Park, Byong-Gon;Chun, Joo-Mi;Lee, Chang-Jin;Chun, Gie-Taek;Kim, Ik-Hwan;Jeong, Yeon-Ho
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제5권2호
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pp.123-129
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2000
A high cell density culture system for the anchorage dependent CHO cells was developed based on the combination of in removal of ammonium ion and microcarrier culture system, and semi-fed-batch feeding of glucose and glutamine was employed to the developed culture system. The glass bead was selected as an optimum microcarrier in terms of cell growth. An ammonium ion selective zeolite, Phillipsite-Gismondine, was packed in a dialysis menium ion. The semi-fed-batch operation was employer to the novel culture system for the high density cell culture, and the results showed the cell growth was improved by 32% and tPA productivity by 250%.
Background: Rat mast cells were regarded as a good model for mast cell function in immune response. Methods: Rat bone marrow mast cells (BMMC) were prepared both by recombinant rat IL-3 (rrIL-3) and by recombinant mouse stem cell factor (rmSCF), and investigated for both proliferation and differentiation in time course. Rat BMMC was induced by culture of rat bone marrow cells (BMCs) in the presence of both rrIL-3 (5 ng/ml) and rmSCF (5 ng/ml). Culture media were changed 2 times per week with the cell number condition of $5{\times}10^4/ml$ in 6 well plate. Proliferation was analyzed by cell number and cell counting kit-8 (CCK-8) and differentiation was by rat mast cell protease (RMCP) II and histamine. Results: Cell proliferation rates reached a maximum at 8 or 11 days of culture and decreased thereafter. However, both RMCP II production and histamine synthesis peaked after 11 days of culture. By real time RT-PCR, the level of histidine decarboxylase mRNA was more than 500 times higher on culture day 11 than on culture day 5. By transmission electron microscopy, the cells were heterogeneous in size and contained cytoplasmic granules. Using gated flow cytometry, we showed that cultured BMCs expressed high levels of $Fc{\varepsilon}RI$ and the mast cell antigen, ganglioside, on culture day 11. Conclusion: These results indicate that rat BMMCs were generated by culturing BMCs in the presence of rrII-3 and rmSCF and that the BMMCs have the characteristics of mucosal mast cells.
Plant cell culture is emerging to express bioactive foreign proteins because it has several advantages in that it is safe, economical, genetically stable and eukaryotic expression system comparing with other expression systems. However several limitations such as slow growth rate, low expression level and lack of well established down stream process need to be answered. As a preliminary approach to produce the immunologically interested molecules through the plant cell culture, we tested if granulocyte-macrophage colony stimulating factors (GM-CSFs) from both murine (mGM-CSF) and human (hGM-CSF) are produced as a biologically active form through plant cell culture. The murine and human GM-CSF genes were cloned into the plant expression vector, pBI121, and Ti-plasmid mediated transformation of tobacco leaves was conducted using Agrobacterium tumefaciens harboring both recombinant GM-CSF (rGM-CSF) genes. Cell suspension culture was established from the leaf-derived calli of transgenic tobacco plant. Northern blot analysis indicated the expression of the introduced mGM-CSF gene in both transgenic plant and cell suspension cultures. In addition, the biological activities of both murine and human GM-CSF from plant cell culture were confirmed by measuring the proliferation of the GM-CSF dependent FDC-PI and TF-1 cells, respectively.
대한약학회 2002년도 Proceedings of the Convention of the Pharmaceutical Society of Korea Vol.2
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pp.337.1-337.1
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2002
Hypertrophy and the alteration of renal cell growth have been reported as early abnormality in diabetic nephropathy. However, the effects ot high PKCglucose and its action mechanism in renal proximal tubular cell (PTC) have not been elucidated. High glucose condition increases diacyl glycerol (DAG) and activates protein kinase C (PKC) in renal tubular cells. The PKC activates mitogen-activated protein kinases (MAPK), such as extracellular regulated kinase (ERK) and p38 MAPK. (omitted)
Embryonic stem cell classically cultured on feeder layer with FBS contained ES medium. Feeder-free mouse ES cell culture systems are essential to avoid the possible contamination of nonES cells. First we determined the difference between ES cell and MEF by Oct4 population. We demonstrate to culture and to induce differentiation on feeder free condition using a commercially available mouse ES cell lines.
The developmental capacity of bovine oocytes under three different culture systems was investigated in this experiment ; One was culture in TCM199 with bovine oviductal epithelial cells(BOEC) for in vitro culture, another was culture in TCM199 with BOEC for 2 days and then transfer of 4~8cell embryos to rabbit oviduct(RO) and the other was transfer of 1 or 2cell embryos to RO for in vivo culture. And the other concern of this experiment was to investigate the effect of culture period and transfer site on recovery. Immature bovine oocytes were cultured in TCM199 with granulosa cells for 22-24hrs and then fertilized in vitro using frozen-thawed semen treated with BO-caffine and BO-BSA. Fifteen to 18hrs after in vitro fertilization oocytes were cultured in TCM199 with BOEC or transferred to RO for 5 days. The rate of development to the morula or blastocyst was higher in transfer of 1 or 2cell embryos to RO(23.1%) than culture in TCM199 with BOEC(11.7%). But, there was no difference between transfer of 1 or 2cell embryos and transfer of 4~8cell embryos to RO(12.8%). Recovery under different culture periods in RO was significantly higher in 90~95hrs(70.1%) than 122~125hrs(50.9%, p<0.05) and recovery significantly increased when oocytes were transferred deeper in RO(2.5cm>, 47.7% ; 2.5~4.5cm, 63.9% ; 4.5cm<, 77.3%, p<0.05). The results show that transfer of 1 or 2cell embryos to RO is an effective means of supporting the further development of in vitro matured and fertilized bovine oocytes than culture in TCM199 with BOEC or transfer of 4~8cell embryos to RO, and recovery from RO increases when oocytes are transferred deeper and incubated shorter in RO.
This study described about preparation of the cross-linked silk fibroin (SF) film by ${\gamma}$-irradiation of the casted SF film, which is fabricated from aqueous solution regenerated via fibers of cocoons and their application as supports for human cell culture. The properties of cross-linked SF film were evaluated by FT-IR spectroscopy, contact angle, solubility to water, thermal analysis, surface area analyzer, and morphology via scanning electron microscopy (SEM). The cross-linked SF films were not dissolved in water and exhibited the rough surface morphology, large surface area, and good thermal properties. The human fibroblast cell (CCD-986sk) and embryo kidney-ft cell were well growed on the surface of cross-linked SF film supports prepared by ${\gamma}$-irradiation. The cross-linked SF film prepared by ${\gamma}$-irradiation can be used as biomaterials for human cell culture.
TEM 셀 내에 있는 혈액에 대한 삽입 손실과 반사율을 측정하여, 원하는 혈액 흡수 SAR(Specific Absorption Rate) 선택에 따른 TEM셀 입력 전력을 구하였다. 혈액 세포는 피부 세포와 함께 전자파 영향을 연구하기 위한 기준 세포이다. 따라서 SAR에 따른 혈액 세포에 인가할 전력 산출은 정확해야 함은 물론 타당성이 있어야 한다. 이 연구에서는 g당 혈액 세포가 받는 전력을 산출하기 위해 50 g의 혈액을 이용하여 전달 전력 감소를 측정하였다. 측정된 데이터로부터 휴대폰 전자파 생체 흡수율 SAR 0.8, 1.6, 3, 4 mW/g에 해당하는 TEM셀 입력 전력을 계산하였다. 이 연구 결과는 배양 세포의 전자파 방사 장치에 응용함을 목적으로 하고 있다.
Choi, Na Young;Park, Yo Seph;Ryu, Jae-Sung;Lee, Hye Jeong;Arauzo-Bravo, Marcos J.;Ko, Kisung;Han, Dong Wook;Scholer, Hans R.;Ko, Kinarm
Molecules and Cells
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제37권6호
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pp.473-479
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2014
Spermatogonial stem cells (SSCs, also called germline stem cells) are self-renewing unipotent stem cells that produce differentiating germ cells in the testis. SSCs can be isolated from the testis and cultured in vitro for long-term periods in the presence of feeder cells (often mouse embryonic fibroblasts). However, the maintenance of SSC feeder culture systems is tedious because preparation of feeder cells is needed at each subculture. In this study, we developed a Matrigel-based feeder-free culture system for long-term propagation of SSCs. Although several in vitro SSC culture systems without feeder cells have been previously described, our Matrigel-based feeder-free culture system is time- and cost-effective, and preserves self-renewability of SSCs. In addition, the growth rate of SSCs cultured using our newly developed system is equivalent to that in feeder cultures. We confirmed that the feeder-free cultured SSCs expressed germ cell markers both at the mRNA and protein levels. Furthermore, the functionality of feeder-free cultured SSCs was confirmed by their transplantation into germ cell-depleted mice. These results suggest that our newly developed feeder-free culture system provides a simple approach to maintaining SSCs in vitro and studying the basic biology of SSCs, including determination of their fate.
A perfusion culture of transgenic Nicotiana tabacum cell suspensions, transformed to express recombinant glucuronidase (GUS), was successfully performed in a 5-1 stirred tank bioreactor. With 0.1 $day^{-1}$ of perfusion rate, the maximum dry cell weight (DCW) reached to 29.5 g/l in 16 days, which was 2.1-fold higher than the obtained in batch culture (14.3 g/l). In terms of the production of GUS, the volumetric activity could be increased up to 12.8 U/ml by using perfusion, compared with 4.9 U/ml in batch culture. The specific GUS activities in both perfusion and batch cultures were maintained at similar levels, 200-400 U/g DCW. Consequently, a perfusion culture could be a good strategy for the enhanced production of recombinant proteins in a plant cell culture system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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