The present study was designed to clarify whether tacrine affects the release of catecholamines (CA) from the isolated perfused model of rat adrenal gland or not and to elucidate the mechanism of its action. Tacrine $(3{\times}10^{-5}{\sim}3{\times}10^{-4}\;M)$ perfused into an adrenal vein for 60 min inhibited CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}\;M),$ DMPP (a selective neuronal nicotinic agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) and McN-A-343 (a selective muscarinic M1-agonist, $10^{-4}$ M for 2 min) in relatively dose- and time- dependent manners. However, tacrine failed to affect CA secretion by high $K^+\;(5.6{\times}10^{-2}\;M).$ Tacrine itself at concentrations used in the present experiments did not also affect spontaneous CA output. Furthermore, in the presence of tacrine $(10^{-4}\;M),$ CA secretory responses evoked by Bay-K-8644 (an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels, $10^{-4}\;M),$ but not by cyclopiazonic acid (an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}-ATPase,\;10^{-4}\;M),$ was relatively time-dependently attenuated. Also, physostigmine $10^{-4}\;M),$ given into the adrenal gland for 60 min, depressed CA secretory responses evoked by ACh, McN-A-343 and DMPP while did not affect that evoked by high $K^+.$ Collectively, these results obtained from the present study demonstrate that tacrine greatly inhibits CA secretion from the perfused rat adrenal gland evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors, but does fail to affect that by direct membrane-depolarization. It is suggested that this inhibitory effect of tacrine may be exerted by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells without $Ca^{2+}$ release from the cytoplasmic calcium store, that is relevant to the cholinergic blockade. Also, the mode of action between tacrine and physostigmine in rat adrenomedullary CA secretion seems to be similar.
Endothelins secreted from keratinocytes are intrinsic madiators for human melanocytes in UVB-induced pigmentation. Antimelanogenic ingredient, 1,2-Ο-diferulylglycerol(SM709) isolated from bamboo extract inhibited the melanin synthesis of Bl6F10 melanoma cells by 62%. To understand the cellular mechanism of antimelanogenic activity of SM709 in human melanocytes, the effects of SM709 on the ET-l-induced $Ca^{2+}$ mobilization were investigated. ET-l receptors in human melanocytes were characterized by using specific antagonist and found that ET-l increased intracellular $Ca^{2+}$ by activating ET-B receptor. SM709 completely blocked the ET-l-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase and its inhibitory effect showed dose- and time- dependent manners. To investigate the role of SM709 on intracellular $Ca^{2+}$ store, when the $Ca^{2+}$ store was partially depleted by thapsigargin; a specific inhibitor of ER-type $Ca^{2+}$-ATPase, caffeine-induced $Ca^{2+}$ mobilization did not changed in the presence or absence of SM709, suggesting that SM709 has no effect on the $Ca^{2+}$ store. It is known that LPA receptor and P$_2$ receptor are linked to InsP$_3$ second messenger system. When these receptors in melanocytes were activated by LPA and ATP, the intracellular $Ca^{2+}$ signaling was observed even in the presence of SM709. From the above results, it can be suggested that SM709 has an antimelanogenic activity by antagonizing the ET-B receptor, resulting in subsequent intracellular $Ca^{2+}$ signaling, in UV induced pigmentation.nduced pigmentation.
The purpose of the present study was to examine the effect of dihydrexidine, a full $D_1$ receptor agonist, on the secretion of catecholamines (CA) from the perfused model of the rat adrenal gland, and to establish its mechanism of action. Dihydrexidine (10-100 ${\mu}M$), perfused into an adrenal vein for 60 min, relatively produced dose- and time-dependent inhibition in the CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high $K^+$ (56 mM), DMPP (100 ${\mu}M$) and McN-A-343 (100 ${\mu}M$). Dihydrexidine itself did fail to affect basal CA output. Also, in adrenal glands loaded with dihydrexidine (30 ${\mu}M$), the CA secretory responses evoked by Bay-K-8644 (10 ${\mu}M$), an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels, cyclopiazonic acid (10 ${\mu}M$), an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase, and veratridine, an activator of voltage-dependent $Na+$ channels (10 ${\mu}M$), were also markedly inhibited, respectively. However, in the simultaneous presence of dihydrexidine (30 ${\mu}M$) and R (+)-SCH23390 (a selective antagonist of $D_1$ receptor, 3 ${\mu}M$), the CA secretory responses evoked by ACh, high K+, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644, cyclopiazonic acid and veratridine were considerably recovered to the extent of the corresponding control secretion compared with the inhibitory responses by dihydrexidinetreatment alone. In conclusion, these experimental results suggest that dihydrexidine significantly inhibits the CA secretion evoked by cholinergic stimulation (both nicotinic and muscarinic receptors) and membrane depolarization from the rat adrenal medulla. It seems that this inhibitory effect of dihydrexidine may be mediated by inhibiting influx of both $Ca^{2+}$ and $Na^+$ into the cytoplasm as well as by suppression of $Ca^{2+}$ release from cytoplasmic calcium store through activation of dopaminergic $D_1$ receptors located on the rat adrenomedullary chromaffin cells.
Heart failure is one of the leading causes of sudden death in developed countries. While current therapies are mostly aimed at mitigating associated symptoms, novel therapies targeting the subcellular mechanisms underlying heart failure are emerging. Failing hearts are characterized by reduced contractile properties caused by impaired $Ca^{2+}$ cycling between the sarcoplasm and sarcoplasmic reticulum (SR). Sarcoplasmic/endoplasmic reticulum $Ca^{2+}$ ATPase 2a (SERCA2a) mediates $Ca^{2+}$ reuptake into the SR in cardiomyocytes. Of note, the expression level and/or activity of SERCA2a, translating to the quantity of SR $Ca^{2+}$ uptake, are significantly reduced in failing hearts. Normalization of the SERCA2a expression level by gene delivery has been shown to restore hampered cardiac functions and ameliorate associated symptoms in pre-clinical as well as clinical studies. SERCA2a activity can be regulated at multiple levels of a signaling cascade comprised of phospholamban, protein phosphatase 1, inhibitor-1, and $PKC{\alpha}$. SERCA2 activity is also regulated by post-translational modifications including SUMOylation and acetylation. In this review, we will highlight the molecular mechanisms underlying the regulation of SERCA2a activity and the potential therapeutic modalities for the treatment of heart failure.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.27
no.1
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pp.112-117
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2013
We studied the modulation of pacemaker activities by Samchulkunbi-tang (SCKB) in cultured interstitial cells of Cajal (ICC) from murine small intestine with the whole-cell patch-clamp technique. Externally applied SCKB produced membrane depolarization in the current-clamp mode. The pretreatment with $Ca^{2+}$-free solution and thapsigargin, a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in endoplasmic reticulum, abolished the generation of pacemaker potentials and suppressed the SCKB-induced action. The application of flufenamic acid (a nonselective cation channel blocker) abolished the generation of pacemaker potentials by SCKB. However, the application of niflumic acid (a chloride channel blocker) did not inhibit the generation of pacemaker potentials by SCKB. In addition, the membrane depolarizations were inhibited by not only GDP-${\beta}$-S, which permanently binds G-binding proteins, but also U-73122, an active phospholipase C inhibitor. These results suggest that SCKB modulates the pacemaker activities by nonselective cation channels and external $Ca^{2+}$ influx and internal $Ca^{2+}$ release via G-protein and phospholipase C-dependent mechanism. Therefore, the ICC are targets for SCKB and their interaction can affect intestinal motility.
Objectives: Shengmaisan (SMS) is a traditional Chinese medicine prescription widely used for the treatment of diverse organs in Korea. The interstitial cells of Cajal (ICCs) are pacemaker cells that play an important role in the generation of coordinated gastrointestinal (GI) motility. We have aimed to investigate the effects of SMS in the ICCs in the mouse small intestine. Methods: To dissociate the ICCs, we used enzymatic digestions from the small intestine in a mouse. After that, the ICCs were identified immunologically by using the anti-c-kit antibody. In the ICCs, the electrophysiological whole-cell patch-clamp configuration was used to record pacemaker potentials in the cultured ICCs. Results: The ICCs generated pacemaker potentials in the mouse small intestine. SMS produced membrane depolarization with concentration-dependent manners in the current clamp mode. Pretreatment with a $Ca^{2+}$ free solution and thapsigargin, a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor in the endoplasmic reticulum, stopped the generation of the pacemaker potentials. In the case of $Ca^{2+}$-free solutions, SMS induced membrane depolarizations. However, when thapsigargin in a bath solution was applied, the membrane depolarization was not produced by SMS. The membrane depolarizations produced by SMS were inhibited by U-73122, an active phospholipase C (PLC) inhibitors. Furthermore, chelerythrine and calphostin C, a protein kinase C (PKC) inhibitors had no effects on SMS-induced membrane depolarizations. Conclusions: These results suggest that SMS might affect GI motility by modulating the pacemaker activity through an internal $Ca^{2+}$- and PLC-dependent and PKC-independent pathway in the ICCs.
The purpose of the present study was to examine the effect of naltrexone, an opioid antagonist, on secretion of catecholamines (CA) evoked by cholinergic nicotinic stimulation and membrane-depolarization from the isolated perfused rat adrenal gland and to establish the mechanism of its action. Naltrexone $(3{\times}10^{-6}M)$ perfused into an adrenal vein for 60 min produced time-dependent inhibition in CA secretory responses evoked by ACh $(5.32{\times}10^{-3}M)$ , high $K^+$$(5.6{\times}10^{-2}M)$ , DMPP ($10^{-4}$ M) and McN-A-343 $(10^{-4}M)$ . Naltrexone itself did also fail to affect basal CA output. In adrenal glands loaded with naltrexone $(3{\times}10^{-6}M)$ , the CA secretory responses evoked by Bay-K-8644, an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels and cyclopiazonic acid, an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}-ATPase$, were also inhibited. However, in the presence of met-enkephalin $(5{\times}10^{-6}M)$ , a well-known opioid agonist, the CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly inhibited. Collectively, these experimental results demonstrate that naltrexone inhibits greatly CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as that by membrane depolarization. It seems that this inhibitory effect of naltrexone does not involve opioid receptors, but might be mediated by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells and the uptake of $Ca^{2+}$ into the cytoplasmic calcium store, which are at least partly relevant to the direct interaction with the nicotinic receptor itself.
The aim of the present study was to investigate the effect of glibenclamide, a hypoglycemic sulfonylurea, which selectively blocks ATP-sensitive K$^+$ channels, on secretion of catecholamines (CA) evoked by cholinergic stimulation and membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal glands. The perfusion of glibenclamide (1.0 mM) into an adrenal vein for 90 min produced time-dependently enhanced the CA secretory responses evoked by ACh (5.32 mM), high K$^+$ (a direct membrane depolarizer, 56 mM), DMPP (a selective neuronal nicotinic receptor agonist, 100 ${\mu}$M for 2 min), McN-A-343 (a selective muscarinic M1 receptor agonist, 100 ${\mu}$M for 2 min), Bay-K-8644 (an activator of L-type dihydropyridine Ca$^{2+}$ channels, 10 ${\mu}$M for 4 min) and cyclopiazonic acid (an activator of cytoplasmic Ca$^{2+}$-ATPase, 10 ${\mu}$M for 4 min). In adrenal glands simultaneously preloaded with glibenclamide (1.0 mM) and nicorandil (a selective opener of ATP-sensitive K$^+$ channels, 1.0 mM), the CA secretory responses evoked by ACh, high potassium, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were recovered to the considerable extent of the control release in comparison with that of glibenclamide-treatment only. Taken together, the present study demonstrates that glibenclamide enhances the adrenal CA secretion in response to stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as by membrane depolarization from the isolated perfused rat adrenal glands. It seems that this facilitatory effect of glibenclamide may be mediated by enhancement of both Ca$^{2+}$ influx and the Ca$^{2+}$ release from intracellular store through the blockade of K$_{ATP}$ channels in the rat adrenomedullary chromaffin cells. These results suggest that glibenclamide-sensitive K$_{ATP}$ channels may play a regulatory role in the rat adrenomedullary CA secretion.
The present study was designed to investigate the effect of naloxone, a well known opioid antagonist, on the secretion of catecholamines (CA) evoked by cholinergic stimulation and membrane-depolarization in the isolated perfused rat adrenal glands, and to establish its mechanism of action. Naloxone ($10^{-6}\~10^{-5}$ M), perfused into an adrenal vein for 60 min, produced dose- and time-dependent inhibition of CA secretory responses evoked by ACh ($5.32\times10^{-3}$ M), high K+ ($5.6\times10^{-2}$ M), DMPP ($10^{-4}$ M) and McN-A-343 ($10^{-4}$ M). Naloxone itself also failed to affect the basal CA output. In adrenal glands loaded with naloxone ($3\times10^{-6}$ M), the CA secretory responses evoked by Bay-K-8644, an activator of L-type $Ca^{2+}$ channels, and cyclopiazonic acid, an inhibitor of cytoplasmic $Ca^{2+}$-ATPase, were also inhibited. In the presence of met-enkephalin ($5\times10^{-6}$ M), a well known opioid agonist, the CA secretory responses evoked by ACh, high $K^+$, DMPP, McN-A-343, Bay-K-8644 and cyclopiazonic acid were also significantly inhibited. Taken together, these results suggest that naloxone greatly inhibits the CA secretion evoked by stimulation of cholinergic (both nicotinic and muscarinic) receptors as well as that by membrane depolarization. It seems that these inhibitory effects of naloxone does not involve opioid receptors, but might be mediated by blocking both the calcium influx into the rat adrenal medullary chromaffin cells and the uptake of $Ca^{2+}$ into the cytoplasmic calcium store, which are at least partly relevant to the direct interaction with the nicotinic receptor itself.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1992.05a
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pp.37-37
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1992
세포의 흥분성과 막전위의 조절에 있어서 $K^{+}$ channel의 역할이 크다는 사실이 인정 됨으로서 (Rudy, 1988) $K^{+}$ channel 개방 약물의 약리학적 연구와 임상적 응용에 대한 관심은 높아졌다. Cromakalim, nicorandil 및 pinacidil등이 혈관 평활근을 특히 예민하게 이완시킨다. 작용기전으로서는 세포의 원형질 막을 통한 $K^{+}$ 전도의 항진과 $K^{+}$ outward current의 증가가 막 과분극을 일으킨다. 이러한 결과는 막흥분에 의한 voltage-dependent $Ca^{++}$ channel을 닫게하고 세포내 free $Ca^{++}$의 농도를 감소시켜 혈관의 흥분성과 수축력의 감소를 야기하여 근이완을 야기한다. 한편, 평활근 세포막의 $Na^{+}$-$K^{+}$ ATPase도 활성화하면 electrogenic pump를 가동하여 막 과분극을 일으키고 막 흥분성을 저하시킨다. $Na^{+}$-$K^{+}$ pump는 세포 바깥의 $K^{+}$과 세포안의 $Na^{+}$농도에 의하여 활성화한다.
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