Park, Yong-Eui;Yang, Deok-Chun;Park, Kwang-Tae;Soh, Woong-Young;Hiroshi Sano
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1999.07a
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pp.85-89
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1999
Somatic embryogendesis is one of good examples of the basic research for plant embryo development as well as an important technique for plant biotechnology. This paper describes the direct somatic embryogenesis from zygotic embryos of Panax ginseng is reversely related to normal axis growth of zygotic embryos by the experiment of various chemical treatments. Under the normal growth condition, the apical tips of embryo axis produced an agar-diffusible substance, which suppressed somatic embryo development from cotyledons. Although the cells of zygotic embryos were released from the restraint of embryo axis, various factors were still involved for somatic embryo development. Electron microscopic observation revealed that the ultrastructure of cells of cotyledon epidermis markedly changed before initiation of embryonic cell division, probably indicating reprogramming events into the cells embryogenically determined state. Polar accumulation of endogenous auxin or cell-cell isolation by plasmolysis pre-treatment is the strong inducer for the somatic embryo development. The cells for the process of somatic embryogenesis might be determined by the physiological conditions fo explants and medium compositions. Direct somatic embryos from cotyledons fo ginseng were originated eithrer from single or multiple cells. The different cellular origin of somatic embryos was originated either from single or multiple cell. The different cellular origin of somatic embryos was depended on various developmental stages of cotyledons. Immature meristematic cotyledons produced multiple cell-derived somatic embryos, which developed into multiple embryos. While fully mature cotyledons produced single cell-derived single embryos with independent state. Plasmolysis pretreatment of cotyledons strongly enhanced single cell-derived somatic embryogenesis. Single embryos were converted into normal plantlets with shoot and roots, while multiple embryos were converted into only multiple shoots. GA3 or a chilling treatment was prerequisite for germination and plant conversion. Low concentration of ammonium ion in medium was necessary for balanced growth of root and shoot of plantlets. Therefore, using above procedures, successful plant regeneration of ginseng was accomplished through direct single embryogenesis, which makes it possible to produce genetically transformed ginseng efficently.
In vitro multiplication of Curculigo orchioides was achieved by direct somatic embryogenesis in young leaf segments. Immature leaf segments of about 0.5 cm in length were cultured on MS medium supplemented with different concentrations of BAP (2-10 $\mu{M}$) or Kin (2-10 $\mu{M}$). Optimum response in terms of per cent cultures responding (89%) and the number of embryos per explant (16) were observed on MS medium supplemented with 8 $\mu$M BAP. The emergence of several somatic embryos on the adaxial side of the leaf segments was observed one month after the culture. Germinated somatic embryos were grown up to about 1.5 cm length before transferring to maturation medium. For maturation, the individual embryos were isolated and transferred to MS medium supplemented with BAP (5 $\mu{M}$) and NAA (0.5 $\mu{M}$). The plantlets emerged from the embryos were transferred to soil containing 1 peat: 1 sand with 90% success. The embryos were formed directly on the leaf segments without any callus phase. Direct regeneration of somatic embryos is important for the conservation of this endangered species, as rare somaclonal variants are likely to arise than from indirect regeneration.
The factors affecting direct somatic embryogenesis from different parts of explant in liquid culture of Scrophularia buergeriana were investigated. Direct somatic embryogenesis was dependent on the explant tissues and stem was the most efficient explant. Rapid shoot development occurred on stem after 3-week culture but roots were not developed yet. Plantlets were not formed through somatic embryogenesis after 3-week culture of petiole. Though direct somatic embryo was not observed from leaf segment culture for 3 weeks, normal plantlets were developed after 8-week culture. BA played the main role for somatic embryogenesis in liquid culture and adding of either IAA or NAA caused rather adverse effects. Culture of stem segments in MS liquid medium with BA at 0.5 mg/ l or 0.1 mg/ l was proved to be the most efficient method for producing plantlets through direct somatic embryos.
Kim, Yu-Jin;Lee, Ok-Ran;Kim, Kyung-Tack;Yang, Deok-Chun
Journal of Ginseng Research
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v.36
no.4
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pp.442-448
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2012
Somatic embryogenesis is one of good examples of the basic research for plant embryo development as well as an important technique for plant biotechnology such as medicinally important plants. Single embryos develop into normal plantlets with shoots and roots. Therefore, direct single embryogenesis derived from single cells is highly important for normal plant regeneration. Here we demonstrate that the cyclic secondary somatic embryogenesis in Panax ginseng Meyer is a permanent source of embryogenic material that can be used for genetic manipulations. Secondary somatic embryos were originated directly from the primary somatic embryos on hormone-free Murashige and Skoog medium, and proliferated further in a cyclic manner. EM medium (one third of modified MS medium [MS medium containing half amount of NH4NO3 and KNO3] with 2% to 3% sucrose) favored further development of proliferated secondary somatic embryos into plantlets with root system. The plantlets developed into plants with well-developed taproots in half-strength Schenk and Hildebrandt basal medium supplemented with 0.5% activated charcoal.
Jo, Jeong-Yon;Choi, Eun-Young;Choi, Dong-Su;Lee, Kwang-Woong
Journal of Plant Biology
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v.39
no.2
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pp.127-135
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1996
An efficient system of somatic embryogenesis was established for the red pepper plant (Capsicum annuum L. cv. Nokkwang) usign immature zygotic embryos. The size of the immature zygotic embryos and the concentrations of 2, 4-D and sucrose were found to be critical. Somatic embryos were induced via callus or directly from explants and regenerated into plantlets successfully. When zygotic embryos 1~2 mm long were cultured on the modified Murashige-Skoong (MS) medium supplemented with 2 mg/L 2, 4-D for 3 weeks in the dark, somatic embryos were induced directly from the apical region of zygotic embryos with the highest frequency being approximately 90%. To mature the somatic embryos, ABA and an ethylene inhibitor AgNO3 were used. The highest frequency of shoot regeneration (25% in each) resulted at 2$\mu$M ABA or 20$\mu$M AgNO3 treatment at rates 3.7 and 1.6 times control, respectively. Shoots developed mainly from the cotyledonary node on CoCl2-containing medium, and from the upper side of cotyledon on medium containing AgNO3 while the embryos on the control medium produced shoots from both the cotyledonary node and the upper region of cotyledons both at frequencies of 50%. Indirect somatic embryogenesis via callus was induced at an efficiency of approximately 10% with zygotic embryos 3~4 mm long cultured on MS medium containing 5~10 mg/L, 2, 4-D for 5~7 weeks under a continuous light condition. The plants regenerated from the somatic embryos were morphologically normal. Using scanning electron microscopy, the direct and indirect somatic embryogeneses were observed to follow the globular, heart and torpedo stages, similar to zygotic embryogenesis. Also, suspensors appeared in the early globular and ovoid-shaped late globular embryos during indirect somatic embryogenesis.
This experiments were carried out to determine the optimum concentrations of plant growth regulators for the direct embryogenesis from the cotyledon culture of Paeonia lactiflora Pall. Zygotic embryos rescued from true seeds were developed abnormally in the medium containing ABA. But somatic embryogenesis from cotyledons of abnormal seedlings was induced more effectively. Also the somatic embryogenesis from cotyledons was promoted in the medium containing ABA. The frequency of embryogenesis was maximum(59.9%) from the cotyledons cultured on MS medium containing 0.5 mg/L ABA on which the frequency of somatic embryos with two cotyledons was 22.6%.
Husaini, Amjad M.;Aquil, Samina;Bhat, Mukhtar;Qadri, Tabassum;Kamaluddin, Kamaluddin;Abdin, Malik Zainul
Journal of Crop Science and Biotechnology
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v.11
no.2
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pp.107-110
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2008
A high-efficiency, reproducible somatic embryogenesis system for strawberry cultivar Chandler was developed. Thirty-one somatic embryos per explant(max no.) were recorded in leaf discs which were cultured on medium containing MS salts+$B_5$ vitamins+2% glucose+4.0 mg $1^{-1}$TDZ(Thidiazuron) and incubated at $10{\pm}1^{\circ}C$ under darkness for one week followed by three weeks under 16-h photoperiod. The scanning electron microscopic(SEM) ontogeny revealed the normal development of somatic embryos from globular to heart-shaped and dissection microscopy from torpedo-shaped to cotyledonary-stage embryos. The maximum germination percentage of 48% could be obtained on MS medium containing kinetin(1.0 mg $1^{-1}$) and the maximum survival percentage(79%) of plantlets after four weeks was found to be in the mixture of vermiculite, peatmoss, and soilrite(1:1:1).
The effects of plant regulators on direct somatic embryogenesis in liquid culture of Rehmannia glutinosa were investigated and the proper explant for direct somatic embryo formation was studied. Direct somatic embryos were induced from leaf segments culture in the MS liquid medium containing 0.5 mg/l of both IAA and NAA, while IBA of 1.0 mg/l was required for the same effect. Many somatic embryos were directly formed at the concentration of 2.0 mg/l cytokinin such as BA, kinetin and zeatin, but somatic embryogenesis was relatively poor at above or below this level. Relatively more somatic embryos were induced in the combination of 1.0mg/l IAA and 2.0mg/l zeatin. Formation of somatic embryos begun after 6 weeks on stem segments, while 7 weeks both on petiole and leaf. However, overall production of somatic embryos after 8 weeks was higher in leaf segment than that of stem segment.
An efficient protocol has been developed for rapid mass propagation of sweetpotato from shoot-tips derived embryogenic callus. Optimal embryogenic callus was induced from shoot apical meristem explants on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1mg/L 2,4-D. The addition of casein hydrolysate in the media increased the embryogenesis efficiency of sweetpotato. Somatic embryos were easily induced from the embryogenic callus on MS basal medium containing 300-500mg/L casein hydrolysate without phytohormon. Treatment of casein hydrolysate (100∼300mg/L) with 1mg/L 2,4-D also improved the secondary embryonic efficiency from somatic embryos below 2mm in length. Plant regeneration was achieved via somatic embryogenesis and direct organogenesis. Regenerated planlets with well developed shoots and roots on MS basal medium were successfully transferred to soil.
Developmental anomalies in the plumule meristem of peanut (Arachis hypogaea L.) somatic embryos resulted in poor shoot differentiation and reduced plant recovery. Existing meristems with caulogenic potential have never been tested for embryogenesis in peanut. The present experiment was designed to test the mature zygotic embryo axis derived plumule with three meristems for somatic embryogenesis. Embryogenic masses and embryos developed from the caulogenic meristems in the axils. Exposure of 2 weeks in primary medium with $90.5{\mu}M$ 2,4-D suppressed the shoot tip differentiation temporarily which then regained the ability to form the shoot on withdrawal of 2,4-D. Exposure of 4 weeks in primary medium with $90.5{\mu}M$ 2,4-D suppressed the shoot tip differentiation irreversibly. No shoot formation was noted from the tips in any of the cultures which were in secondary medium with $13.6{\mu}M$ 2,4-D. Development of somatic embryos directly from axillary meristems was confirmed histologically. Conversion frequency of these embryos was 11%. Thus, in this report, we describe a method to obtain somatic embryos from the determined organogenic buds of the axillary meristem, by culturing the nodal explant vertically on embryo induction medium. It also displays the possibility of obtaining both embryogenic and organogenic potential in two parts of the same explant simultaneously. The possibility of extending this approach for genetic transformation in in vivo system through direct DNA delivery or Agrobacterium injection in meristems can also be explored. Using Agrobacterium rhizogenes, we have demonstrated the possibility of gene transfer in the axillary meristems of seed-derived plumule explant.
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