A mammalian cell renovates itself by autophagy, a process through which cellular components are recycled to produce energy and maintain homeostasis. Recently, the abundance of gap junction proteins was shown to be regulated by autophagy during starvation conditions, suggesting that transmembrane proteins are also regulated by autophagy. Transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1), an ion channel localized to the plasma membrane and endoplasmic reticulum (ER), is a sensory transducer that is activated by a wide variety of exogenous and endogenous physical and chemical stimuli. Intriguingly, the abundance of cellular TRPV1 can change dynamically under pathological conditions. However, the mechanisms by which the protein levels of TRPV1 are regulated have not yet been explored. Therefore, we investigated the mechanisms of TRPV1 recycling using HeLa cells constitutively expressing TRPV1. Endogenous TRPV1 was degraded in starvation conditions; this degradation was blocked by chloroquine (CLQ), 3MA, or downregulation of Atg7. Interestingly, a glucocorticoid (cortisol) was capable of inducing autophagy in HeLa cells. Cortisol increased cellular conversion of LC3-I to LC-3II, leading autophagy and resulting in TRPV1 degradation, which was similarly inhibited by treatment with CLQ, 3MA, or downregulation of Atg7. Furthermore, cortisol treatment induced the colocalization of GFP-LC3 with endogenous TRPV1. Cumulatively, these observations provide evidence that degradation of TRPV1 is mediated by autophagy, and that this pathway can be enhanced by cortisol.
Background: Ginsenoside compound K(C-K), a major metabolite of ginsenoside, exhibits anticancer activity in various cancer cells and animal models. A cell signaling study has shown that C-K inhibited nuclear factor-kappa B ($NF-{\kappa}B$) pathway in human astroglial cells and liver cancer cells. However, the molecular targets of C-K and the initiating events were not elucidated. Methods: Interaction between C-K and Annexin A2 was determined by molecular docking and thermal shift assay. HepG2 cells were treated with C-K, followed by a luciferase reporter assay for $NF-{\kappa}B$, immunofluorescence imaging for the subcellular localization of Annexin A2 and $NF-{\kappa}B$ p50 subunit, coimmunoprecipitation of Annexin A2 and $NF-{\kappa}B$ p50 subunit, and both cell viability assay and plate clone formation assay to determine the cell viability. Results: Both molecular docking and thermal shift assay positively confirmed the interaction between Annexin A2 and C-K. This interaction prevented the interaction between Annexin A2 and $NF-{\kappa}B$ p50 subunit and their nuclear colocalization, which attenuated the activation of $NF-{\kappa}B$ and the expression of its downstream genes, followed by the activation of caspase 9 and 3. In addition, the overexpression of Annexin A2-K320A, a C-K binding-deficient mutant of Annexin A2, rendered cells to resist C-K treatment, indicating that C-K exerts its cytotoxic activity mainly by targeting Annexin A2. Conclusion: This study for the first time revealed a cellular target of C-K and the molecular mechanism for its anticancer activity.
Kim, A-Reum;Sung, Jee Young;Rho, Seung Bae;Kim, Yong-Nyun;Yoon, Kyungsil
Biomolecules & Therapeutics
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v.27
no.2
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pp.231-239
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2019
Suppressor of Variegation 3-9 Homolog 2 (SUV39H2) methylates the lysine 9 residue of histone H3 and induces heterochromatin formation, resulting in transcriptional repression or silencing of target genes. SUV39H1 and SUV39H2 have a role in embryonic development, and SUV39H1 was shown to suppress cell cycle progression associated with Rb. However, the function of human SUV39H2 has not been extensively studied. We observed that forced expression of SUV39H2 decreased cell proliferation by inducing $G_1$ cell cycle arrest. In addition, SUV39H2 was degraded through the ubiquitin-proteasomal pathway. Using yeast two-hybrid screening to address the degradation mechanism and function of SUV39H2, we identified translationally controlled tumor protein (TCTP) as an SUV39H2-interacting molecule. Mapping of the interacting regions indicated that the N-terminal 60 amino acids (aa) of full-length SUV39H2 and the C-terminus of TCTP (120-172 aa) were critical for binding. The interaction of SUV39H2 and TCTP was further confirmed by co-immunoprecipitation and immunofluorescence staining for colocalization. Moreover, depletion of TCTP by RNAi led to up-regulation of SUV39H2 protein, while TCTP overexpression reduced SUV39H2 protein level. The half-life of SUV39H2 protein was significantly extended upon TCTP depletion. These results clearly indicate that TCTP negatively regulates the expression of SUV39H2 post-translationally. Furthermore, SUV39H2 induced apoptotic cell death in TCTP-knockdown cells. Taken together, we identified SUV39H2, as a novel target protein of TCTP and demonstrated that SUV39H2 regulates cell proliferation of lung cancer cells.
Salmonella enterica serovar Typhimurium (S. Typhimurium) is a facultative intracellular pathogen that causes salmonellosis and mortality worldwide. S. Typhimurium infects macrophages and survives within phagosomes by avoiding the phagosome-lysosome fusion system. Phagosomes sequentially acquire different Rab GTPases during maturation and eventually fuse with acidic lysosomes. Lysophosphatidylcholine (LPC) is a bioactive lipid that is associated with the generation of chemoattractants and reactive oxygen species (ROS). In our previous study, LPC controlled the intracellular growth of Mycobacterium tuberculosis by promoting phagosome maturation. In this study, to verify whether LPC enhances phagosome maturation and regulates the intracellular growth of S. Typhimurium, macrophages were infected with S. Typhimurium. LPC decreased the intracellular bacterial burden, but it did not induce cytotoxicity in S. Typhimurium-infected cells. In addition, combined administration of LPC and antibiotic significantly reduced the bacterial burden in the spleen and the liver. The ratios of the colocalization of intracellular S. Typhimurium with phagosome maturation markers, such as early endosome antigen 1 (EEA1) and lysosome-associated membrane protein 1 (LAMP-1), were significantly increased in LPC-treated cells. The expression level of cleaved cathepsin D was rapidly increased in LPC-treated cells during S. Typhimurium infection. Treatment with LPC enhanced ROS production, but it did not affect nitric oxide production in S. Typhimurium-infected cells. LPC also rapidly triggered the phosphorylation of IκBα during S. Typhimurium infection. These results suggest that LPC can improve phagosome maturation via ROS-induced activation of NF-κB pathway and thus may be developed as a therapeutic agent to control S. Typhimurium growth.
The transcription factor SHE1 was identified as an interacting partner with the cucumber mosaic virus (CMV) 1a protein in the yeast two-hybrid system, by a pull-down assay, and via bimolecular fluorescent complementation. Using fluorescent-tagged proteins and confocal microscopy, the CMV 1a protein itself was found distributed predominantly between the nucleus and the tonoplast membrane, although it was also found in speckles in the cytoplasm. The SHE1 protein was localized in the nucleus, but in the presence of the CMV 1a protein was partitioned between the nucleus and the tonoplast membrane. SHE1 expression was induced by infection of tobacco with four tested viruses: CMV, tobacco mosaic virus, potato virus X and potato virus Y. Transgenic tobacco expressing the CMV 1a protein showed constitutive expression of SHE1, indicating that the CMV 1a protein may be responsible for its induction. However, previously, such plants also were shown to have less resistance to local and systemic movement of tobacco mosaic virus (TMV) expressing the green fluorescent protein, suggesting that the CMV 1a protein may act to prevent the function of the SHE1 protein. SHE1 is a member of the AP2/ERF class of transcription factors and is conserved in sequence in several Nicotiana species, although two clades of SHE1 could be discerned, including both different Nicotiana species and cultivars of tobacco, varying by the presence of particular insertions or deletions.
Nan Zhang;Li Xu;Hao Song;Chunqing Bu;Jie Kang;Chuanchen Zhang;Xiaofei Yang;Fabin Han
International Journal of Stem Cells
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v.16
no.1
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pp.93-107
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2023
Background and Objectives: Chronic periodontitis can lead to alveolar bone resorption and eventually tooth loss. Stem cells from exfoliated deciduous teeth (SHED) are appropriate bone regeneration seed cells. To track the survival, migration, and differentiation of the transplanted SHED, we used super paramagnetic iron oxide particles (SPIO) Molday ION Rhodamine-B (MIRB) to label and monitor the transplanted cells while repairing periodontal bone defects. Methods and Results: We determined an appropriate dose of MIRB for labeling SHED by examining the growth and osteogenic differentiation of labeled SHED. Finally, SHED was labeled with 25 ㎍ Fe/ml MIRB before being transplanted into rats. Magnetic resonance imaging was used to track SHED survival and migration in vivo due to a low-intensity signal artifact caused by MIRB. HE and immunohistochemical analyses revealed that both MIRB-labeled and unlabeled SHED could promote periodontal bone regeneration. The colocalization of hNUC and MIRB demonstrated that SHED transplanted into rats could survive in vivo. Furthermore, some MIRB-positive cells expressed the osteoblast and osteocyte markers OCN and DMP1, respectively. Enzyme-linked immunosorbent assay revealed that SHED could secrete protein factors, such as IGF-1, OCN, ALP, IL-4, VEGF, and bFGF, which promote bone regeneration. Immunofluorescence staining revealed that the transplanted SHED was surrounded by a large number of host-derived Runx2- and Col II-positive cells that played important roles in the bone healing process. Conclusions: SHED could promote periodontal bone regeneration in rats, and the survival of SHED could be tracked in vivo by labeling them with MIRB. SHED are likely to promote bone healing through both direct differentiation and paracrine mechanisms.
Transient receptor potential ankyrin 1 (TRPA1), responding to noxious cold (${\leq}17^{\circ}C$) and pungent compounds, is implicated in nociception, but little is known about the coexpression of TRPA1 and other channels or receptors involved in the nociception in craniofacial regions. To address this issue, we characterized the TRPA1-immunopositive (+) neurons in the rat trigeminal ganglion (TG) and investigated their colocalization with other proteins known to be expressed in nociceptive neurons, such as transient receptor potential vanilloid (TRPV1) and $P2X_3$ receptor, using light microscopic immunofluorescence labeling method with TRPA1 and TRPV1 or $P2X_3$ antisera. The majority of TRPA1+ neurons costained for TRPV1 (TRPV1+/TRPA1+; 58.8%, 328/558) and 41.2% only expressed TRPA1 but not TRPV1. The TRPV1+/TRPA1+ neurons were small and medium sized. In addition, we investigated the colocalization of TRPA1 with $P2X_3$, a nonselective cation channel activated by ATP that may be released in the extracellular space as a result of tissue damage and inflammation. Among all TRPA1+ TG neurons, 26.1% (310/1186) costained for $P2X_3$, whereas 73.9% (876/1186) of TRPA1+ neurons did not coexpress $P2X_3$. $P2X_3$+/TRPA1+ neurons were predominantly small and medium sized. These results suggest that TRPA1+ neurons coexpressing TRPV1 or $P2X_3$ are involved in specific roles in the transmission and processing of orofacial nociceptive information by noxious cold, heat, and inflammation.
Participates in actin remodeling through Rac and receptor endocytosis via Rab5. Here, we used yeast two-hybrid system with Eps8 as bait to screen a human brain cDNA library. ITSN2 was identified as the novel binding factor of Eps8. The interaction between ITSN2 and Eps8 was demonstrated by the in vivo co-immunoprecipitation and colocalization assays and the in vitro GST pull-down assays. Furthermore, we mapped the interaction domains to the region between amino acids 260-306 of Eps8 and the coiled-coil domain of ITSN2. In addition, protein stability assays and immunofluorescence analysis showed ITSN2 overexpression induced the degradation of Eps8 proteins, which was markedly alleviated with the lysosome inhibitor NH4Cl treatment. Taken together, our results suggested ITSN2 interacts with Eps8 and stimulates the degradation of Eps8 proteins.
Implantation of blastocyst into the uterine endometrium is established by the existence of histologically and functionally prepared uterine endometrium. Doc-1, an oral cancer suppressor gene, is expressed under the control of steroid hormones and has been suggested as a proliferation regulator of endometrial cells. However, the role is not much clear and in this study we examined the expression modulation of Doc-1 in decidualizing cells in vitro. In vitro decidualization was performed in endometrial stroma cells using progesterone and estrogen. Until 24 hr after decidual induction the proliferation of stroma cell was significantly increased but decreased after then. On the other hand, most of the cells differentiated into decidual cell after 48 hr of induction. The Doc-1 protein was co-localized in a specific deciudal cells and colocalization rate was increased in a parallel manner with the induction time. Based on these results, it is suggested that Doc-1 expression is under the control of both steroid hormones and decidual signals, and Doc-1 protein is involved in suppression of the proliferation of decidualizing cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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