A cellulase fraction (F IV-1) purified to about 8-folds was obtained from crude cellulase prepared from the wheat bran culture of S.atra. The partial purification of the enzyme was made by DEAE Sephadex and Sephdex cloumn chromatography in conjuction with ammonium sulfate precipitation. After stading at various pH's for 22 hours at $20^{\circ}C$, F IV-1 was most stable at pH 5.0 but when the enzyme fraction was stood for 74 hours, the point of pH stability was raised to around pH 6.0-7.0. After heating at various temperatures for 1 hour, F IV-1 was most stable at $20^{\circ}C$. The optimal enzyme activities of F IV-1 were seen at pH 6.0 and $50^{\circ}C$. The optimal concentrations of $Zn^{++}\;and\;Ca^{++}$ for the activities of crude cellulase were 6 and 4 mM respectively, but $Ca^{++}$ inhibited the enzyme activity at concentrations below 2 mM and above 6mM. Both $Cu^{++}\;and\;Mn^{++}$ ions inhibited cellulase activities and a ocmplete inactivation of crude cellulase was achieved at concentratioins of 5 and 2 mM of ions respectively. When Na-CMC was used as substrate, the Km values of crude cellulase and F IV-1 were calculated to be $5{\times}10^{-4}\;and\;2{\times}10^{-5}mM$, and V values 32 and 1.35 mmoles/hour, respectively. The Ki values of $Mn^{++}$ for crude cellulase and F IV-1 were found to be $8{\times}10^{-2}\;and\;3{\times}10^{-2}\;mM\;while\;those\;of\;Cu^{++}\;were\;at\;2{\times}10^{-1}\;and\;1{\times}10^{-1}\;mM\;respectively.\;Both\;Mn^{++}\;and\;Cu^{++}$ showed competitive inhibition with substrate.
This experiment was conducted to study on the productive conditions of cellulase by Aspergillus saitoi in the shaking culture medium. The results were as follows: 1. The production of enzyme required higher concentration of corn steep liquor than that of dextrin. 2. The concentration of 1.0% $NH_4H_2SO_4$ produced the enzyme excellently than 3.0%. 3. The cellulase was produced very slowly by adding $(NH_4)_2SO_4$, but the final concentration of the enzyme was higher than control. The production was suppressed by addition of $CaCO_3$. 4. The addition of $1.0{\sim}2.0%$ substrate caused an increase or stimulation in cellulase production.
Optimal conditions for the formation and regeneration of protoplasts of the cellulolytic fungus Penicillium verruculosum were investigated. Among the various commercial cell wall lytic enzymes tested, 0.5%(w/ v) Novozym 234 was the most effective for protoplast formation. The highest yield of protoplast exceeding 4.5$\times$10$^6$/m$\ell$ obtained when 400mg of 20 hr-old mycelia was incubated with 0.5%(w/v) Novozym 234 at 3$0^{\circ}C$ for 1 hr. The best osmotic stabilizer for the isolation and re-generation of protoplasts was 0.7M sorbital (pH 5.6) and 0.6M MgSO$_4$(pH 5.6), respectively. When 0.6M MgSO$_4$was added as osmotic stabilizer to the complete medium, the maximum regeneration frequency obtained was 4.6-27.8%. Micromorphological change of giant protoplasts into hyphae was observed during incubation in the regeneration liquid medium.
Xylophagous termites are capable of degrading lignocellulose by symbiotic gut microorganisms along with the host's indigenous enzymes. Therefore, the termite gut might be a potential niche to obtain natural yeasts with celluloytic, xylanolytic and ethanologenic traits required for bioethanol production from lignocellulosic biomass. In this study, we cultured 79 yeasts from three different termites viz. Coptotermes heimi, Odontotermes javanicus and Odontotermes obesus. After suitable screening methods, we identified 53 yeasts, which belonged to 10 genera and 16 different species of both ascomycetous and basidiomycetous yeasts. Most yeasts in the present study represent their first-ever isolation from the termite gut. Representative strains of identified yeasts were evaluated for their cellulolytic, xylanolytic, and ethanologenic abilities. None of the isolates showed cellulase activity; 22 showed xylanolytic activity, while six produced substantial quantities of ethanol. Among xylanolytic cultures, Pseudozyma hubeiensis STAG 1.7 and Hannaella pagnoccae STAG 1.14 produced 1.31 and 1.17 IU of xylanase. Among ethanologenic yeasts, the strains belonging to genera Candida and Kodamaea produced high amount of ethanol. Overall, highest ethanol level of 4.42 g/L was produced by Candida tropicalis TS32 using 1% glucose, which increased up to 22.92 g/L at 35 ℃, pH 4.5 with 5% glucose. Fermentation of rice straw hydrolysate gave 8.95 g/l of ethanol with a yield of 0.42 g/g using the strain TS32. Our study highlights the gut of wood-feeding termites as a potential source of diverse yeasts that would be useful in the production of xylanase and bioethanol.
Park Hyun-Soon;Kim Hyun-Chul;Shin Dong-Ha;Kim Joong-Kyun;Nam Soo-Wan
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.33
no.4
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pp.267-273
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2005
To develop effective and powerful probiotic, Saccharomyces cerevisiae strains producing cellulolytic enzymes were genetically brooded. For the production of exoglucanase, the plasmid pVT-TExo (8.8 kb) was constructed, in which Thermomonosporafusca exoglucanase gene (E3) was under the control of ADHl promoter, and introduced into S. cerevisiae SEY2102. When the transformant, S. cerevisiae SEY2102/pVT-TExo, was cultivated on YPD medium, the total expression level of avicelase reached about 190 unit/l. The secretion efficiency and plasmid stability were about $50\%\;and\;91\%$, respectively. Recombination exoglucanase enzyme bound to avicel better than Clostridium endoglucanase (CelA) and Trichoderma endoglucanase (C4) enzymes. The mixing ratio of E3 and CelA displaying the best synergistic hydrolysis for avicel was observed at 4:1. The mixture of endoglucanase (CelA) and exoglucanase (E3) resulted in 3.2-fold increase of avicelase activity and 2.5-fold enhanced production of sugar production from avicel, compared to the single enzyme treatment.
The effects of exogenous fibrolytic enzymes (EFE; a mixture of two preparations from Trichoderma spp., with predominant xylanase and ${\beta}$-glucanase activities, respectively) on colonization and digestion of ground barley straw and alfalfa hay by Fibrobacter succinogenes S85 and Ruminococcus flavefaciens FD1 were studied in vitro. The two levels (28 and 280 ${\mu}g$/ml) of EFE tested and both bacteria were effective at digesting NDF of hay and straw. With both substrates, more NDF hydrolysis (p<0.01) was achieved with EFE alone at 280 than at 28 ${\mu}g$/ml. A synergistic effect (p<0.01) of F. succinogenes S85 and EFE on straw digestion was observed at 28 but not 280 ${\mu}g$/ml of EFE. Strain R. flavefaciens FD1 digested more (p<0.01) hay and straw with higher EFE than with lower or no EFE, but the effect was additive rather than synergistic. Included in the incubation medium, EFE showed potential to improve fibre digestion by cellulolytic ruminal bacteria. In a second batch culture experiment using mixed rumen microbes, DM disappearance (DMD), gas production and incorporation of $^{15}N$ into particle-associated microbial N ($^{15}N$-PAMN) were higher (p<0.001) with ammoniated (5% w/w; AS) than with native (S) ground barley straw. Application of EFE to the straws increased (p<0.001) DMD and gas production at 4 and 12 h, but not at 48 h of the incubation. EFE applied onto S increased (p<0.01) $^{15}N$-PAMN at 4 h only, but EFE on AS increased (p<0.001) $^{15}N$-PAMN at all time points. Prehydrolysis increased (p<0.01) DMD from both S and AS at 4 and 12 h, but reduced (p<0.01) $^{15}N$-PAMN in the early stage (4 h) of the incubation, as compared to non-prehydrolyzed samples. Application of EFE to barley straw increased rumen bacterial colonization of the substrate, but excessive hydrolytic action of EFE prior to incubation decreased it.
Three fractions of carboxymethyl-cellulase (F-I, F-II, and F-III) and ${\beta}-glucosidase$ form Aspergillus niger were partially purified by ammonium sulfate fractionation. Sephadex G-150 and DEAE-Sephadex column chromatography. The optimum conditions such as pH and temperature and thermal inactivation properties of the enzymes were investigated. Arrhenius plots of F-II and F-III appeared as straight lines, whereas that of F-I was biphasic. The Z-values of F-II and F-III were $8^{\circ}C$ and $10^{\circ}C$ respectively, while that of F-I was $4^{\circ}C$ over $60{\sim}70^{\circ}C$ and $383^{\circ}C$ over $70{\sim}98^{\circ}C$. Three fractions and the crude extract of carboxymethyl-cellulase exhibited a similar optimum pH 4.3 and temperature of $60^{\circ}C$, while Z-value of crude extract $(21.5^{\circ}C)$ was much higher than that of the purified enzyme. Maximum activity of both purified and crude extract of ${\beta}-glucosidase$ was shown at pH 4.7 and $60^{\circ}C$, and z-value of the enzyme was $7^{\circ}C$.
In the previous paper, we isolated a bacterium that can hydrolyze various organic materials from soybean paste, including cellulose, lipids, starch, and protein. The activity and chemical properties of the crude enzymes produced by the isolate Bacillus subtilis CK-2 were further investigated. Cellulase showed the highest activity at pH 5.0 and $55^{\circ}C$. The stability of cellulase was maintained within the ranges of pH 5.0~10.0 and $20{\sim}50^{\circ}C$. Cellulolytic enzymes were activated by a $Co^{2+}$ ion, demonstrating the highest activity at a 0.45%(w/v) concentration of $Co^{2+}$. The optimal conditions for amylase were pH 5.0 and $50^{\circ}C$. The activity of amylase was stable within the ranges of pH 4.0~5.0 and $20{\sim}50^{\circ}C$. The $Co^{2+}$ ion was also necessary for amylase activity, which was the highest at a 0.2%(w/v) concentration of $Co^{2+}$. The optimal pH and temperature conditions of protease were pH 8.0 and $50^{\circ}C$. The activity of protease was stable within the ranges of pH 7.0~8.5 and $20{\sim}50^{\circ}C$. Protease activity was catalyzed by $Mn^{2+}$, which was the highest at a 0.125%(w/v) concentration of $Mn^{2+}$. The isolate B. subtilis CK-2 demonstrated a high activity of autolysin. Based on these results, we identified and suggested the optimal pH, temperature, and metal ion concentration in the use of the hydrolytic enzymes of B. subtilis CK-2 for industrial purposes.
Kim, Ju-Young;Jang, Jun Hwee;Park, Ji-Hyun;Jung, Hee-Young;Park, Jong-Seok;Cho, Sung-Jin;Lee, Hoon Bok;Limtong, Savitree;Subramani, Gayathri;Sung, Gi-Ho;Kim, Myung Kyum
Korean Journal of Microbiology
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v.54
no.4
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pp.362-368
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2018
Grasshoppers play vital role in the digestion of photosynthetically fixed carbons. With the aid of intestinal microflora, the grasshopper can degrade leaves constituents such as cellulose and hemicellulose. The purpose of this study was to examine cellulolytic yeast isolates from the gut of grasshoppers collected in Gyeonggi Province, South Korea. Among the yeast isolates, ON2, ON17 (two strains), and ON6 (one strain) showed positive cellulolytic activity in the CMC-plate assay. The sequence analyses of D1/D2 domains of the large subunit rDNA gene and the internal transcribed spacer (ITS) regions revealed that the strains ON2 and ON17 were most closely related to Papiliotrema aspenensis CBS $13867^T$ (100%, sequence similarity in D1/D2 domains; 99.4% sequence similarity in ITS) and strain ON6 related to Saitozyma flava (100% in D1/D2 domains; 99.0% in ITS). All these three yeast strains are capable of degrading cellulose; therefore, the members of endosymbiotic yeasts may produce their own enzymes for carbohydrate degradation and convert mobilized sugar monomers to volatile fatty acids. Thus, the endosymbiotic yeast strains ON2, ON17 (represents the genus Papilioterma) and ON6 (Saitozyma) belonging to the family Tremellomycetes, are unreported strains in Korea.
Kim, Gyeong-Cheol;Kim, Seong-Hui;Cheon, Hwa-Yeong;Kim, Seong-Jun
한국생물공학회:학술대회논문집
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2003.04a
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pp.439-444
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2003
The major factors related in enzymatic hydrolysis of food waste using cellulolytic enzymes of Trichoderma harzianum FJ1 were optimized by response surface analysis. The factors largely affecting to the reducing sugar concentration and enzymatic saccharification rate of food waste such as substrate concentration ($X_1$, %), enzyme concentration ($X_2$, U/ml), and reaction time ($X_3$, hr) were employed. A quadratic polynominal expressing the reducing sugar (RS) concentration relating with the above factors was as follows : RS (g/l) = -17.80 + $5.04X_1$ + $51.37X_2$ + $1.21X_3$ - $0.11X_1\;^2$ - $38.86X_2\;^2$ - $0.03X_3\;^2$ + $1.64X_1X_2$ + $0.04X_1X_3$ - $0.70X_2X_3$ ($R^2$=0.9939). The maximum value of the reducing sugar concentration and saccharification rate were obtained in the conditions of substrate concentration of 18.2%, enzyme concentration of 0.78 U/ml, and reaction time of 19 hr, respectively. The predicated reducing sugar concentration and saccharification rate by the response surface methodology were 95.13 g/l and 47.27%, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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