Bloom syndrome protein (BLM) is a pivotal RecQ helicase necessary for genetic stability through DNA repair processes. Our investigation focuses on the N-terminal region of BLM, which has been considered as an intrinsically disordered region (IDR). This IDR plays a critical role in DNA metabolism by interacting with other proteins. In this study, we performed triple resonance experiments of BLM220-300 and presented the backbone chemical shifts. The secondary structure prediction based on chemical shifts of the backbone atoms shows the region is disordered. Our data could help further interaction studies between BLM220-300 and its binding partners using NMR.
Kim, Jihong;Choi, Dongwook;Park, Chankyu;Ryu, Kyoung-Seok
한국자기공명학회논문지
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제19권3호
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pp.112-118
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2015
Hsp31 protein is one of the members of DJ-1 superfamily proteins and has a dimeric structure of which molecular weight (MW) is 62 kDa. The mutation of DJ-1 is closely related to early onset of Parkinson's disease. Hsp31 displays $Zn^{+2}$-binding activity and was first reported to be a holding chaperone in E. coli. Its additional glyoxalase III active has recently been characterized. Moreover, an incubation at $60^{\circ}C$ induces Hsp31 protein to form a high MW oligomer (HMW) in vitro, which accomplishes an elevated holding chaperone activity. The NMR technique is elegant method to probe any local or global structural change of a protein in responses to environmental stresses (heat, pH, and metal). Although the presence of the backbone chemical shifts (bbCSs) is a prerequisite for detailed NMR analyses of the structural changes, general HSQC-based triple resonance experiments could not be used for 62 kDa Hsp31 protein. Here, we prepared the per-deuterated Hsp31 and performed the TROSY-based triple resonance experiments for the bbCSs assignment. Here, detailed processes of per-deuteration and the NMR experiments are described for other similar NMR approaches.
The cytoplasmic domains A and B of the mannitol transporter enzyme $II^{Mtl}$ are covalently linked in Escherichia coli, but separately expressed in Thermoanaerobacter Tengcongensis. The phosphorylation of domain B ($TtIIB^{Mtl}$) substantially increases the binding affinity to the domain A ($TtIIA^{Mtl}$) in T. Tengcongensis. To understand the structural basis of the enhanced domain-domain interaction by protein phosphorylation, we obtained NMR backbone assignments of the phospho-$TtIIB^{Mtl}$ using a standard suite of triple resonance experiments. Our results will be useful to monitor chemical shift changes at the active site of phosphorylation and the binding interfaces.
Mushtaq, Ameeq Ul;Cho, Hye Young;Byun, Youngjoo;Jeon, Young Ho
한국자기공명학회논문지
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제20권2호
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pp.50-55
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2016
Backbone $^1H$, $^{13}C$ and $^{15}N$ resonance assignments are presented for the anticodon binding domain (residues 557-674) of human glycyl-tRNA synthetase (GRS). Role of the anticodon binding domain (ABD) of GRS as an anticancer ligand has recently been reported and its role in other diseases like Charcot-Marie-Tooth (CMT) and polymyositis have increased its interest. NMR assignments were completed using the isotope [$^{13}C/^{15}N$]-enriched protein and chemical shifts based secondary structure analysis with TALOS+ demonstrate similar secondary structure as reported in X-ray structure PDB 2ZT8, except some C-terminal residues. NMR signals from the N-terminal residues 557 to 571 and 590 to 614 showed very weak or no signals exhibiting dynamics or conformational exchange in NMR timescale.
The mannitol transporter Enzyme $II^{Mtl}$ of the bacterial phosphotransferase system has two cytoplasmic phosphoryl transfer domains $IIA^{Mtl}$ and $IIB^{Mtl}$. The two domains are linked by a flexible peptide linker in mesophilic bacterial strains, whereas they are expressed as separated domains in thermophilic strains. Here, we carried out backbone assignment of $IIA^{Mtl}$ from thermophilic Thermoanaerobacter Tencongensis using a suite of heteronuclear triple resonance NMR spectroscopy. We have completed 94% of the backbone assignment, and obtained secondary structural information based on torsion angles derived from the chemical shifts. $IIA^{Mtl}$ of Thermoanaerobacter Tencongensis is predicted to have six ${\beta}$ strands and six ${\alpha}$ helices, which is analogous to $IIA^{Mtl}$ of Escherichia coli.
Transthyretin (TTR) is an important transporter protein for thyroxine (T4) and a holo-retinol protein in human. In its native state, TTR forms a tetrameric complex to construct the hydrophobic binding pocket for T4. On the other hand, this protein is also infamous for its amyloidogenic propensity, which causes various human diseases, such as senile systemic amyloidosis and familial amyloid polyneuropathy/cardiomyopathy. In this work, to investigate various structural features of TTR with solution-state nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy, we conducted backbone NMR signal assignments. Except the N-terminal two residues and prolines, backbone 1H-15N signals of all residues were successfully assigned with additional chemical shift information of 13CO, 13Cα, and 13Cβ for most residues. The chemical shift information reported here will become an important basis for subsequent structural and functional studies of TTR.
MTH1821 (UniProtKB/TrEMBL ID O27849) is a 96-residue hypothetical protein from the open reading frame of Methanobacterium thermoautotrophicum H one of the target organisms of structural genomics pilot project. Proteins which contain conserved sequence compared with MTH1821 have not been discovered yet and the functional and structural information for MTH1821 is not available. Here, we present the sequence-specific backbone resonance using multidimensional heteronuc1ear NMR spectroscopy and propose the secondary structure using GetSBY software. The backbone resonances of N, HN, $C_{\alpha}$, $C_{\beta}$, CO and $H_{\alpha}$ which are necessary for a prediction of secondary structure by GetSBY were assigned about 98% (557/568). The secondary structure of MTH1821 confirmed that it is comprised of four strand regions and two helical regions. This report will provide a valuable resource for the calculation solution structure of MTH1821 and for the other hypothetical protein that is targeted for structural-based functional discovery.
Kim, Won-Je;Lim, Jong-Soo;Son, Woo-Sung;Ahn, Hee-Chul;Lee, Bong-Jin
한국자기공명학회논문지
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제12권2호
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pp.65-73
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2008
HP1298 (Swiss-Prot ID ; P65108) is an 72-residue protein from Helicobacter pylori strain 26695. The function of HP1298 was identified as Translation initiation factor IF-l based on sequence homology, and HP1298 is included in IF-l family. Here, we report the sequence-specific backbone resonance assignments of HP1298. About 97% of all the $^{1}HN$, $^{15}N$, $^{13}C{\alpha}$, $^{13}C{\beta}$, and $^{13}CO$ resonances could be assigned unambiguously. We could predict the secondary structure of HP1298, by analyzing the deviation of the $^{13}C{\alpha}$ and $^{13}C{\beta}$ shemical shifts from their respective random coil values. Secondary structure prediction shows that HP1298 consists of six $\beta$-strands. This study is a prerequisite for determining the solution structure of HP1298 and investigating the structure-function relationship of HP1298. Assigned chemical shift can be used for the study on interaction between HP1298 and other Helicobacter pylori proteins.
Hoxc, or the Homeobox C cluster, is a group of genes that play a crucial role in embryonic development, particularly in patterning the body along the anterior-posterior axis. These genes encode transcription factors, which are proteins that bind to DNA and regulate the expression of other genes. Hoxc9 is specifically involved in the development of the skeletal system, nervous system, and adipose tissue. Hoxc9 overexpression has been linked to the development of various cancers such as leukemia and breast cancer. Here, we assigned the chemical shifts Hoxc9 DNA binding domain (DBD) using heteronuclear NMR techniques. The helical regions of Hoxc9 DBD correspond to the residues T200 - F213 (Helix I), T218 - L229 (Helix II), and T232 - K249 (Helix III). Our result would be helpful for studing the molecular interactions of the Hoxc9 DBD and other proteins.
High mobility group protein B1 (HMGB1) is a highly conserved, non-histone, chromatin associated nuclear protein encoded by HMGB1 gene. HMGB1 proteins may be general co-factors in Hox-mediated transcriptional activation that facilitate the access of Hox proteins to specific DNA targets. It is unclear that the exact binding interface of Hoxc9DBD and HMGB1. To identify the interface and binding affinity of Hoxc9DBD and HMGB1 A-box, the paramagnetic probe, MTSL was used in NMR titration experiment. It is attached to the N-terminal end of HMGB1 A-box by reaction with thiol groups. The backbone assignment of HMGB1 A-box was achieved with 3D NMR techinques. The 15N-labeled HMGB1 A-box was titrated with MTSL-labeled Hoxc9DBD respectively. Based on the chemical shift changes we can identify the interacting residues and further map out the binding sites on the protein structure. The NMR titration result showed that the binding interface of HMGB1 A-box is around loop-1 between helix-1 and helix-2. In addition, the additional contacts were found in N- and C-terminus. The N-terminal arm region of Hoxc9DBD is the major binding region and the loop between helix1 and helix2 is the minor binding region.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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