본 연구의 목적은 치과분야에서 줄기세포 공급원으로써 과잉치의 활용 가능성을 알아보고자 Real Time Quantitative Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction (Real Time qRT-PCR)법을 이용하여 발치된 과잉치 치수 유래 줄기세포 (supernumerary dental pulp stem cells, sDPSCs)로부터 상아모세포로의 분화여부를 관찰해 보는 것이었다. 이를 위해 상아모세포의 대표적인 발현인자로 알려진 alkaline phosphatase (ALP), osteocalcin (OC), osteonectin (ON), dentin matrix acidic phosphoprotein 1 (DMP-1) 그리고 dentin sialophosphoprotein(DSPP)의 발현을 분화제 처리 후 0일, 8일 그리고 14일째에 각각 Real Time qRT-PCR 법을 통해 상대적인 mRNA의 발현 양을 비교하여 변화 양상을 알아보았다. 또한 Alizarin-red solution 의 염색을 통해 sDPSCs가 분화제 처리 7일, 14일, 21일 그리고 28일째에 석회화 결절을 형성하는 정도를 시각적으로 확인해 보았다. Real Time qRT-PCR 결과 분화제 처리 8일째에 가장 높은 발현 양을 보이다가 14일째에 감소하는 추세를 나타내었으며, Alizarin-red solution 염색 결과는 7일째부터 흐리게 나타나다가 14일째에는 배지 전반에 걸쳐 진하게 염색되는 소견을 보였다. 따라서, sDPSCs를 이용한 연구에서 Real Time qRT-PCR법을 위한 분화제의 처리 기간은 8일 정도가 적절하며, Alizarin-red solution 염색은 14일이 적당한 것으로 사료된다.
Objectives: This study aimed to determine whether collagen triple helix repeat containing-1 (CTHRC1), which is involved in vascular remodeling and bone formation, can stimulate odontogenic differentiation and angiogenesis when administered to human dental pulp stem cells (hDPSCs). Materials and Methods: The viability of hDPSCs upon exposure to CTHRC1 was assessed with the WST-1 assay. CTHRC1 doses of 5, 10, and 20 ㎍/mL were administered to hDPSCs. Reverse-transcription polymerase reaction was used to detect dentin sialophosphoprotein, dentin matrix protein 1, vascular endothelial growth factor, and fibroblast growth factor 2. The formation of mineralization nodules was evaluated using Alizarin red. A scratch wound assay was conducted to evaluate the effect of CTHRC1 on cell migration. Data were analyzed using 1-way analysis of variance followed by the Tukey post hoc test. The threshold for statistical significance was set at p < 0.05. Results: CTHRC1 doses of 5, 10, and 20 ㎍/mL had no significant effect on the viability of hDPSCs. Mineralized nodules were formed and odontogenic markers were upregulated, indicating that CTHRC1 promoted odontogenic differentiation. Scratch wound assays demonstrated that CTHRC1 significantly enhanced the migration of hDPSCs. Conclusions: CTHRC1 promoted odontogenic differentiation and mineralization in hDPSCs.
본 연구는 상악 정중과잉치에서 얻은 치수유래 줄기세포(human dental pulp stem cells from supernumerary tooth, sDPSCs)를 대상으로 분화능의 변화 특성을 알아보고자 하였다. 전신 병력이 없는 6세 남자아이 상악 중절치와 측절치 사이에 매복 된 과잉치를 발치하여 sDPSCs를 얻었다. 세포들을 16계대까지 배양하였고, 1 - 8계대는 Young군으로 9 - 16계대는 Old군으로 나누었다. 각 계대 배양에 소요된 시간은 Young군에서는 $2.25{\pm}0.46$일, Old군에서는 $3.25{\pm}0.46$일을 보였으며, 이는 통계적으로 유의한 차이를 보였다(p < 0.05). 각 계대 별로 세포 형태를 관찰하고 분화를 유도한 후 Alizarin-red solution 염색을 통해 골모세포(odontoblast)로 분화되는 정도를 관찰하였다. 1, 8, 9계대에서 분화제를 처리하지 않은 세포의 형태에서는 방추형의 섬유모세포와 유사한 길쭉한 형태로 과립(nodule)이 적었지만, 16계대에서는 세포의 크기가 커지고 넓적한 형태로 변하고 과립도 많아졌다. 1계대는 분화 7일부터 과립이 관찰되며, 8계대에서는 14일 동안 분화제를 처리한 후 과립이 명확히 관찰되었다. 그러나 9계대 이후에서는 과립의 빈도가 상당히 감소되었다. ARS 염색에서는 1, 8계대는 진한 붉은색으로 염색되었으나, 9, 16계대는 염색이 옅게 되었다. 이를 통해 sDPSCs는 8계대 이전의 세포를 줄기세포의 원천으로 우선 고려하는 것이 좋다고 사료된다.
Purpose: Periodontal treatment aims at complete regeneration of the periodontium, and developing strategies for periodontal regeneration requires a deep understanding of the tissues composing the periodontium. In the present study, the stemness characteristics and gene expression profiles of cementum-derived cells (CDCs) were investigated and compared with previously established human stem cells. Candidate marker proteins for CDCs were also explored. Methods: Periodontal ligament stem cells (PDLSCs), pulp stem cells (PULPSCs), and CDCs were isolated and cultured from extracted human mandibular third molars. Human bone marrow stem cells (BMSCs) were used as a positive control. To identify the stemness of CDCs, cell differentiation (osteogenic, adipogenic, and chondrogenic) and surface antigens were evaluated through flow cytometry. The expression of cementum protein 1 (CEMP1) and cementum attachment protein (CAP) was investigated to explore marker proteins for CDCs through reverse-transcription polymerase chain reaction. To compare the gene expression profiles of the 4 cell types, mRNA and miRNA microarray analysis of 10 samples of BMSCs (n=1), PDLSCs (n=3), PULPSCs (n=3), and CDCs (n=3) were performed. Results: The expression of mesenchymal stem cell markers with a concomitant absence of hematopoietic markers was observed in PDLSCs, PULPSCs, CDCs and BMSCs. All 4 cell populations also showed differentiation into osteogenic, adipogenic, and chondrogenic lineages. CEMP1 was strongly expressed in CDCs, while it was weakly detected in the other 3 cell populations. Meanwhile, CAP was not found in any of the 4 cell populations. The mRNA and miRNA microarray analysis showed that 14 mRNA genes and 4 miRNA genes were differentially expressed in CDCs vs. PDLSCs and PULPSCs. Conclusions: Within the limitations of the study, CDCs seem to have stemness and preferentially express CEMP1. Moreover, there were several up- or down-regulated genes in CDCs vs. PDLSCs, PULPSCs, and BMSCs and these genes could be candidate marker proteins of CDCs.
Kim, Sunil;Lee, Sukjoon;Jung, Han-Sung;Kim, Sun-Young;Kim, Euiseong
Restorative Dentistry and Endodontics
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제44권2호
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pp.20.1-20.8
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2019
Objectives: To achieve pulp-dentin complex regeneration with tissue engineering, treatment efficacies and safeties should be evaluated using in vivo orthotopic transplantation in a sufficient number of animals. Mice have been a species of choice in which to study stem cell biology in mammals. However, most pulp-dentin complex regeneration studies have used large animals because the mouse tooth is too small. The purpose of this study was to demonstrate the utility of the mouse tooth as a transplantation model for pulp-dentin complex regeneration research. Materials and Methods: Experiments were performed using 7-week-old male Institute of Cancer Research (ICR) mice; a total of 35 mice had their pulp exposed, and 5 mice each were sacrificed at 1, 2, 4, 7, 9, 12 and 14 days after pulp exposure. After decalcification in 5% ethylenediaminetetraacetic acid, the samples were embedded and cut with a microtome and then stained with hematoxylin and eosin. Slides were observed under a high-magnification light microscope. Results: Until 1 week postoperatively, the tissue below the pulp chamber orifice appeared normal. The remaining coronal portion of the pulp tissue was inflammatory and necrotic. After 1 week postoperatively, inflammation and necrosis were apparent in the root canals inferior to the orifices. The specimens obtained after experimental day 14 showed necrosis of all tissue in the root canals. Conclusions: This study could provide opportunities for researchers performing in vivo orthotopic transplantation experiments with mice.
Tissue stem cells are used for the regenerative medicine. In previous study we observed hard tissue formation of human dental pulp-derived cells using alginate scaffold. In this study, we explore the ability to differentiate of the 13th passage cells with glycerol 2-phosphate disodium salt hydrate (${\beta}-GP$) which accelerate calcification. Reverse transcriptase Polymerase Chain Reaction (RT-PCR), transplants using alginate scaffold and histological examination were performed. We observed the expression of DSPP mRNA on day 10 cultured cells with ${\beta}-GP$. In conclusion, the 13th passage cells still have an ability to differentiate into odontoblast-like cells and alginate supports the differentiation of cultured cells in the transplants.
Because mesenchymal stem cells (MSCs) maintain distinct capacities with respect to self-renewal, differentiation ability and immunomodulatory function, they have been highly considered as the therapeutic agents for cell-based clinical application. Of particular, differentiation condition alters characteristics of MSCs, including cellular morphology, expression of gene/protein and cell surface molecule, immunological property and apoptosis. However, the previous results for differentiation-related apoptosis in MSCs have still remained controversial due to varied outcomes. Therefore, the present study aimed to disclose periodical alterations of pro- and anti-apoptosis in MSCs under differentiation inductions. The human dental pulp-derived MSCs (DP-MSCs) were differentiated into adipocytes and osteoblasts during early (1 week), middle (2 weeks) and late (3 weeks) stages, and were investigated on their apoptosis-related changes by Annexin V assay, qRT-PCR and western blotting. The ratio of apoptotic cell population was significantly (p < 0.05) elevated during the early to middle stages of differentiations but recovered up to the similar level of undifferentiated state at the late stage of differentiation. In the expression of mRNA and protein, whereas expressions of pro-apoptosis-related makers (BAX and BAK) were not altered in any kind and duration of differentiation inductions, anti-apoptosis marker (BCL2) was significantly (p < 0.05) elevated even at the early stage of differentiations. The recovery of apoptotic cell population at the late stage of differentiation is expected to be associated with the response by elevation of anti-apoptotic molecules. The present study may contribute on understanding for cellular mechanism in differentiation of MSCs and provide background data in clinical application of MSCs in the animal biotechnology to develop effective and safe therapeutic strategy.
Im, Ae-Lee;Kim, Jangho;Lim, KiTaek;Seonwoo, Hoon;Cho, Woojae;Choung, Pill-Hoon;Chung, Jong Hoon
Journal of Biosystems Engineering
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제38권2호
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pp.113-120
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2013
Purpose: Stem cells provide new opportunities in the regenerative medicine for human or animal tissue regeneration. In this study, we report an efficient method for the modulating behaviors of electro-active stem cells by micro-electric current stimulation (mES) without using chemical agents, such as serum or induction chemicals. Methods: Dental pulp stem cells (DPSCs) were cultured on the tissue culture dish in the mES system. To find a suitable mES condition to promote the DPSC functions, the response surface analysis was used. Results: We found that a working micro-current of 38 ${\mu}A$ showed higher DPSC proliferation compared with other working conditions. The mES altered the expressions of intracellular and extracellular proteins compared to those in unstimulated cells. The mES with 38 ${\mu}A$ significantly increased osteogenesis of DPSCs compared with ones without mES. Conclusions: Our findings indicate that mES may induce DPSC proliferation and differentiation, resulting in applying to DPSCs-based human or animal tissue regeneration.
Telomeres are known as a specialized region in the end of chromosomes to protect DNA destruction, but their lengths are shortened by repetition of cell division. This telomere shortening can be preserved or be elongated by telomerase and TERT expression. Although a certain condition in the cells may affect to the cellular and molecular characteristics, the effect of differentiation induction to telomere length and telomerase activity in mesenchymal stem cells (MSCs) has been less studied. Therefore, the present study aimed to uncover periodical alterations of telomere length, telomerase activity and TERT expression in the dental pulp-derived MSCs (DP-MSCs) under condition of differentiation inductions into adipocytes and osteoblasts on a weekly basis up to 3 weeks. Shortening of telomere was significantly (p < 0.05) identified from early-middle stages of both differentiations in comparison with undifferentiated DP-MSCs by non-radioactive chemiluminescent assay and qRT-PCR method. Telomere length in undifferentiated DP-MSCs was 10.5 kb, but the late stage of differentiated DP-MSCs which can be regarded as the adult somatic cell exhibited 8.1-8.6 kb. Furthermore, the relative-quantitative telomerase repeat amplification protocol or western blotting presented significant (p < 0.05) decrease of telomerase activity since early stages of differentiations or TERT expression from middle stages of differentiations than undifferentiated state, respectively. Based on these results, it is supposed that shortened telomere length in differentiated DP-MSCs was remained along with prolonged differentiation durations, possibly due to weakened telomerase activity and TERT expression. We expect that the present study contributes on understanding differentiation mechanism of MSCs, and provides standardizing therapeutic strategies in clinical application of MSCs in the animal biotechnology.
Kim, Ji-Hye;Kim, Gee-Hye;Kim, Jae-Won;Pyeon, Hee Jang;Lee, Jae Cheoun;Lee, Gene;Nam, Hyun
Molecules and Cells
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제39권11호
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pp.790-796
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2016
Dental pulp is a highly vascularized tissue requiring adequate blood supply for successful regeneration. In this study, we investigated the functional role of stem cells from human exfoliated deciduous teeth (SHEDs) as a perivascular source for in vivo formation of vessel-like structures. Primarily isolated SHEDs showed mesenchymal stem cell (MSC)-like characteristics including the expression of surface antigens and in vitro osteogenic and adipogenic differentiation potentials. Moreover, SHEDs were positive for NG2, ${\alpha}$-smooth muscle actin (SMA), platelet-derived growth factor receptor beta ($PDGFR{\beta}$), and CD146 as pericyte markers. To prove feasibility of SHEDs as perivascular source, SHEDs were transplanted into immunodeficient mouse using Matrigel with or without human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). Transplantation of SHEDs alone or HUVECs alone resulted in no formation of vessel-like structures with enough red blood cells. However, when SHEDs and HUVECs were transplanted together, extensive vessel-like structures were formed. The presence of murine erythrocytes within lumens suggested the formation of anastomoses between newly formed vessel-like structures in Matrigel plug and the host circulatory system. To understand underlying mechanisms of in vivo angiogenesis, the expression of angiogenic cytokine and chemokine, their receptors, and MMPs was compared between SHEDs and HUVECs. SHEDs showed higher expression of1VEGF, SDF-$1{\alpha}$, and $PDGFR{\beta}$ than HUVECs. On the contrary, HUVECs showed higher expression of VEGF receptors, CXCR4, and PDGF-BB than SHEDs. This differential expression pattern suggested reciprocal interactions between SHEDs and HUVECs and their involvement during in vivo angiogenesis. In conclusion, SHEDs could be a feasible source of perivascular cells for in vivo angiogenesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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