Park, Eun-Young;Kim, Yong-Jin;Jeong, Seung-Mi;Lee, Dong-Hoon
KSBB Journal
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제28권2호
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pp.65-73
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2013
This study aimed to investigate the enzymatic hydrolysis of mannitol using Viscozyme$^{(R)}$ L, Celluclast$^{(R)}$ 1.5 L, Saczyme$^{(R)}$, Novozym$^{(R)}$, Fungamyl$^{(R)}$ 800 L, Driselase$^{(R)}$ Basidiomycetes sp., and Alginate Lyase, and to optimize of reaction conditions for production of reducing sugar. Response surface methodology (RSM) based on central composite rotatable design was used to study effects of the independent variables such as enzyme (1-9% v/w), reaction time (10-30 h), pH (3.0-7.0) and reaction temperature ($30-70^{\circ}C$) on production of reducing sugar from mannitol. The coefficient of determination ($R^2$) of $Y_1$ (yield of reducing sugar by Viscozyme$^{(R)}$ L) and $Y_3$ (yield of reducing sugar by Saczyme$^{(R)}$) for the dependent variable regression equation was analyzed as 0.985 and 0.814. And the p-value of $Y_1$ and $Y_3$ showing 0.000 and 0.001 within 1% (p < 0.01), respectively, was very significant. The optimum conditions for production of reducing sugar with Viscozyme$^{(R)}$ L were 9.0 % (v/w) amount of enzyme, 30.0 hours of reaction time, pH 4.5 and $30.0^{\circ}C$ of reaction temperature, and those with Saczyme$^{(R)}$ were 9.0% (v/w) of amount of enzyme dosage, 30.0 h of reaction time, pH 7.0 and $30.0^{\circ}C$ of reaction temperature, consequently, the predicted reducing sugar yields were 22.5 and 27.9 mg/g-mannitol, respectively.
$\beta$-Glucosidase enzyme reaction under high hydrostatic pressure was investigated in terms of physical chemistry. A model substrate (p-nitrophenyl-${\beta}$-D-glucopyranoside(pNPG)) was used, and the pressure effects on the enzymatic hydrolysis (pNPG${\rightarrow}$pNP) at 25 MPa, 50 MPa, 75 MPa, and 100 MPa were analyzed. Two parts of the reaction such as kinetic and equilibrium stages were considered for mathematical modelling, and their physicochemical parameters such as forward and inverse reaction constants, equilibrium constant, volume change by pressure, etc. were mathematically modeled. The product concentration increased with pressure, and the two stages of reaction were observed. Prediction models were derived to numerically compute the product concentrations according to reaction time over kinetic to equilibrium stages under high pressure condition. Conclusively, the $\beta$-Glucosidase enzyme reaction could be activated by pressurization within 100 MPa, and the developed models were very successful in their prediction.
Many factors exert an influence on enzyme activity and thus on the rate of reactions that they catalyse. The most important of these factors are pH, temperature, substrate concentration, and the concentration of some inhibitors present. A solution of the enzyme diastase, which breaks down molecules of the polysaccharide starch to the disaccharide maltose by hydrolysis, was provided. Activity of this enzyme was measured by the rate at which starch was removed from the reaction mixture. These experiments were designed to study this reaction rate under varying conditions and the following results were obtained. 1. The range of optimum pH for this enzyme at room temperature was 4.0-7.0 and the optimum pH was 5.0. 2. The range of optimum temperatures for this enzyme at pH 7.0 was $30^{\circ}C-50^{\circ}C$ and the optimum temperature was $40^{\circ}C$. 3. The relationship between the enzyme activity and substrate concentration could be expressed by the Michaelis-Menten equation. The limiting velocity of this enzyme at room temperature and pH 7.0 was $415{\mu}g$ starch removed/ml of reaction mixture/min and $K_m$, Michaelis constant, was $343{\mu}g/ml$. 4. Inhibitors NaCl and $HgCl_2$ blocked this enzyme activity completely at 1% and 0.01% respectively.
In this paper, the kinetics of a cloned special glucosidase, named ginsenosidase type III hydrolyzing 3-O-glucoside of multi-protopanaxadiol (PPD)-type ginsenosides, were investigated. The gene (bgpA) encoding this enzyme was cloned from a Terrabacter ginsenosidimutans strain and then expressed in E. coli cells. Ginsenosidase type III was able to hydrolyze 3-O-glucoside of multi-PPD-type ginsenosides. For instance, it was able to hydrolyze the 3-O-${\beta}$-D-(1${\rightarrow}$2)-glucopyranosyl of Rb1 to gypenoside XVII, and then to further hydrolyze the 3-O-${\beta}$-D-glucopyranosyl of gypenoside XVII to gypenoside LXXV. Similarly, the enzyme could hydrolyze the glucopyranosyls linked to the 3-O-position of Rb2, Rc, Rd, Rb3, and Rg3. With a larger enzyme reaction $K_m$ value, there was a slower enzyme reaction speed; and the larger the enzyme reaction $V_{max}$ value, the faster the enzyme reaction speed was. The $K_m$ values from small to large were 3.85 mM for Rc, 4.08 mM for Rb1, 8.85 mM for Rb3, 9.09 mM for Rb2, 9.70 mM for Rg3(S), 11.4 mM for Rd and 12.9 mM for F2; and $V_{max}$ value from large to small was 23.2 mM/h for Rc, 16.6 mM/h for Rb1, 14.6 mM/h for Rb3, 14.3 mM/h for Rb2, 1.81mM/h for Rg3(S), 1.40 mM/h for Rd, and 0.41 mM/h for F2. According to the $V_{max}$ and $K_m$ values of the ginsenosidase type III, the hydrolysis speed of these substrates by the enzyme was Rc>Rb1>Rb3>Rb2>Rg3(S)>Rd>F2 in order.
Journal of The Korean Association For Science Education
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제27권3호
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pp.212-224
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2007
Metabolism is one of the pivotal biology concepts, but many students have difficulty understanding it. The purposes of this study were (1) to explore 8th graders' conceptual change of an enzyme after classes of experimenting enzyme reaction and interpreting data using systematic analogies, (2) to discover the role of systematic analogies to enhance students' understanding, and (3) to explain students' difficulty understanding concepts as the ontological features. Systematic analogies were designed to encourage students to interpret their lab activities on enzyme reaction rates. Data were collected by using the pre-test and the post-test of open-ended form, students' worksheets, and interviews with students. After classes, the number of students to engender scientific conceptions about the function of enzyme, its structure, and its mechanism has increased. But more students failed to understand the reaction mechanisms having ontological features of equilibration processes than to understand the function of enzyme having ontological features of event-like processes. Even though the concepts of enzymes are hard to grasp owing to their ontological attributes of equilibration processes, a part of students' conceptions successfully progressed from the idea belonging to event-like processes to one belonging to equilibration processes. And systematic analogies were found to contribute in enhancing students' conceptual change of the enzyme reaction.
The mode of transglycosylation reaction observed during the action of low-molecular-weight 1,4-$\beta$-D-glucan glucanohydrolase (EC 3.2.1.4) purified from Trichoderma koningii ATCC 26113 was investigated using $^{1}H-NMR $spectroscopy. The H-1 proton resonances were analysed. After reaction of the enzyme with cellotriose, the reaction products were separated by high performance liquid chromatography. H-1 resonances of the products were consisted with those of cellobiose, cellotriose and cellotitraose, respectively. Therefore it was proved that all the reaction products formed by the action of the enzyme on cellooligosaccharides, including transglycosylation products, possess only H-NMR -1,4-glycosidic linkage(s).
The aim of this study was to prepare diacylglycerol (DAG) by enzymatic glycerolysis of lard. The effects of reaction parameters such as lipase type, reaction temperature, enzyme amount, substrate molar ratio (lard/glycerol), reaction time, and magnetic stirring speed were investigated. Lipozyme RMIM was found to be a more active biocatalyst than Novozym 435, and the optimal reaction conditions were 14:100 (W/W) of enzyme to lard substrate ratio, 1:1 of lard to glycerol molar ratio, and 500 rpm magnetic stirring speed. The reaction mixture was first incubated at $65^{\circ}C$ for 2 h and then transferred to $45^{\circ}C$ for 8 h. At the optimum reaction conditions, the conversion rate of triacylglycerol (TAG) and the content of DAG in the reaction mixture reached 76.26% and 61.76%, respectively, and the DAG content in purified glycerolized lard was 82.03% by molecular distillation. The distribution of fatty acids and Fourier transform infrared spectra in glycerolized lard samples were similar to those in lard samples. The results revealed that enzymatic glycerolysis and molecular distillation can be used to prepare more highly purified DAG from lard.
Enzymatic synthesis of sugar fatty acid esters was investigated in organic solvent using Candida rugosa lipase. To overcome sugars insolubility in organic solvent, sugar absorption procedure was done on a silica gel. The product yield was determined by using ion Chromatography, with various factors such as reaction time, enzyme fatty acid molar ratio, number of carbon in fatty acid.
Capsaicin(8-methyl-N-vanillyl-6-nonenamide) is the principal pungent component of Capsicum fruits. This work is directed to the capsaicin-hydrolyzing enzyme playing a key role in the rate limiting and critical step of capsaicin metabolism. In order to get precise information on the enzyme's subcellular location, rat liver homogenate was divided into six subcellular fractions by differential centrifugation technique: crude nuclear pellet, PNS(post nuclear supernatant) fraction, lysosomal pellet, cytosol, Tris wash fraction, micrisomes. Capsaicin-hydrolysing enzyme activity was analysed by high performance liquid chromatography(HPLC). This enzyme was found at the highest specific activity in the microsomal fraction and co-distributed with marker enzymes of the endoplasmic reticulum, NADPH-cytochrome c reductase and nucleoside diphosphatase. This is compatible with the result of ninhydrin color reaction of vanillylamine, primary metabolite of capsaicin hydrolysis, on thin layer chromatography(TLC). This enzyme is most active at pH $8.0{\sim}9.0$. Definite subcellular location of this enzyme will make it easy to proceed with further study.
The stabilization of Aspergillus sp. $\alpha$-amylase was attained by modification with periodate-oxidized sol-uble starch. The pH stability of modified enzyme was increased at pH 3~4 and 9~11 in the presence of $\alpha$-cyclodextrin($\alpha$-CD) compared with that of native enzyme. Thermal stability of the modified enzyme was increased. After treatment at 6$0^{\circ}C$ for 30min the activity remained 20% for the enzyme modified at pH 9.7 in the presence of $\alpha$-CD and tested in the presence of $\alpha$-CD 10% for the enzyme modified at pH 9.7 in the presence of $\alpha$-CD 0% for the native enzyme. The native enzyme and modified enzyme showed one peak in HPLC. The substrate specificity of the modified enzyme was not changed in HPLC analysis of reaction product.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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