Objective: Compared to Mimas pigeons, Shiqi pigeons exhibit greater tolerance to coarse feeding because of their abundant gut microbiota. Here, to investigate the potential of utilizing intestinal flora derived from Shiqi pigeons, the intestinal flora and body indices of Mimas squabs were evaluated after fecal microbiota transplantation (FMT) from donors. Methods: A total of 90 one-day-old squabs were randomly divided into the control group (CON), the low-concentration group (LC) and the high-concentration group (HC): gavaged with 200 μL of bacterial solution at concentrations of 0, 0.1, and 0.2 g/15 mL, respectively. Results: The results suggested that FMT improved the body weight of Mimas squabs in the HC and LC groups (p<0.01), and 0.1 g/15 mL was the optimal dose during FMT. After 16S rRNA sequencing was performed, compared to those in the CON group, the abundance levels of microflora, especially Lactobacillus, Muribaculaceae, and Megasphaera (p<0.05), in the FMT-treated groups were markedly greater. Random forest analysis indicated that the main functions of key microbes involve pathways associated with metabolism, further illustrating their important role in the host body. Conclusion: FMT has been determined to be a viable method for augmenting the weight and intestinal microbiota of squabs, representing a unique avenue for enhancing the economic feasibility of squab breeding.
Dental professionals are repeatedly exposed to many microorganisms present in both blood and saliva. Thus, dental professionals are at a greater risk of acquiring and spreading infections, and the implementation of infections control guidelines is necessary. Cellular phones have become a necessary device for communicating in hospitals. Cellular phones contaminated with bacteria may serve as a fomite in the transmission of pathogens by the hands of medical personnel. Nevertheless, studies about rate and levels of bacterial contamination of cellular phones have been extremely limited with regards to dental personnel. The purpose of this study was to identify bacterial flora on the cellular phones of dentists by a molecular biological method using the 16S rRNA cloning and sequencing method. We acquired total 200 clones from dentists' cell phones and identified the bacterial species. Pseudomonas (34.6%), Lactobacillus (18.5%), Azomonas (11.5%), and Janthinobacterium (6%) were the dominant genera on dentists' cell phones. The oral bacteria identified were Anaerococcus lactolyticus, Gibbsiella dentisursi, Lactobacills leiae, Streptococcus mitis, Streptococcus oligofermentans, and Streptococcus sanguinis. Pathogenic bacteria and opportunistic pathogens such as Carnobacterium funditum, Raoultella planticola, Shigella flexneri, Lactobacillus iners, Staphylococcus aureus, and Staphylococcus epidermidis were also identified.
Bacterial diversity based on the denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) analysis of PCR-amplified 16S rRNA gene sequences was determined for soil samples from two abandoned mine sites and the corresponding enrichment cultures using soil sample as key inoculum. Sequencing analysis of DGGE bands obtained from both the soil samples matched mostly with sequences of uncultured and newly described organisms, or organisms recently associated with the acid mine drainage environment. However, the enrichment of soil samples in ferrous sulfate and elemental sulfur media yielded sequences that were consistent with well-known iron- and sulfur-oxidizing acidophilic bacteria. Analysis of enrichment cultures of soil samples from Dalsung mine revealed abundant ${\gamma}$-$Proteobacteria$, whereas that of Gubong mine sample displayed acidophilic groups of ${\gamma}$-$Proteobacteria$, ${\alpha}$-$Proteobacteria$, $Actinobacteria$ and $Firmicutes$. Chemical elemental analysis of the mine samples indicated that the Dalsung site contained more iron and sulfate along with other toxic components as compared with those of the Gubong site. Biogeochemistry was believed to be the primary control on the acidophilic bacterial group in the enrichment samples.
Chromium is generated from several industrial processes. It occurs in different oxidation states, but Cr(III) and Cr(VI) are the most common ones. Cr(VI) is a toxic, soluble environmental contaminant. Some bacteria are able to reduce hexavalent chromium to the insoluble and less toxic Cr(III), and thus chromate bioremediation is of considerable interest. An indigenous chromium-reducing bacterial strain, Rb-2, isolated from a tannery water sample, was identified as Ochrobactrum intermedium, on the basis of 16S rRNA gene sequencing. The influence of factors like temperature of incubation, initial concentration of Cr, mobility of bacteria, and different carbon sources were studied to test the ability of the bacterium to reduce Cr(VI) under variable environmental conditions. The ability of the bacterial strain to reduce hexavalent chromium in artificial and industrial sewage water was evaluated. It was observed that the mechanism of resistance to metal was not due to the change in the permeability barrier of the cell membrane, and the enzyme activity was found to be inductive. Intracellular reduction of Cr(VI) was proven by reductase assay using cell-free extract. Scanning electron microscopy revealed chromium precipitates on bacterial cell surfaces, and transmission electron microscopy showed the outer as well as inner distribution of Cr(VI). This bacterial strain can be useful for Cr(VI) detoxification under a wide range of environmental conditions.
발효홍어(홍어회)에 존재하는 박테리아 집단의 다양성을 확인하기 위해, 박테리아의 16S rDNA 절편들을 증폭하고 클로닝하여 라이브러리를 구축하였다. 삽입 서열의 염기서열을 결정한 후, BLAST 분석에 의해 미생물 동정을 하였다. 동일한 삽입서열 빈도를 계산하였을 때, 발효홍어(홍어회)에는 uncultured bacterium clone 054E11.b가 57.1% 나타남으로써 우점균으로 존재하고 있다고 추정하였다. 또한 발효홍어(홍어회) 현탁액을 한천배지에 도말하여 형성된 집락을 콜로니 PCR을 수행하였을 때, Pseudomonas sp. KC-EPS13 등 12 종의 박테리아가 동정되었다. 배양 의존적 방법과 배양 비의존적 방법으로 홍어회를 분석하였을 때, Psychrobacter sp. J466만이 두 가지 방법에서 모두 검출되었고 나머지 박테리아들의 균총은 상이하였다.
Marine sediments are a microbial biosphere with an unknown physiology, and the sediments harbor numerous distinct phylogenetic lineages of Bacteria and Archaea that are at present uncultured. In this study, the structure of the archaeal and bacterial communities was investigated in the surface and subsurface sediments of Jeju Island using a next-generation sequencing method. The microbial communities in the surface sediments were distinct from those in the subsurface sediments; the relative abundance of sequences for Thaumarchaeota, Actinobacteria, Bacteroides, Alphaproteobacteria, and Gammaproteobacteria were higher in the surface than subsurface sediments, whereas the sequences for Euryarchaeota, Acidobacteria, Firmicutes, and Deltaproteobacteria were relatively more abundant in the subsurface than surface sediments. This study presents detailed characterization of the spatial distribution of benthic microbial communities of Jeju Island and provides fundamental information on the potential interactions mediated by microorganisms with the different biogeochemical cycles in coastal sediments.
CHANG, CHUNG EUN;SYLVIA I. PAVLOVA;LIN TAO;EUN-KI KIM;SEUNG CHUL KIM;HYUN SHIK YUN;JAE-SEONG SO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제12권2호
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pp.312-317
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2002
Indigenous lactobacilli were isolated from vaginas of Korean women for possible use in ecological treatment of bacterial vaginosis. Vaginal swab samples were obtained from a gynecological clinic and streaked on Rogosa SL agar plates to select the most predominant lactobacilli in each sample. The preliminary identification of the isolates as lactobacilli was based on microscopic observation of Gram-positive rod-shaped cell morphology. The initial characterization was performed on 108 isolates in terms of their cell surface hydrophobicity (CSH), antimicrobial activity, and hydrogen peroxide (H₂O₂) production capability, and 10 isolates were then selected for further molecular identification. For a rapid procedure to identify lactobacilli, polymerase chain reaction (PCR) and restriction fragment length polymorphism (RFLP) analyses of the l6S rRNA genes were applied. The 10 selected lactobacilli and 9 different reference strains of Lactobacillus spp. were characterized by PCR-RFLP where the amplified l6S rDNA was digested with 7 different restriction endonucleases prior to analysis. DNA sequencing of the 16S rRNA gene of one particular isolate, KLB 46, that had been identified as L. crispatus by the PCR-RFLP analysis, further confirmed its identity as L. crispatus.
Lee, Shin Ae;Kim, Hyeon Su;Sang, Mee Kyung;Song, Jaekyeong;Weon, Hang-Yeon
The Plant Pathology Journal
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제37권6호
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pp.662-672
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2021
Plant growth-promoting bacteria improve plant growth under abiotic stress conditions. However, their effects on microbial succession in the rhizosphere are poorly understood. In this study, the inoculants of Bacillus mesonae strain H20-5 were administered to tomato plants grown in soils with different salinity levels (EC of 2, 4, and 6 dS/m). The bacterial communities in the bulk and rhizosphere soils were examined 14 days after H20-5 treatment using Illumina MiSeq sequencing of the bacterial 16S rRNA gene. Although the abundance of H20-5 rapidly decreased in the bulk and rhizosphere soils, a shift in the bacterial community was observed following H20-5 treatment. The variation in bacterial communities due to H20-5 treatment was higher in the rhizosphere than in the bulk soils. Additionally, the bacterial species richness and diversity were greater in the H20-5 treated rhizosphere than in the control. The composition and structure of the bacterial communities varied with soil salinity levels, and those in the H20-5 treated rhizosphere soil were clustered. The members of Actinobacteria genera, including Kineosporia, Virgisporangium, Actinoplanes, Gaiella, Blastococcus, and Solirubrobacter, were enriched in the H20-5 treated rhizosphere soils. The microbial co-occurrence network of the bacterial community in the H20-5 treated rhizosphere soils had more modules and keystone taxa compared to the control. These findings revealed that the strain H20-5 induced systemic tolerance in tomato plants and influenced the diversity, composition, structure, and network of bacterial communities. The bacterial community in the H20-5 treated rhizosphere soils also appeared to be relatively stable to soil salinity changes.
The process of manufacturing craft beer involves a wide variety of spontaneous microorganisms, acting in different stages of the brewing process, that contribute to the distinctive characteristics of each style. The objective of this work was to compare the structure of microbial communities associated with two different craft beer styles (Doppelbock and Märzen lagers), at a late maturation stage, and to identify discriminative, or style-specific taxa. Bacterial and fungal microbial communities were analyzed by Illumina sequencing of 16S rRNA gene of prokaryotes and the ITS 2 spacer of fungi (eukaryotes). Fungal communities in maturating beer were dominated by the yeast Dekkera, and by lactic acid (Lactobacillus and Pediococcus) and acetic acid (Acetobacter) bacteria. The Doppelbock barrels presented more rich and diverse fungal communities. The Märzen barrels were more variable in terms of structure and composition of fungal and bacterial communities, with occurrence of exclusive taxa of fungi (Aspergillus sp.) and bacteria (L. kimchicus). Minority bacterial taxa, differently represented in the microbiome of each barrel, may underlie the variability between barrels and ultimately, the distinctive traits of each style. The composition of the microbial communities indicates that in addition to differences related to upstream stages of the brewing process, the contact with the wood barrels may contribute to the definition of style-specific microbiological traits.
To elucidate the role and mechanism of microbes, we combined culture-dependent and culture-independent approaches to investigate differences in gut bacterial composition between sows and weaned pigs. Under anaerobic conditions, several nonselective and selective media were used for isolation from fecal samples. All isolated bacteria were identified and classified through 16S rRNA sequencing, and the microbiota composition of the fecal samples was analyzed by metagenomics using next generation sequencing (NGS) technology. A total of 278 and 149 colonies were acquired from the sow and weaned pig fecal samples, respectively. Culturomics analysis revealed that diverse bacterial genus and species belonged to Firmicutes, Actinobacteria, Proteobacteria, and Bacteroidetes were isolated from sow and weaned pigs. When comparing culture-dependent and culture-independent analyses, 191 bacterial species and 2 archaeal bacterial species were detected through culture-independent analysis, and a total of 23 bacteria were isolated through a culture-dependent approach, of which 65% were not detected by metagenomics. In conclusion, culturomics and metagenomics should be properly combined to fully understand the intestinal microbiota, and livestock-derived microbial resources should be informed by culturomic approaches to understand and utilize the mechanism of host-microbe interactions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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