비예기항체(unexpected antibody)는 ABO 혈액형 항체와는 달리 존재 여부를 미리 예측할 수 없는 항체로 주로 임신이나 수혈 등에 의해 다른 적혈구 항원에 노출됨으로써 발생하는 면역항체로서, 비예기항체는 해당 항원을 가진 수혈된 적혈구를 파괴하여 급성 및 지연성 용혈성부작용이나 신생아용혈성질환 등의 수혈부작용을 유발할 수 있다. 2014년 1월부터 2016년 12월까지 3년간 제주특별자치도 종합병원에 비예기항체 선별검사가 의뢰된 10,360명의 혈청 검체를 대상으로 하였으며, 의뢰된 비예기항체 선별결과 양성 결과를 보인 87 검체를 대상으로 조사하였다. 비예기항체가 선별되었던 87건 중 비예기항체 동정검사를 수탁검사기관으로 의뢰한 41 검체(0.40%) 대상으로 분석한 결과 비특이항체가 8건(19.51%), 자가항체가 3건(7.32%)이었다. 이들을 제외하고 항체가 동정된 것은 anti-E가 8건(19.51%), anti-E, anti-c 복합항체가 6건(14.63%), $anti-Le^a$, $anti-Le^b$ 복합항체가 3건(7.32%), $anti-Le^a$와 $anti-Le^b$가 각각 2건(4.88%)으로 조사되었다. 단일항체로는 anti-D, $anti-Di^a$, $anti-Fy^b$, $anti-Jk^a$, $anti-Jk^b$, anti-M, anti-P1이 각각 1건(2.44%)로 나타났으며 복합항체로는 anti-C+anti-D, anti-E+anti-c+$anti-Jk^b$가 각각 1건(2.44%)로 조사되었다. 단일항체가 동정된 검체는 19건(46.34%), 복합항체가 동정된 검체는 11건(26.83%)로 나타났다. 제주지역의 종합병원은 제주시와 서귀포시에 위치한 종합병원 7개 기관이 있으며, 모두 비예기항체 선별검사를 시행하고 있으며, 검사방법으로는 모든 검사실에서 Ortho BioVue system을 이용한 원주응집법으로 검사를 시행하고 있다. 하지만 비예기항체 동정검사는 외부수탁기관에 의뢰하고 있는 실정이다. 이번 연구는 최근 3년간 제주도내 종합병원 1개 기관에서의 동정된 비예기항체 빈도와 분포를 분석하였지만, 점차적으로 제주도내 다문화가정과 외국인 근로자가 증가 추세에 있어 향후 제주지역에 분포한 다수의 종합병원에서 동정되는 비예기항체의 빈도와 분포를 비교 분석한다면 의미가 있는 연구가 될 것이라고 사료된다.
Multivalent and multi-specific antibodies can provide valuable tools for bio-medical research, diagnosis and therapy. In antigen-antibody interactions, the avidity of antibodies depends on the affinity and the number of binding sites.$^1$ As artificial multivalent antibody agents, single chain Fv-streptavidin fusion tetramer proteins $(scFv-SA)_4$ have been previously tested.$^{1,\;2}$ Although, the Fab domain is known to be more stable than scFv in animal models,$^{3,\;4}$ it has never been used to make a multivalent agent with a streptavidin fusion. In this study, we prepared tetra-valent $(Fab-cSA)_4$ by fusing Fab with core streptavidin (cSA). This molecule was made using inclusion body production, refolding and chromatography purification. Affinities of the Fab-cSA tetramer and a scFv-cSA tetramer to a cell surface antigen were compared by ELISA using biotin-HRP. The Fab-cSA tetramer showed higher binding avidity than the scFv-cSA tetramer. The higher binding avidity of the Fab-cSA tetramer demonstrates its potential as a therapeutic agent for target-specific antibody therapy.
This study was carried out to develope enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for detection of canine brucellosis in dogs experimentally inoculated with Brucella abortus 1119-3 and B. canis RM666. Groups A, B and C of dogs (each group consisting of three dogs) were orally inoculated with approximately $5{\times}10^9$ colony-forming units of B. abortus and B. canis, and with sterile pyrogen-free PBS, respectively. The animals were monitored at regular intervals upto the 12th week post inoculation (PI) by standard tube agglutination test (STAT), plate agglutination test (PAT), Rose Bengal test (RBT), 2-mercaptoethanol rapid slide agglutination test (2ME-RSAT) and ELISA. The induced antibody titers in group A dogs were detected from the first week PI to the eighth week PI in STAT, PAT and RBT using the inactivated whole cells of B. abortus 1119-3 as antigens, while no sera in groups B and C dogs reacted with the antigens. In 2ME-RSAT using whole cells of B. canis M-strain as antigens, the induced antibody titers in group B dogs were observed at the second week PI and persisted for the 12th week PI, while sera of groups A and C dogs did not react with the whole cells. In ELISA using cytoplasmic fractions antigen of B. abortus 1119-3, the mean optical density of antibodies in groups A and B was detected from the first and second weeks PI, respectively, and persisted for 12th week PI, while sera of group C did not cross-react with the fractions antigen. However, in ELISA using the hot saline extracts of B. canis M- as an antigen, the induced antibody titers in only group B dogs were detected from second week PI and persisted for until the end of this study. These results indicate that the ELISA using B. abortus 1119-3 cytoplasmic fractions as antigens can be a good candidate for detection of brucellosis by B. abortus as well as B. canis in dogs.
This study was carried out to investigate the efficacy of rifampin with or without streptomycin in male Sprague-Dawley (SD) rats experimentally inoculated with Brucella abortus. Thirty rats were intraperitoneally inoculated with $1.0{\times}10^9$colony-forming units of B. abortus. They were divided into 3 groups by treatment with antibiotic. 10 rats in Group A were orally administrated with rifampin, 10 rats in Group B with rifampin orally and with streptomycin intramuscularly over 12 weeks starting at 1 week post infection (PI). A placebo recipient in Group C was inoculated with sterile saline without antibiotics. All animals were monitored by tube agglutination test (TAT) and AMOS-PCR to evaluate the efficiency of the antibiotics to B. abortus infection. The antibody titers in Groups A, B and C were 1:400, 1:400 and 1:800 as measured by TAT at the first week PI, respectively. The antibody titer in Group A decreased to 1:100 by the 13th week PI. That in the control group was observed as high antibody titer until 13th weeks PI, but the antibody response in Group B was low(1:50) from the 5th week to the 13th week PI. AMOS-PCR there was evidence of relapse of B. abortus in group A in liver and spleen specimens at the 13th week PI. B. abortus DNA was detected in Group C in liver and spleen specimens from the 1st week to 13th week PI by AMOS-PCR. However AMOS-PCR could not detect any organism in Group B from the 3rd week PI until the end of the study. This study demonstrated that administration of a combination of rifampin and streptomycin was more efficacious than administration of rifampin alone. A significant reduction in antibody titer was observed when a combination of 15 mg/kg/day of rifampin per os and 15 mg/kg/day streptomycin intramuscularly was used in comparison with the antibody of control group.
본 연구는 식중독은 물론, 아토피성 피부염의 원인물질로 알려져 있는 포도상구균 장내독소 B(Staphylococcal enterotoxin B; SEB)에 대한 특이 난황항체를 개발하고자 실험을 실시하였다. 우선, SEB 유전자를 클로닝한 다음, 대장균 발현시스템을 이용하여 약 30 kDa 정도의 재조합 SEB 단백질을 생산하였다. 재조합 SEB 단백질을 산란계에 2주 간격으로 3회 면역접종을 실시하고, 혈청 및 난황 내 항체가를 측정한 결과, 면역 후 4주경에 항체가가 최고치에 달하였으며, 산란계로부터 획득한 난황항체를 이용한 Western blot 결과, 재조합 SEB 단백질은 물론, 상용화 SEB 단백질과도 특이적으로 반응한다는 것을 규명하였다. 결론적으로, 식중독과 아토피성 피부염 등의 원인물질로 알려진 SEB에 특이적인 난황항체를 생산에 성공하였으며, 이러한 특이적인 난황항체는 식중독 및 아토피성 피부염의 예방 및 치료에 활용 가능할 것으로 사료된다.
Sodium butyrate (NaBu) is used as an enhancer for the production of recombinant proteins in Chinese hamster ovary (CHO) cells. However, NaBu is well-known for its cytotoxic effect, thereby inducing apoptosis. CHO cells which had been engineered to express a humanised anti-HBV antibody were cultured using serum-free medium, Ex-cell 301. From a seeding density of $2{\times}10^5$ cells/ml, CHO cells grown with serum-free medium reached a maximum cell density of $1.3{\times}10^6$ cells/ml after 9 days in culture and produced a maximal antibody concentration of 130 mg/l after 13 days in culture. In the perfusion culture system, CHO cells producing anti-HBV antibody grown in an 7.5 1 bioreactor seeded with $2{\times}10^5$ cells/ml reached a maximal antibody concentration of 85 mg/1 after 720 h in culture. The addition of 0.3 mM NaBu and lowering culture temperature to $33^{\circ}C$ elongated the culture period to 60 days and increased the production yield by 2-fold, compared to control culture.
To examine the effects of vaccination against Babesia gibsoni(B gibsoni) infection in dogs, 15 normal mixed-breed dogs(5 months to 1 year old) were divided into 3 groups with 5 dogs in each group. One of them was selected as control group(group A) and other were selected as experimental groups(group B and C). The group B was vaccinated with antigen which were mixed 0.2% of formalin treated B gibsoni and sonicated one. The group C was inoculated Theileria sergenti as a non-specific antigen. The results obtained in this experiment were summarized as follows; 1. After first vaccination, antibody titers of group B and C were increased 5 times(1:200) than those of control group(1 : 40). The antibody titers of group C were increased more than that of group B after second vaccination. When challenged with the living protozoa(Babesia gibsoni), the antibody titers of C group were elevated higher than that of B group and maintained steadly. Those were not exceeded over 1 : 5,000 for 4 weeks in all 3 groups. 2. After challenge, the peak time of the parasitemia appeared nearly on the 15th day(12~18 days) in all groups. During this period, the rate of parasitized erythrocytes in control group was $55.0{\pm}5.4$‰. But that of group B and C were $41.3{\pm}38.8$‰ and $15.2{\pm}16.3$‰, respectively. 3. After challenge with B gibsoni, all of the values of PCV, Hb, RBC and total leukocytes counts were decreased in both of the experimental and the control. 4. In all groups, there were increased lymphocytes and monocytes after challenge with the protozoa.
Background: Disialoganglioside GD2 is a tumor-associated antigen that is overexpressed on tumor cells of neuroectodermal origin, such as melanoma and neuroblastoma. Anti-idiotypic antibodies that mimic GD2 may induce more effective immune responses than GD2 antigen itself, because they are protein antigens and are known to be able to break immune tolerance. In this study, to explore the potential of anti-idiotypic antibodies as tumor vaccines, the ability of anti-idiotypic antibodies (Ab2) to induce anti-anti-idiotypic antibodies (Ab3) that bind to the original antigen GD2 was investigated. Methods: Six monoclonal anti-idiotypic antibodies (1A8, 1G5, 2B6, 3A4, 3D6, 3H9) to monoclonal antibody M2058, which is a monoclonal antibody to GD2, were produced in mice. Three (1A8, 3A4, 3H9) of them were selected based on their ability to inhibit the binding of Ab1 to D142.34 (murine melanoma cell expressing GD2). These 3 different Ab2 were injected into rabbits, and rabbit Ab3 induced by each of them were characterized. Results: Ab3-containing sera from two rabbits immunized with 1A8, 3A4, or 3H9 bound significantly (P<0.05) to D142.34 but not to B78.96 (GD2-negative cell), and bound significantly (P<0.05) to isolated GD2 but not to GD1a. Ab3-containing sera from two rabbits immunized with 3A4 or 3H9 inhibited significantly (P<0.05) the binding of Ab1 M2058 to D142.34, and inhibited significantly (P<0.05) the binding of Ab1 M2058 to the Ab2. Conclusion: These results suggest that anti-idiotypic antibodies 3A4 and 3H9 have a potential to be used as vaccines against tumors expressing GD2 by inducing GD2-specific antibodies (Ab3).
Cross-reactive material 197 ($CRM_{197}$) is a non-toxic mutant of diphtheria toxin containing a single amino acid substitution of glycine 52 with glutamic acid. $CRM_{197}$ has been used as a carrier protein for poorly immunogenic polysaccharide antigens to improve immune responses. In this study, to develop a sandwich ELISA that can detect $CRM_{197}$ and $CRM_{197}$ conjugate vaccines, we generated a human anti-$CRM_{197}$ monoclonal antibody (mAb) 3F9 using a phage-displayed human synthetic Fab library and produced mouse anti-$CRM_{197}$ polyclonal antibody. The affinity ($K_D$) of 3F9 for $CRM_{197}$ was 3.55 nM, based on Bio-Layer interferometry, and it bound specifically to the B fragment of $CRM_{197}$. The sandwich ELISA was carried out using 3F9 as a capture antibody and the mouse polyclonal antibody as a detection antibody. The detection limit of the sandwich ELISA was <1 ng/ml $CRM_{197}$. In addition, the 3F9 antibody bound to the $CRM_{197}$-polysaccharide conjugates tested in a dose-dependent manner. This ELISA system will be useful for the quantification and characterization of $CRM_{197}$ and $CRM_{197}$ conjugate vaccines. To our knowledge, this study is the first to generate a human monoclonal antibody against $CRM_{197}$ and to develop a sandwich ELISA for $CRM_{197}$ conjugate vaccines.
사람의 serine palmitoyltransferase(SPT, EC 2.3.1.50)에 대한 항체를 제작하기 위하여 E. coli발현 vector인 pRset vector에 SPTLC1 및 SPTLC2 유전자를 subcloning하고 BL21 (DE3)pLys cell에 발현시켰다. 포유동물의 SPT는 원핵세포의 SPT homodimer와는 달리 SPTLC1 및 SPTLC2 2개의 sub-unit로 된 heterodimer이다. Human embryo kidney cell인 HEK293 cell의 total RNA로부터 RT-PCR을 행하여 cDNA library를 얻은 다음 SPTLC1 및 SPTLC2의 특이적인 primer 들을 이용하여 PCR을 행하였다. SPTLC1 및 SPTLC2 DNA를 hexahistidine fusion 단백질을 발현시킬 수 있는 pRset vector에 cloning하여 pRsetB/SPTLC1 및 pRsetA/SPTLC2를 얻고 염기서열을 확인하였다. 재조합 plasmid를 발현세포인 BL21 cell에 형질전환시킨 다음 ampicillin 및 chroramphenicol 배지에서 선별하여 재조합세포를 얻었다. 1 mM IPTG로서 발현을 유도하였으며 세포 단백질을 SDS-PAGE로 분리한 다음 His-tag antibody로 western blotting을 행하여 SPTLC 및 SPTLC2가 발현되었음을 확인하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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