The two-component type enzyme amplified amperometric DNA assay is described to use an ambient $O_2$ of the substrate of the DNA labeling enzyme. Although the assay detects DNA only at > 0.5M concentration, a concentration $\~10^6$ fold higher than the sandwich-type enzyme amplified amperometric DNA assay, it can be run with an always available substrate. The assay utilizes screen-printed carbon electrodes (SPEs) which were pre-coated by a co-electrodeposited film of an electron conducting redox hydrogel and a 37-base long single-stranded DNA sequence. The DNA in the electron conducting film hybridizes and captures, when present, the 37-base long detection-DNA, which is labeled with bilirubin oxidase (BOD), an enzyme catalyzing the four-electron reduction of $O_2$ to water. Because the redox hydrogel electrically connects the BOD reaction centers to the electrode, completion of the sandwich converts the film from non-electrocatalytic to electrocatalytic for the reduction of $O_2$ to water when the electrode is poised at 200 mV vs. Ag/hgCl. The advantage or the assay over the earlier reported sandwich type enzyme amplified amperometric DNA assay, in which the amplifying enzyme was horseradish peroxidase, is that it utilizes ambient $O_2$ instead of the less stable and naturally unavailable $H_2O_2$.
In order to investigate electrochemical behavior and biocompatibility of Co-Cr dental alloy by electrochemical corrosion test and MTT assay, the xCo-25Cr-yW-zNi alloys were used in this study. Samples of Co-Cr-W-Ni alloys were manufactured using arc melting furnace. The microstructure of the alloys was examined by optical microscopy (OM), Field emission scanning electron microscopy (FE-SEM), energy dispersive X-ray spectroscopy (EDS), X-ray diffraction (XRD), MTT assay, and corrosion test. Corrosion resistance increased slightly as cobalt (Co) content increased. And bioactivity was concerned with nickel (Ni) and tungsten (W). Biocompatibility of Co-Cr alloy depended on Ni and W contents.
JuKyung Lee;Hye Bin Park;Chae Won Seo;Chae Won Seo;SangHee Kim
센서학회지
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제32권6호
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pp.412-417
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2023
There is increasing interest in the rapid and highly sensitive monitoring of cell viability in biological and toxicological research. Conventional methods depend on optical assays using Water Soluble Tetrazolium-8 (WST-8) or 3-(4,5-dimethylthiazolyl-2)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay, which requires a large volume of samples and special instruments, necessitating shipment of clinical samples to laboratories. This paper reports on the development of a rapid and sensitive electrochemical (EC) sensor using screen printed electrode (SPE) and surface modification using 4'-mercapto-N-phenylquinone diamine (4'-NPQD), as double electron mediators, for monitoring cell viability via the measurement of nicotinamide adenine dinucleotide (NADH). We used the sensor to observe the viability of MCF-7 and doxorubicin (Dox)-treated cells. The oxidation current of NADH was measured via chronoamperometry (CA), and the EC results showed a good linear relationship when compared with NADH quantification using WST-8 assay. The analysis time was only 10 s and limit of detection (LOD) of NADH was 1.78 µM. Our EC method has the potential to replace conventional WST assays for cell viability and cytotoxicity experiments.
There is an increasing interest in monitoring of specific biomarker for determining progression of a disease or efficacy of a treatment. Conventional method for quantification of specific biomarkers as enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) has high material costs, long incubation periods, requires large volume of samples and involves special instruments, which necessitates clinical samples to be sent to a lab. This paper reports on the development of an electrochemical biosensor to measure total immunoglobulin E (IgE), a marker of asthma disease that varies with age, gender, and disease in concentrations from 0.3-1000 ng/mL with consuming 20 µL volume of whole blood sample. The sensor provides rapid, accurate, easy, point-of-care measurement of IgE, also, sequential monitoring of total IgE with ovalbumin (OVA) induced mice is another application of sensor. Taken together, these results provide an alternative way for detection of biomarkers in whole blood with low volumes and long-term ex-vivo assessments for understanding the progression of a disease.
WR 2721 (S-2-(3-aminopropylaminoethylphosphorothioate) is a radioprotective drug that is now undergoing clinical trials in the United States and Japan. a liquid chromatographic electrochemical method for the determination of WR 2721 an WR 3689 [S-2-(3-methylaminopropylamino)ethylphorothioate] in human plasma was developed in this study. This method includes the use of a Hg/Au electrochemical detector and a cyano column for the direct measurement of WR 2721 and WR 3689 in plasma. An analog of WR 2721, WR 149846 was used as an internal standard. WR 2721 and WR 3689 could be well separated from the solvent front, with a mobile phase of acetonitrile-water (20:80), 0.1M acetic acid and 1.2 mM sodium octane sulfonate. This method was shown to be precise. Both intra-day and inter-day results were within 10% CV. Also, sample preparation was fairly simple. Since WR 2721 and WR 3689 were unstable at room temperature, it was essential to use an automatic sample processor with a refrigerator, especially for carrying out routine analyses.
An amperometric immunosensor for the determination of rabbit IgG is proposed. The immunoassay utilizes a screen-printed carbon electrode on which osmium redox polymer is electrodeposited. This immunoassay detects 0.1 ng/ml of rabbit IgG, which is ${\sim}10^2$ fold higher than the most sensitive enzyme amplified amperometric immunoassay. The assay utilizes a screen-printed carbon electrode which was pre-coated by a co-electrodeposited film of an electron conducting redox hydrogel and a rabbit IgG. The rabbit IgG in the electron conducting film conjugates captures, when present, the anti-rabbit IgG. The captured anti-rabbit-IgG is labeled with horseradish peroxidase (HRP) which catalyzes the two-electron reduction of $H_2O_2$ to water. Because the redox hydrogel electrically connects HRP reaction centers to the electrode, completion of the sandwich converts the film from non-electrocatalytic to electro-catalytic for the reduction of $H_2O_2$ to $H_2O$ when the electrode is poised at 200 mV vs. Ag/AgCl.
A label-free DNA detection method was developed for a simple electrochemical DNA sensor with a short assay time. Self-assembled monolayers of peptide nucleic acid were used as a probe on gold electrodes. The formation of the self-assembled monolayers on the gold electrodes was successfully checked by means of cyclic voltammetry. The target DNA, hybridized with peptide nucleic acid, can be detected by the anodic peak current of ferrocene dendrimers, which interact electrostatically with the target DNA. This anodic peak current was measured by square wave voltammetry at 0.3 V to decrease the detection limit on the order of the nanomolar concentrations. As a result, the label-free electrochemical DNA sensor can detect the target DNA in concentrations ranging from 1 nM to $1\;{\mu}M$ with a detection limit of 1 nM.
A investigation of electrochemical analysis of antibiotics Neomycin ($C_{23}H_{46}N_6O_{13}$) was searched using electrochemical square wave (SW) stripping and cyclic voltammetry (CV) using working sensor of the modified carbon nanotube combination electrodes, optimum diagnostic parameters were searched by anodic stripping, final conditions were attained to working range of 1.0-14.0 ng/L, detection limit (S/N) was found to be 0.6 ng/L. The developed method was discovered to be fitting in quality control in the food, pharmaceutical and other manufacturing sectors.
Nitric oxide (NO) is a critical biological mediator involved in numerous diseases. However, the short lifetime of this molecule in biological conditions can make its study in situ complicated. Here, we review some recent results on the role of NO in angiogenesis, obtained using a biocompatible microelectrode array. This simple system allowed for the quick and easy quantification of NO released from cells grown directly on the surface of the sensor. We have used this technology to demonstrate that angiogenin induces NO release, and to partially elucidate its intracellular transduction pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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