactosidase activities were inhibited by treatment with EDTA and SDS.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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