The effects of ultrasound and ascorbic acid cotreatment on the browning inhibition and microbial growth of fresh-cut Tsugaru apples were investigated. The prepared samples were dipped in distilled water (Cont) or 1% (w/v) ascorbic acid solution (AA) and were then ultrasonicated in distilled water (US) or 1% (w/v) ascorbic acid solution (AA+US). The samples were then packed in a 0.04mm polypropylene bag ($20{\times}15$ cm) and were stored at $10^{\circ}C$ for eight days. The AA+US treated samples showed high $L^*$ and low $a^*$, $b^*$ values as well as inactivated PPO activity. The growth of the total aerobic bacteria also inhibited the AA+US treated samples more. The physicochemical properties were not different among all the samples. It was demonstrated in this paper that the ultrasonication treatment with ascorbic acid prevented the enzymatic browning of and microbial growth in fresh-cut Tsugaru apples.
Many literatures focus on the biological relevance and the identification of biomarkers for disease activity assessment while less attention has been paid to the development of standard procedures for sample preparation and storage based on liquid chromatography technique. The influencing factors including protein precipitation, storage temperature, storage time, and reconstitution by ultra pure water were analyzed employing HPLC-DAD. The effects were investigated from five participants over three months by principal components analysis (PCA) and the values of percent changes (PC). The samples with protein precipitation might slow the rate of bacterial enzymatic conversion. After protein precipitation, the average PC of urine samples ($0.136{\pm}0.013$, n = 5) is relatively less than that of the serum samples ($0.173{\pm}0.026$, n = 5) for three months. Minimal effects on metabolic profiles of serum and urine (PC < 0.15) are reasonable for metabolomic studies after protein precipitation and storage at $-20^{\circ}C$ for two months.
Carboxypeptidase B from Salmo Salar eggs was purified by CM-cellulose, 0.5 ammonium sulfate saturation, DEAE-cellulose, and Sephadex G-75 gel filtration and its enzymatic properties were investigated. Optimum temperature was 55$^{\circ}C$, pH optima were 4.0 and 7.0 at 37$^{\circ}C$, and the enzyme was stable at pH 2.0∼3.0 and 5.5∼7.0 for 1.5h. This enzyme showed substrate specificity hydrolyzing the peptide bond of glycyl-L-arginine. Its K$_m$ values was 0.21mM, and the enzyme activity was stimulated by Cu$^{2+}$ and Fe$^{3+}$, while inhibited by Zn$^{2+}$. The lysine was found to be competitive inhibitor and its K$_i$ value was determined to be 4.3mM. Molecular weight of this enzyme was determined to be 36,400 daltons by SDS-PAGE and the enzyme was monomeric protein composed of 19 kinds of amino acid residues.
The focus of this study was to investigate the influences of enzymatic scavengers of active oxygen metabolites and phospholipase $A_2$ inhibitor on hepatic secretory and microsomal function during hepatic ischemia/reperfusion. Rats were pretreated with free radical scavengers such as superoxide dismutase (SOD), catalase, deferoxamine and phospholipase $A_2$ inhibitor such as quinacrine and then subjected to 60 min. no-flow hepatic ischemia in vivo. After 1, 5 hr of reperfusion, bile was collected, blood was obtained from the abdominal aorta, and liver microsomes were isolated. Serum aminotransferase (ALT) level was increased at 1 hr and peaked at 5 hr. The increase in ALT was significantly attenuated by SOD plus catalase, deferoxamine and quinacrine especially at 5 hr of reperfusion. The wet weight-to-dry weight ratio of the liver was significantly increased by ischemia/reperfusion. SOD and catalase treatment minimized the increase in this ratio. Hepatic lipid peroxidiltion was elevated by ischemia/reperfusion, and this elevation was inhibited by free radical scavengers and quina crine. Bile flow and cholate output, but not bilirubin output, were markedly decreased by ischemia/reperfusion and quinacrine restored the secretion. Cytochrome $P_{450}$ content was decreased by ischemia/reperfusion and restored by free radical scavengers and quinacrine to the level of that of the sham operated group. Aminopyrine N-demethylase activity was decreased and aniline p-hydroxylase was increased by ischemia/reperfusion. The changes in the activities of the two enzymes were prevented by free radical scavengers and quinacrine. Our findings suggest that ischemia/reperfusion diminishes hepatic secretory functions as well as microsomal drug metabolizing systems by increasing lipid peroxidation, and in addition to free radicals, other factors such as phospholipase $A_2$ are involved in pathogenes of hepatic dysfunction after ischemia/reperfusion.
Mammalian patatin-like phospholipase domain containing proteins (PNPLAs) play critical roles in triglyceride hydrolysis, phospholipids metabolism, and lipid droplet (LD) homeostasis. PNPLA7 is a lysophosphatidylcholine hydrolase anchored on the endoplasmic reticulum which associates with LDs through its catalytic region (PNPLA7-C) in response to increased cyclic nucleotide levels. However, the interaction of PNPLA7 with LDs through its catalytic region is unknown. Herein, we demonstrate that PNPLA7-C localizes to the mature LDs ex vivo and also colocalizes with pre-existing LDs. Localization of PNPLA7-C with LDs induces LDs clustering via non-enzymatic intermolecular associations, while PNPLA7 alone does not induce LD clustering. Residues 742-1016 contains four putative transmembrane domains which act as a LD targeting motif and are required for the localization of PNPLA7-C to LDs. Furthermore, the N-terminal flanking region of the LD targeting motif, residues 681-741, contributes to the LD targeting, whereas the C-terminal flanking region (1169-1326) has an anti-LD targeting effect. Interestingly, the LD targeting motif does not exhibit lysophosphatidylcholine hydrolase activity even though it associates with LDs phospholipid membranes. These findings characterize the specific functional domains of PNPLA7 mediating subcellular positioning and interactions with LDs, as wells as providing critical insights into the structure of this evolutionarily conserved phospholipid-metabolizing enzyme family.
Mutants of E. coli which showed increased sensitivity to MMS(methylmethane sulfonate)were isolated by MNNG mutagenesis and characterized by enzymatic assay, survival of simple alkylating agents and host-cell reactivation. E.coli mutant, 5-62, which showed absolute deficiency in 3-methyladenine DNA glycosylase II activity and had low capability of reactivating MMS-treated phage charon 35 was very sensitive to MMS and MNNG. NNS gene which confered resistance to the lethal effects of MMS was cloned in 5-62 strain. 5-62 mutants carrying recombinant plasmid, pMRG 1, which acquired resistance to the lethal effects of MMS had normal sensitivity to MNNG. Resistance to MMS was somewhat increased after they were treated with 0.5.$\mu$g MNNG/ml for 2 hours at $37^{\circ}C$. Although recombinant plasmid, pMRG 1, did not complement alk A mutation in 5-62 and ada mutation in 1-27 mutnat, mutnats transformed with this plasmid showed more capability of reactivating MMS treated phage than mutants.
Protease widely exists in the digestive tract of animals and humans, playing a very important role in protein digestion and absorption. In this study, a high protease-producing strain Planomicrobium sp. L-2 was isolated and identified from the digestive tract of Octopus variabilis. The strain was identified by physiological and biochemical experiments and 16S rDNA sequences analysis. A protease was obtained from the strain Planomicrobium sp. L-2 through ammonium sulfate precipitation, dialysis and enrichment, DEAE-Sephadex A50 anion-exchange chromatography, and Sephadex G-100 gel chromatography. The molecular weight and properties of the protease were characterized, including optimum temperature and pH, thermal stability, protease inhibitions and metal ions. According to our results, the protease from Planomicrobium sp. L-2 strain designated as F1-1 was obtained by three-step separation and purification from crude enzyme. The molecular weight of the protease was 61.4 kDa and its optimum temperature was $40^{\circ}C$. The protease F1-1 showed a broad pH profile for casein hydrolysis between 5.0~11.0. No residual activity was observed after incubation for 40 min at $60^{\circ}C$ and 60 min at $50^{\circ}C$. F1-1 protease was inhibited by $Mn^{2+}$, $Hg^{2+}$, $Pb^{2+}$, $Zn^{2+}$, and $Cu^{2+}$ ions, as well as PMSF, indicating that the protease F1-1 was a serine protease. Additionally, research basis provided by this study could be considered for industrial application of octopus intestinal proteases.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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1979.04a
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pp.113.2-114
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1979
$\beta-Galactosidase$ is an enzyme which catalizes hydrolysis of lactose, a natural substrate, to glucose and galctose and transferring some monosac-charide units to active acceptors as sugar or alcohol. The occurence of $\beta-Galactosidase$ is known in various microorganisms, animals and higher plants and has been studied by many investigatigators. Especially, a great deal of articles for the enzyme of E. coli have been presented in genetic control mechanism and induction-repression effects of proteins, On the other hand, in the dairly products industry, it is important to hydrolyes lactosd which is the principal sugar of milk and milk products. During the last few years, the interest in enzymatic hydrolysis of milk lactose has teen increased, because of the lactose intolerence in large groups of the population. Microbial $\beta-Galactosidases$ are considered potentially most suitable for processing milk to hydrolyse lactose and, in recent years, the immobilized enzyme from yeast has been examined. Howev, most of the microbial $\beta-Gal$ actosidase are intracellular enzymes, except a few fungal $\beta-Gala-$ ctosidases, and extracellular $\beta-Galactosidase$ which may be favorable to industrial applieation is not so well investigated. On this studies, a mold producing a potent extracellular $\beta-Galactosidase$ was isolated from soil and identified as an imperfect fungus, Beauveria bassians. In this strain, both extracellular and intracellular $\beta-Galactosidases$ were produced simultaneously and a great increase of the extracellular production was acheved by improving the cultural conditions. The extracellular enzyme was purified more than 1, 000 times by procedures including Phosphocellulose and Sephadex G-200 chromatographies. Several characteristics of the enzymewas clarified with this preparation. The enzyme has a main subunit of molecular weight of 80, 000 which makes an active aggregate. And at neutral pH range, it has optimum pH for activity and stability. The Km value was determined to be 0.45$\times$10$^{-3}$ M for $o-Nitrophenyl-\beta-Galactoside.$ In any event, it is interesting to sttudy the $\beta-Galactosidase$ of B. bassiana for the mechanism of secretion and conformational structure of enzyme.
An ${\alpha}$-L-arabinofuranosidase (TmAFase) from Thermotoga maritima MSB8 is a highly thermostable exo-acting hemicellulase that exhibits a relatively higher activity towards arabinan and arabinoxylan, compared with other glycoside hydrolase 51 family enzymes. In the present study, we carried out the enzymatic characterization and structural analysis of TmAFase. Tight domain associations found in TmAFase, such as an inter-domain disulfide bond (Cys306 and Cys476) in each monomer, a novel extended arm (amino acids 374-385) at the dimer interface, and total 12 salt bridges in the hexamer, may account for the thermostability of the enzyme. One of the xylan binding determinants (Trp96) was identified in the active site, and a region of amino acids (374-385) protrudes out forming an obvious wall at the substrate-binding groove to generate a cavity. The altered cavity shape with a strong negative electrostatic distribution is likely related to the unique substrate preference of TmAFase towards branched polymeric substrates.
An alcohol oxidase from Hansenula polymorpha was strongly induced when cells were grown with 0.5% methanol supplementation as the carbon source. The induced Hansenula polymorpha alcohol oxidase was purified to electrophoretic homogeneity by using DEAE-Sephacel and Mono Q column chromatographys. The enzyme oxidized mainly primary aliphatic alcohols and exhibited high substrate specificity towards ethanol and methanol. The activity of the enzyme optimally proceeded at pH 8.5 and $50^{\circ}C$. The midpoint of the temperature-stability curve for the enzyme was approximately $52^{\circ}C$ and the enzyme was not completely inactivated even at $65^{\circ}C$ temperature. The enzyme showed resistance toward detergents and highly stable over 7 weeks of storage condition. This Hansenula polymorpha alcohol oxidase may be useful for the enzymatic determination of alcohol and for the industrial production of alcohols and aldehydes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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