Ubiquitination is a post-translational modification that is involved in the quality control of proteins and responsible for modulating a variety of cellular physiological processes. Protein ubiquitination and deubiquitination are reversible processes that regulate the stability of target substrates. The ubiquitin proteasome system (UPS) helps regulate tumor-promoting processes, such as DNA repair, cell cycle, apoptosis, metastasis, and angiogenesis. The UPS comprises a combination of ubiquitin, ubiquitin-activating enzymes (E1), ubiquitin-conjugating enzymes (E2), and ubiquitin-ligase enzymes (E3), which complete the degradation of target proteins. Ubiquitin-conjugating enzymes (UBE2s) play an inter-mediate role in the UPS process by moving activated ubiquitin to target proteins through E3 ligases. UBE2s consist of 40 members and are classified according to conserved catalytic ubiquitin-conjugating (UBC) domain-flanking extensions in humans. Since UBE2s have specificity to substrates like E3 ligase, the significance of UBE2 has been accentuated in tumorigenesis. The dysregulation of multiple E2 enzymes and their critical roles in modulating oncogenic signaling pathways have been reported in several types of cancer. The elevation of UBE2 expression is correlated with a worse prognosis in cancer patients. In this review, we summarize the basic functions and regulatory mechanisms of UBE2s and suggest the possibility of their use as therapeutic targets for cancer.
Transcription factor NRF2 (NF-E2-related factor 2) is a master regulator of cellular responses against environmental stresses. NRF2 induces expression of detoxification and antioxidant enzymes and suppresses inductions of pro-inflammatory cytokine genes. KEAP1 (Kelch-like ECH-associated protein 1) is an adaptor subunit of CULLIN 3 (CUL3)-based E3 ubiquitin ligase. KEAP1 regulates the activity of NRF2 and acts as a sensor for oxidative and electrophilic stresses. NRF2 has been found to be activated in many types of cancers with poor prognosis. Therapeutic strategies to control NRF2-overeactivated cancers have been considered not only by targeting cancer cells with NRF2 inhibitors or NRF2 synthetic lethal chemicals, but also by targeting host defense with NRF2 inducers. Understanding precise molecular mechanisms how the KEAP1-NRF2 system senses and regulates the cellular response is critical to overcome intractable NRF2-activated cancers.
Post-translational modification is an efficient process to rapidly transduce external stimulus into cellular response. Ubiquitination is a typical post-translational modification which is a highly conserved process in eukaryotes. UPS (Ubiquitin/Proteasome System) mediated by the ubiquitination is to target diverse cellular proteins for degradation. Among E3 ubiquitin ligases that function as the key determinant for substrate recognition, CRL (cullin–RING E3 ubiquitin ligase) is the largest family and forms the complex composed of cullin, RBX1, adaptor and substrate receptor. Although CRL1, also known as SCF complex, has been widely researched for its biological role, the functional studies of CRL4 have been relatively elusive. In Arabidopsis, there are 119 substrate receptors named DCAF (DDB1 CUL4 Associated Factor) proteins for CRL4 and a fraction of DCAF proteins have been identified for their potential functions so far. In this paper, current understanding on structure and biological roles of plant CRL4 complexes in a diverse of cellular events is reviewed, especially focusing on CRL4 substrate receptors. Moreover, the regulatory mechanism of CRL4’s activity is also introduced. These studies will be helpful to further understand the signal transduction pathways in which such CRL4 complexes are involved and give a clue to establish the action network of entire CRL4 complexes in plants.
Homeostatic regulation of meristematic stem cells accomplished by maintaining a balance between stem cell self-renewal and differentiation is critical for proper plant growth and development. The quiescent center (QC) regulates root apical meristem homeostasis by maintaining stem cell fate during plant root development. Cell cycle checkpoints, such as anaphase promoting complex/cyclosome/cell cycle switch 52 A2 (APC/CCCS52A2), strictly control the low proliferation rate of QC cells. Although APC/CCCS52A2 plays a critical role in maintaining QC cell division, the molecular mechanism that regulates its activity remains largely unknown. Here, we identified SCFFBS1, a ubiquitin E3 ligase, as a key regulator of QC cell division through the direct proteolysis of CCS52A2. FBS1 activity is positively associated with QC cell division and CCS52A2 proteolysis. FBS1 overexpression or ccs52a2-1 knockout consistently resulted in abnormal root development, characterized by root growth inhibition and low mitotic activity in the meristematic zone. Loss-of-function mutation of FBS1, on the other hand, resulted in low QC cell division, extremely low WOX5 expression, and rapid root growth. The 26S proteasome-mediated degradation of CCS52A2 was facilitated by its direct interaction with FBS1. The FBS1 genetically interacted with APC/CCCS52A2-ERF115-PSKR1 signaling module for QC division. Thus, our findings establish SCFFBS1-mediated CCS52A2 proteolysis as the molecular mechanism for controlling QC cell division in plants.
The p53 protein plays a pivotal role in tumor suppression. The cellular level of p53 is normally kept low by proteasome-mediated degradation, allowing cell cycle progression and cell proliferation. Under stress conditions, such as DNA damage, p53 is stabilized and activated through various post-translational modifications of itself as well as of its regulatory proteins for induction of the downstream genes responsible for cell cycle arrest, DNA repair, and apoptosis. Therefore, the level of p53 should be tightly regulated for normal cell growth and for prevention of the accumulation of mutations in DNA under stress conditions, which otherwise would lead to tumorigenesis. Since the discovery of Mdm2, a critical ubiquitin E3 ligase that destabilizes p53 in mammalian cells, nearly 20 different E3 ligases have been identified and shown to function in the control of stability, nuclear export, translocation to chromatin or nuclear foci, and oligomerization of p53. So far, a large number of excellent reviews have been published on the control of p53 function in various aspects. Therefore, this review will focus only on mammalian ubiquitin E3 ligases that mediate proteasome-dependent degradation of p53.
Aurora B is an important kinase involved in dynamic cellular events in mitosis. Aurora B activity is controlled by several post-translational modifications (PTMs). Among them, E3 ubiquitin ligase-mediated ubiquitination plays crucial roles in controlling the relocation and degradation of Aurora B. Aurora B, ubiquitinated by different E3 ligases, moves to the exact site for its mitotic function during metaphase-anaphase transition and is then degraded for cell cycle progression at the end of mitosis. However, how the stability of Aurora B is maintained until its degradation has been poorly understood. Recently, we have found that USP35 acts as a deubiquitinating enzyme (DUB) for Aurora B and affects its stability during cell division, thus being involved in the regulation of mitosis. In this review, we discuss the USP35-mediated deubiquitination of Aurora B and the regulation of mitotic progression by USP35.
Rho guanine nucleotide dissociation inhibitor 1 (RhoGDI1) plays important roles in numerous cellular processes, including cell motility, adhesion, and proliferation, by regulating the activity of Rho GTPases. Its expression is altered in various human cancers and is associated with malignant progression. Here, we show that RhoGDI1 interacts with Cullin 3 (CUL3), a scaffold protein for E3 ubiquitin ligase complexes. Ectopic expression of CUL3 increases the ubiquitination of RhoGDI1. Furthermore, potassium channel tetramerization domain containing 5 (KCTD5) also binds to RhoGDI1 and increases its interaction with CUL3. Ectopic expression of KCTD5 increases the ubiquitination of RhoGDI1, whereas its knockdown by RNA interference has the opposite effect. Depletion of KCTD5 or expression of dominant-negative CUL3 (DN-CUL3) enhances the stability of RhoGDI1. Our findings reveal a previously unknown mechanism for controlling RhoGDI1 degradation that involves a CUL3/KCTD5 ubiquitin ligase complex.
The molecular mechanisms by which a variety of naturally-occurring dietary compounds exert chemopreventive effects have been a subject of intense scientific investigations. Induction of phase II detoxification and anti-oxidant enzymes through activation of Nrf2/ARE-dependent gene is recognized as one of the major cellular defense mechanisms against oxidative or xenobiotic stresses and currently represents a critical chemopreventive mechanism of action. In the present review, the functional significance of Keap1/Nrf2 protein module in regulating ARE-dependent phase II detoxification and anti-oxidant gene expression is discussed. The biochemical mechanisms underlying the phosphorylation and expression of Keap1/Nrf2 proteins that are controlled by the intracellular signaling kinases and ubiquitin-mediated E3 ligase system as well as control of nucleocytoplasmic translocation of Nrf2 by its innate nuclear export signal (NES) are described.
Bacteria of Shigella spp. are responsible for shigellosis in humans, a disease characterized by destruction of the colonic epithelium that is induced by the inflammatory response elicited by invasive bacteria. They use a type III secretion system injecting effector proteins into host cells to induce their entry into epithelial cells and triggers apoptosis in macrophages. We present evidence that the effector OspG is a protein kinase that binds various ubiquitinylated ubiquitin-conjugating enzymes (E2s) and blocks degradation of phospho-$I{\kappa}B{\alpha}$ induced upon entry of bacteria into epithelial cells. Transfection experiments confirmed that OspG interferes with the $NF-{\kappa}B$ activation patway by preventing phospho-$I{\kappa}B{\alpha}$ degradation, suggesting that OspG inactivates a component of the $SCF^{{\beta}-TrCP}$ ubiquitin ligase complex (E3) involved in phospho-$I{\kappa}B{\alpha}$ ubiquitination. Upon infection of ileal loops in rabbits, the ospG mutant induced a stronger inflammatory response compared with the wild-type strain, indicating that OspG down-regulates the host innate response induced by invasive bacteria.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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