To establish an in vitro mass production system of grape anthocyanin pigments through callus and cell suspension culture, the effects of nitrogen source and sucrose on fresh weight and anthocyanin production in cell suspension culture of 'Sheridan' grape level were studied. When the medium was devoid of $NO_3^-$, cell fresh weight was either remained stable (1% sucrose) or slightly decreased with culture time (2,3, and 4% sucrose). When $NH_4^-$ was lacking, 3% sucrose was most favorable for cell growth. When $NH_4^-$ was supplied as N source, the anthocyanin content of 2% sucrose containing medium was maintained 2 times higher than other levels till day 8 in culture, then that of 3 and 4% sucrose which peaked at day 12 thereafter. The anthocyanin content was low than $NO_3^-$-free media. Total anthocyanin content in $NH_4^-$-free medium was just about a half of that of $NH_4^+$ medium. Anthocyanin production of 2% sucrose in $NH_4^+$ medium was maintained about 3-fold till day 8, then decreased thereafter. In $NH_4^+$ medium, pH decreased gradually with final pH of 3.5 to 4.0, while pH in $NH_4^+$-free medium increased with final pH of 6.5 to 7.5.
The establishment of cell suspension culture and plant regeneration of the halophytic Leymus chinensis (Trin.) are described in this study for the first time. Callus induction solid medium containing Murashige and Shoog (MS) basic salt, $2.0\;mg\;l^{-1}$ 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), and $5.0\;mg\;l^{-1}$ L-glutamic acid with $30.0\;g\;l^{-1}$ sucrose and $4.0\;g\;l^{-1}$ gelrite for solidification induced the highest rate of cell division in Type 1 callus among calli of various types. Liquid medium with the same hormone distribution was therefore, used for cell suspension culture from Type 1 callus. Over a 30 d suspension culture at 100 rpm, great amounts of biomass were accumulated, with 71.07% average daily increment and 22.32-fold total fresh weight increment. Comparison of before and after suspension culture, the distribution of different size callus pieces and the maintenance of callus type were basically unaltered, but a slight increase in relative water contents was observed. To induce the potential of plant regeneration, the directly transferring on plant regeneration solid medium containing MS basic salt, $0.2\;mg\;l^{-1}$$\alpha$-naphthalene acetic acid (NAA), $2.0\;mg\;l^{-1}$ kinetin (Kn), and $2.0\;g\;l^{-1}$ casamino acid and indirectly transferring were simultaneously performed. Even now growth rates of suspension-derived callus on solid medium were approximately half of those of Type 1 callus, but faster somatic embryogenesis was observed. Rooting of all regenerated shoots was successfully performed on half-strength MS medium. All plants appeared phenotypically normal.
Kim, Jae-Su;Choi, Jae-Young;Roh, Jong-Yul;Lee, Han-Young;Jang, Seung-Sik;Je, Yeon-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권5호
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pp.739-744
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2007
Insect cell lines and the control of infection for obtaining the maximum amount of polyhedrin-Cry1Ac-polyhedrin fusion protein from Bactrus in monolayer and suspension culture systems were tested. Growth rates of the Trichoplusia ni(High-Five) cell line in both culture systems were better than the other insect cell lines, Spodoptera frugiferda(Sf-9, Sf-21), Trichoplusia ni(Tn5), and Spodoptera exigua(Se301). The expression of the fusion protein in a monolayer culture showed that Se301 cells were 2.3-4.8 times more productive on a per cell basis than the other cell lines. However, in suspension culture, only High-Five cells were productive. High-Five cells infected with Bactrus at a multiplicity of infection(MOI) of 5 and a cell density of $3.0{\times}10^5$ cells per ml were more productive than the other infection condition in a suspension culture suitable for a large-scale production of baculovirus. In conclusion, for the large-scale production of Bactrus in vitro, High-Five cells showing good growth and high productivity are suitable.
In this study, we established a novel somatic embryogenesis and plant regeneration system through cell suspension culture of white dandelion (Taraxacum coreanum NAKAI.). Embryogenic calli could be initiated from leaf and root explants of sterile seedlings on solid Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1.0 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) after 3-week cultures. To proliferate embryogenic calli rapidly, cell suspension culture was performed with transferred to liquid MS medium with various combinations of plant growth regulators (PGRs) including 2,4-D, ${\alpha}$-naphthalene acetic acid (NAA), indole-3-acetic acid (IAA), $N^6$-benzylamino purine (BAP), thidiazuron (TDZ), and kinetin. During suspension cultures, embryogenic calli not only greatly proliferated, but shoot organogenesis also simultaneously occurred from the surface of somatic embryos. Among them, TDZ at lower concentration, 0.1 mg/L produced the highest efficiency of somatic embryo formation and shoot organogenesis. Rooting of embryogenic calli with adventitious shoots was done on solid MS medium containing 0.1 mg/L NAA and 0.3% activated carbon. Nearly 80% of embryogenic calli with shoot organogenesis could be rooted normal. Well-rooted plantlets were transferred into pots under a greenhouse condition, and plants derived from this system appeared phenotypically normal.
Park, Jae-Sung;Yi, Gi-Hwan;Nam, Min-Hee;Park, Sun-Ho
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제6권1호
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pp.51-55
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2001
This study was conducted to establish a plant cell culture system for the production of medically important secondary metabolites from Xanthium strumarium. The effects of plant growth regulators including NAA, 2,4-D, kinetin, and ABA were examined in terms of callus induction, maintenance of callus and suspension cultures. It was shown that callus was induced upon treatment with NAA while embryo was induced after treatment with 2,4-D. Callus formation was further improved by treatment with ABA and NAA. The level of callusing increased by 17-29% for the seed case, cotyledon, leaf, and hypocotyl and by 96% in the case of the root. Suspension cell lines were established using calli produced from cotyledon, hypocotyl and root and cultured at 25$\^{C}$ under light conditions. The cells grew up to 15g/L with NAA 2ppm, BA 2ppm, and ABA 1ppm treatment. Supernatants of suspension cultures of cell lines derived from coyledon and hypocotyl produced some distinctive secondary metabolites, one of which was identified as 8-epi-tomentosin, which belongs to the xanthanolides. The amounts of 8-epi-tomentosin produced by the cotyledon- and hypocotylderived cell lines were 13.4mg/L and 11.0mg/L, respectively.
Chitooligosaccharides 혼합물을 처리한 벼 세포 현탁배양액과 처리하지 않은 배양액의 단백질 및 효소활성을 비교하여 이 elicitor에 의해 유도되는 chitinase를 확인하였다. Chitooligosaccharide 혼합물 처리로 chitinase 활성은 비처리구에 비하여 3.5배 증가하였으며 증가율이 단백질 증가보다 10배 이상 높아 본 효소가 선택적으로 유도되는 것으로 나타났다. Polyacrylamide gel 전기영동상 나타나는 총 11종의 chitinase중 4종이 유도효소로 판명되었으며 DEAE-cellulose chromatography 결과 3개는 $26{\sim}58\;KD$의 분자량을 가진 acidic chitinase 분획에, 나머지 1개는 basic chitinase 분획에 속한 것으로 나타나서 주로 acidic chitinase가 유도되는 것으로 확인되었다.
Friable callus와 compact callus를 배양 단계별로 단백질을 정량한 결과 friable callus가 가장 낮았고 배양 0주째부터 단백질 함량이 서서히 증가하여 배양 3주째 최대함량이 되었으며, 4주째부터는 감소하기 시작했다. 전기영동법으로 단백질의 패턴을 조사한 결과 compact callus와 friable callus간에 특징적인 차이를 보이는 단백질 밴드가 관찰되었다. Friable callus는 약 28 KD, 31 KD과 35 KD에서 특이적으로 나타났으며. compact callus에서는 30 KD부근의 밴드에서 많은 변화가 일어났다. 전체 단백질의 구성 아미노산은 배앙 2∼3주에 가장 높은 함량을 보였고, friable callus에서 그 함량이 가장 낮았다.
Plant regeneration was accomplished from protoplast culture of rice (Oryza sativa L. cv. Taebaeg). Embryogenic callus was induced from mature seed on MS medium containing 5 mM proline, 2.5 mg/L 2,4-D, 30 g/L sucrose in the dark at 28$^{\circ}C$ and used to establish embryogenic cell suspension culture. Suspension cells were subcultured every one week in N6 medium supplemented with 5 mM proline, 200 mg/L casein hydrolysate, 2.5 mg/L 2,4-D and amino acids of AA medium. Suspension cultures were composed of cells that were densely cytoplasmic, potentially embryogenic and were at least maintained for more than 6 months in liquid medium. Protoplasts were isolated from fast-growing suspension culture cells and cultured in a slightly modified KpR medium by mixed nurse culture. Isolated protoplasts began to divide within 5~7 days and thereafter, protoplast-derived calli were sequentially transferred to callus proliferating medium that soft agar MS medium contained 2 mg/L 2,4-D and produced distinct embryogenic cells. Microcolonies were then transferred to solid medium which consisted of MS medium containing 5 mg/L kinetin, 1 mg/L NAA, 1 mg/L ABA, 30 g/L sucrose and 10 g/L sorbitol under fluorescent light. Mulitple shoots of 4~5 per callus emerged and were transferred to hormone-free MS medium for root initiation. Thereafter, The plantlets were transferred to pots of soil to mature in the culture room.
In this paper, we would like to show unexpected morphogenic potential of cell suspensions derived from seedling explants of Gentiana kurroo (Royle). Suspension cultures were established with the use of embryogenic callus derived from seedling explants (root, hypocotyl and cotyledons). Proembryogenic mass proliferated in liquid MS medium supplemented with $0.5mg\;l^{-1}$ 2,4-D and $1.0mg\;l^{-1}$ Kin. The highest growth coefficient was achieved for root derived cell suspensions. The microscopic analysis showed differences in aggregate structure depending on their size. To assess the embryogenic capability of the particular culture, 100 mg of cell aggregates was implanted on MS agar medium supplemented with Kin ($0.0-2.0mg\;l^{-1}$), $GA_3$ ($0.0-2.0mg\;l^{-1}$) and AS ($80.0mg\;l^{-1}$). The highest number of somatic embryos was obtained for cotyledon-derived cell suspension on $GA_3$-free medium, but the best morphological quality of embryos was observed in the presence of $0.5-1.0mg\;l^{-1}$ Kin, $0.5mg\;l^{-1}$$GA_3$ and $80.0mg\;l^{-1}$ AS. The morphogenic competence of cultures also depended on the size of the aggregate fraction and was lower when size of aggregates decreased. Flow cytometry analysis reveled luck of uniformity of regenerants derived from hypocotyl suspension and 100% of uniformity for cotyledon suspension.
Plant cell culture is emerging to express bioactive foreign proteins because it has several advantages in that it is safe, economical, genetically stable and eukaryotic expression system comparing with other expression systems. However several limitations such as slow growth rate, low expression level and lack of well established down stream process need to be answered. As a preliminary approach to produce the immunologically interested molecules through the plant cell culture, we tested if granulocyte-macrophage colony stimulating factors (GM-CSFs) from both murine (mGM-CSF) and human (hGM-CSF) are produced as a biologically active form through plant cell culture. The murine and human GM-CSF genes were cloned into the plant expression vector, pBI121, and Ti-plasmid mediated transformation of tobacco leaves was conducted using Agrobacterium tumefaciens harboring both recombinant GM-CSF (rGM-CSF) genes. Cell suspension culture was established from the leaf-derived calli of transgenic tobacco plant. Northern blot analysis indicated the expression of the introduced mGM-CSF gene in both transgenic plant and cell suspension cultures. In addition, the biological activities of both murine and human GM-CSF from plant cell culture were confirmed by measuring the proliferation of the GM-CSF dependent FDC-PI and TF-1 cells, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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