The mannanase-producing bacteria, designated CS47, was isolated from the fresh feces of three horses (from a farm in Jinju National University). The isolate CS47 was facultatively anaerobic and grew at temperatures ranging from $20^{\circ}C$ to $50^{\circ}C$ with an optimal temperature of $38^{\circ}C$. The DNA G+C content of the isolate CS47 was 44 mlo%. The major fatty acids were anteiso-15:0 (39.6%), 17:0 (7.6%), and iso-15:0 (37.8%). The 16S rRNA gene sequence similarity between the isolate CS47 and other Bacillus strains varied from 93% to 98%. In the phylogenetic analysis based on these sequences, the isolate CS47 and Bacillus amyloliquefaciens clustered within a group and separated from other species of Bacillus. Based on the physiological and molecular properties, the isolate CS47 was classified within the genus Bacillus as Bacillus amyloliquefaciens CS47. The optimal pH and temperature for mannanase activity of B. amyloliquefaciens CS47 were pH 6.0 and $50^{\circ}C$, respectively. The thermal stability of mannanase from B. amyloliquefaciens CS47 is valuable when using this enzyme in industrial application.
In the course of screening for antifungal agents, a bacterial strain, DM3 was isolated from a mud sample collected at Daechon in Chungnam province and identified as Bacillus licheniformis based on API 50CHB test. It has antifungal activity against 12 plant pathogenic fungi in paper disc assay. At the 95% lethal dose of gamma radiation ($^{60}Co$, 10 kGy, $D_{10}=2.32\;kGy$), the antifungal activity deficient mutant (mDM3) against Colletotrichum gloeosporioides was induced From 2-D electrophoresis analysis, serine hydroxymethyltransferase (45.0 kDa), hypothetical protein(40.7 kDa), NifU protein homolog(15.4 kDa), and resolvase(12.5 kDa) homologous proteins were detected only in B. licheniformis DM3. Lysozyme(18.1 kDa) and alkyl hydroperoxide reductase(15.6 kDa) homologous proteins were expressed uniquely in B. licheniformis mDM3. Further studies are needed to reveal that these proteins from B. licheniformis DM3 could be closely related to the antifungal activity against plant pathogenic fungi.
In this work we have investigated the production of catalase from Bacillus sp. strains, which were screened and identified from soil. These strains were cultivated in shaking flasks with tryptic soy broth (TSB) at $30^{\circ}C$ and 200 rpm. Effects of the temperature and pH on the stability of the native catalase and whole cell viability were studied in the temperature range of $25-60^{\circ}C$ and the pH range of 7-13. Korean natural zeolite was added to culture medium and mixed with microorganisms for 24 hours. The native catalase maintained its activity over $50^{\circ}C$. The enzyme acitiviy of the catalase from Bacillus flexus BKBChE-3 was highest among the Bacillus sp. strains studied. Bacillus flexus BKBChE-3 and immobilized Bacillus cells have survived under extreme conditions of over $50^{\circ}C$ and pH 12. 60 mL of 10.5 mM $H_2O_2$ solution were entirely removed within 1 hour with catalase produced from Bacillus sp. on the flask. When Bacillus cells were immobilized on Korean natural zeolite, colony forming unit of Bacillus flexus BKBChE-3 was increased and high efficiency of hydrogen peroxide removal was observed.
To enhance cyclo-His-Pro (CHP) content, soybean hydrolysate was obtained using the strains isolated from Chungkukjang and further purified by various purification steps. First, twenty two strains were screened from Chungkukjang containing high level of CHP. Among them, the strain No. 12, which showed higher productivity of CHP from soybean ferment and have homologous sequence with 16S rDNA of Bacillus amyloliquefaciens, was named B. amyloliquefaciens CHP-12. Through various purification processes, CHP was concentrated from soybean ferment using ultrafiltration, which showed the best efficiency of CHP production, with the yield (71.3%) and CHP content (2.14 mg/g). Moreover, when glucose tolerance test was performed in Type I Sprague-Dawley rat induced by streptozotocin using the soybean ferments [0.5 g soybean ferment/kg body weight (CHP-0.5 group)] and 1.0 g soybean ferment/kg body weight (CHP-1.0 group), there were significant differences in glucose levels between diabetes-control group (265.3 mg/dL) and soybean ferment-treated groups (CHP-0.5 group: 84.3 mg/dL and CHP-1.0 group: 85.3 mg/dL) 120 min after glucose injection (2 g/kg body weight) (p < 0.05). Accordingly, it is suggested that the soybean ferment containing high level of CHP might be a candidate material as an anti-diabetic supplement for manufacturing functional healthy foods.
The microorganisms producing high protease activity and acid producing ability were isolated from Chunggukjang and kimchi, which were identified as Bacillus subtilis and Lactobacillus planetarum by morphological, biochemical and nutrient requirement. The attempt was made to produce soybean milk yoghurt by using the isolated microorganisms. The mixed culture of Bacillus subtilis and Lactobacillus plantarum exhibited the lowest pH value of 4.23 and highest titratable acidity of 0.88% compared to those of single cultures at $37^{\circ}C$ for 32 hrs, and their total viable count was $4.09{\times}10^8$$cfu/m{\ell}$. The ${\alpha}$-amylase activity was the highest in culture of Bacillus subtilis after incubation for 24 hrs, while protease activity was most produced in mixed culture of Bacillus subtilis and Lactobacillus plantarum. The amounts of reducing sugars were steadily decreased as soy milk fermentation progressed.
Lee, Theresa;Park, Dami;Kim, Kihyun;Lim, Seong Mi;Yu, Nan Hee;Kim, Sosoo;Kim, Hwang-Yong;Jung, Kyu Seok;Jang, Ja Yeong;Park, Jong-Chul;Ham, Hyeonheui;Lee, Soohyung;Hong, Sung Kee;Kim, Jin-Cheol
The Plant Pathology Journal
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v.33
no.5
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pp.499-507
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2017
In an attempt to develop a biological control agent against mycotoxigenic Fusarium species, we isolated Bacillus amyloliquefaciens strain DA12 from soil and explored its antimicrobial activities. DA12 was active against the growth of mycotoxigenic F. asiaticum, F. graminearum, F. proliferatum, and F. verticillioides both in vitro and in planta (maize). Further screening using dual culture extended the activity range of strain DA12 against other fungal pathogens including Botrytis cinerea, Colletotrichum coccodes, Endothia parasitica, Fusarium oxysporum, Raffaelea quercus-mongolicae, and Rhizoctonia solani. The butanol extract of the culture filtrate of B. amyloliquefaciens DA12 highly inhibited the germination of F. graminearum macroconidia with inhibition rate 83% at a concentration of $31.3{\mu}g/ml$ and 100% at a concentration of $250{\mu}g/ml$. The antifungal metabolite from the butanol extract was identified as iturin A by thin layer chromatography-bioautography. In addition, volatile organic compounds produced by DA12 were able to inhibit mycelial growth of various phytopathogenic fungi. The volatile compounds were identified as 2-heptanone, 5-methyl heptanone and 6-methyl heptanone by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) analysis. These results indicate that the antagonistic activity of Bacillus amyloliquefaciens DA12 was attributable to iturin A and volatile heptanones, and the strain could be used as a biocontrol agent to reduce the development of Fusarium diseases and mycotoxin contamination of crops.
$\beta $-1, 4-D-arabinogalactanase isolated from alkalophilic Bacillus sp. HJ-12, approximate Mw 42 kDa, was generally stable in the range of pH 6-10 and below 50$\circ$C and its highest activity was observed at 60$\circ$C with pH 7-9. The isolated $\beta $-1, 4-D-arabinogalactanase specifically hydrolyzed $\beta $-1, 4-galactosyl linkage that is the major structure of soybean arabinogalactan (SAG) but not $\beta $-1, 3-galactosyl linkage of the other polysaccharides. K. was estimated as 0.67 mg/ml by the method of Hanes-Woolf plot. No metals and chemical reagents inhibited the enzyme activity but urea did. The active site of this enzyme assumed to be tryptophan residue. The hydrolysis products from SAG, assayed by gel chromatography, TLC and HPLC, were predominantly galactotetraose (Gal$_{4}$) and triose (Gal$_{3}$) with a small portion. $\beta $-1, 4-D-arabinogalactanase hydrolyzed ONPG as well as SAG, and the degree of hydrolysis of SAG was 15% which is lower than that by the other $\beta $-1, 4-galactanases from different sources. SAG treated with this enzyme resulted in the reduction of specific viscosity up to 70%.
This study was performed to investigate the antimicrobial effect of the Viscum album var. coloratum extracts against food-borne pathogens. First, the Viscum album var. coloratum was extracted with methanol at room temperature and the fractionation of the methanol extracts was carried out by using petroleum ether, chloroform, and ethyl acetate, and methanol, respectively. The antimicrobial activity of the Viscum album var. coloratum extracts was determined by using a paper disc method against food-borne pathogens and food spoilage bacteria. The petroleum ether extracts of Viscum album var. coloratum showed the highest antimicrobial activity against Bacillus cereus and Shigella dysenteriae. Synergistic effect in inhibition was observed when Viscum album var. coloratum extract was mixed with Perillae folium extract as compared with each extract alone. Finally, the growth inhibition curves were determined by using petroleum ether extracts of Viscum album var. coloratum against Bacillus cereus and Shigella dysenteriae. The petroleum ether extract of Viscum album var. coloratum had strong antimicrobial activity against Bacillus cereus at the concentration of 5,000 ppm. At this concentration, the growth of Bacillus cereus was retarded more than 24 hours and up to 12 hours for Shigella dysenteriae. In conclusion, the petroleum ether extracts of Viscum album var. coloratum inhibit efficiently Bacillus cereus and Shigella dysenteriae.
An extracellular glutamyl aminopeptidase (EC 3.4.11.7) producing bacterium was isolated from soil and identified as Bacillus licheniformis based on its morphological and physiological characteristics. The aminopeptidase was purified to homogeneity by ammonium sulfate precipitation, Phenyl Sepharose, Resource Q, and Superose 12 column chromatographies. The specific activity of the purified aminopeptidase was 9.2 unit/mg for glutamyl p-nitroanilide with 17.6 purification folds. The purified aminopeptidase had an estimated molecular mass of 64 kDa consists of two different subunits (42 kDa and 22 kDa), and its isoeletric point was 5.2 measured by isoelectric focusing. The optimum pH and temperature of the aminopeptidase were 8.0 and 55$^{\circ}C$, respectively. The aminopeptidase was inhibited by EDTA and 1,10-phenanthroline, suggesting it be a metalloenzyme. Comparing with other aminopeptidase, the enzyme showed relatively high activity against peptide having glutamic acid as N-terminal.
Seventy-one Bacillus cereus strains (12 references and 59 food isolates) were analyzed for the occurrence of five different enterotoxin genes (nheABC, hblCDA, entFM, cytK, and bceT) and one emetic toxin cereulide synthetase gene (ces) by PCR (polymerase chain reaction). PCR analysis revealed eight toxigenic patterns in all B. cereus strains tested; they all carried both entFM and nheABC. The presence of hblCDA, cytK, and bceT varied according to the enterotoxin-producing strains, among which hblCDA was the least frequently detected in the food-isolated strains. Only five B. cereus strains harbored ces, associated with the emetic type of food poisoning; however, these strains were devoid of hblCDA, cytK, and bceT.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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