Clearing and labeling techniques for large-scale biological tissues enable simultaneous extraction of molecular and structural information with minimal disassembly of the sample, facilitating the integration of molecular, cellular and systems biology across different scales. Recent years have witnessed an explosive increase in the number of such methods and their applications, reflecting heightened interest in organ-wide clearing and labeling across many fields of biology and medicine. In this review, we provide an overview and comparison of existing clearing and labeling techniques and discuss challenges and opportunities in the investigations of large-scale biological systems.
Background: Electromagnetic fields (EMF) are ubiquitous in modern society including medical field. As the technology of medical instruments and telecommunications has developed rapidly, it has influenced on our lives in many ways. Modern medical practice requires high quality medical equipments, which have a great deal of electromagnetic interference and susceptibility. The purpose of this study were to evaluate electromagnetic condition under usual clinical condition and to suggest a practical guideline in general hospital. Materials and Methods: The actual state of the electromagnetic interference in the medical field was studied under usual clinical conditions including operating rooms, intensive care units, magnetic resonance imaging unit, and hyperthermia unit. Results: There was considerable noise as a result of electromagnetic fields from medical equipments including electrosurgical units and hyperthermia unit, and cellular phones, which could induce serious functional derangements of functioning medical devices. Conclusion: It will be necessary to evaluate the individual electromagnetic situations under various medical conditions and to define a limited zone for cellular phone as well as reposition medical equipments to secure a safer medical practice and to minimize electromagnetic interference.
Recently, there has been a growing interest in optical imaging of neural activity because the optical neuroimaging has considerable advantages over conventional imaging. Birefringence of the axon has been reported to change during neural activation, but the neurophysiological origin of the change is still unresolved. This study hypothesizes that the birefringence signal is at least partially attributed to the transient cellular volume change associated with nerve excitation. To examine this hypothesis, we investigated how the intensity of cross-polarized light transmitting through the axon would change as the size of the axon changes. For this purpose, a two-dimensional finite-difference time-domain program was developed with the improvement of the total-field/scattered-field method which reduces numerical noise. The results support our hypothesis in that the computed cross-polarized signals exhibit some agreement with previously-reported birefringence signals.
In situ detection of RNAs is becoming increasingly important for analysis of gene expression within and between intact cells in tissues. International genomics efforts are now cataloging patterns of RNA transcription that play roles in cell function, differentiation, and disease formation, and they are demon-strating the importance of coding and noncoding RNA transcripts in these processes. However, these techniques typically provide ensemble averages of transcription across many cells. In situ hybridization-based analysis methods complement these studies by providing information about how expression levels change between cells within normal and diseased tissues, and they provide information about the localization of transcripts within cells, which is important in understanding mechanisms of gene regulation. Multi-color, single-molecule fluorescence in situ hybridization (smFISH) is particularly useful since it enables analysis of several different transcripts simultaneously. Combining smFISH with immunofluorescent protein detection provides additional information about the association between transcription level, cellular localization, and protein expression in individual cells.
Discovery of the naturally evolved fluorescent proteins and their genetically engineered biosensors have enormously contributed to current bio-imaging techniques. These reporters to trace dynamic changes of intracellular protein activities have continuously transformed according to the various demands in biological studies. Along with that, light-inducible optogenetic technologies have offered scientists to perturb, control and analyze the function of intracellular machineries in spatiotemporal manner. In this review, we present an overview of the molecular strategies that have been exploited for producing genetically encoded protein reporters and various optogenetic modules. Finally, in particular, we discuss the current efforts for combined use of these reporters and optogenetic modules as a powerful tactic for the control and imaging of signaling events in cells and tissues.
Eunjin Kim;Jiyoung Lee;Seulgi Noh;Ohkyung Kwon;Ji Young Mun
Applied Microscopy
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제50권
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pp.14.1-14.6
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2020
Scanning electron microscopy (SEM) plays a central role in analyzing structures by imaging a large area of brain tissue at nanometer scales. A vast amount of data in the large area are required to study structural changes of cellular organelles in a specific cell, such as neurons, astrocytes, oligodendrocytes, and microglia among brain tissue, at sufficient resolution. Array tomography is a useful method for large-area imaging, and the osmium-thiocarbohydrazide-osmium (OTO) and ferrocyanide-reduced osmium methods are commonly used to enhance membrane contrast. Because many samples prepared using the conventional technique without en bloc staining are considered inadequate for array tomography, we suggested an alternative technique using post-staining conventional samples and compared the advantages.
We have developed the method for the conjugation of biotinylated DNA to streptavidin-coated QDs. QD-DNA conjugates and a high-sensitive fluorescence imaging technique are adopted to visualize gene transport across the membrane of the live cell in real time. Endocytotic cellular uptake of oligonucleotide and electrically-mediated plasmid DNA transfer into the live cell are monitored by a quantitative microscopic imaging system. Long-term kinetic study enables us to reveal the unknown mechanisms and rate-limiting steps of extracellular and intracellular transport of biomolecules. We designed experimental protocols to conjugate the oligonucleotide or the plasmid DNA to commercially available streptavidin-coated QDs. Gel electrophoresis is used to verify the effect of incubation time and the molar ratio of QDs and DNA on the conjugation efficiency. It is possible to fractionate the QD-DNA conjugates according to the DNA concentration and obtain the purified conjugates by a gel extraction technique.
With the advance of stem cell transplantation research, in vivo cell tracking techniques have become increasingly important in recent years. Magnetic resonance imaging (MRI) may provide a unique tool for non-invasive tracking of transplanted cells. Since the initial findings on the stem cell migration by MRI several years ago, there have been numerous studies using various animal models, notably in heart or brain disease models. In order to develop more reliable and clinically applicable methodologies, multiple aspects should be taken into consideration. In this review, we will summarize the current status and future perspectives of in vivo cell tracking technologies using MRI. In particular, use of different MR contrast agents and their detection methods using MRI will be described in much detail. In addition, various cell labeling methods to increase the sensitivity of signals will be extensively discussed. We will also review several key experiments, in which MRI techniques were utilized to detect the presence and/or migration of transplanted stem cells in various animal models. Finally, we will discuss the current problems and future directions of cell tracking methods using MRI.
Park, Jeong-Hoon;Kim, Sang-Wook;Yang, Seung-Dae;Hur, Min-Goo;Chun, Kwon-Soo;Yu, Kook-Hyun
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제29권3호
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pp.595-598
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2008
Emodin (3-methyl-1,6,8-trihydroxyanthraquinone) is a natural chemotherapeutic compound with diverse biological properties including an antitumor activity. Emodin, a specific inhibitor of the protein tyrosine kinase, has a number of cellular targets in related to it. Its inhibition activity affects the mammalian cell cycle regulation in specific oncogene. Practically, it has been proven to inhibit HER-2/neu tyrosine kinase expressing breast cancer cells as an anticancer agent. 2-[123I]iodoemodin has been synthesized and evaluated human breast cancer cells (MDA-MB-231, MCF-7, fibroblast as a control) which express basal levels of HER-2/neu tyrosine kinase to investigate its suitability as a breast cancer imaging agent and 2-iodoemodin has been synthesized as a standard compound. The radiochemical yield of the 2-[123I]iodoemodin was about 72% and its radiochemical purity was over 97% after purification. The radioactivity of the 2-[123I]iodoemodin was increased in a time dependent manner in both cell lines and the ratio of MDA-MB-231 and MCF7 to fibroblast was 2.9 and 1.7, respectively.
Molecular imaging visualizes cellular processes at a molecular or genetic level in living subjects, and diverse molecular probes are used for this purpose. Radiolabeling methods as well as radioisotopes are very important in preparation of molecular probes, because they can affect the biodistribution in tissues and the excretion route. In this review, the molecular probes are divided into small organic molecules and macromolecules such as peptides and proteins, and their commonly used radiolabeling methods are described.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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