Molecular and functional characterization of proteins and their levels is of great interest in understanding the mechanism of diverse cellular processes. In this study, we report on the convenient Escherichia coli-based protein expression system that allows recombinant of soluble proteins expression and cytosolic domain of membrane-localised kinases, followed by the detection of autophosphorylation activity in protein kinases. This approach is applied to regulatory proteins of Arabidopsis thaliana, including 14-3-3, calmodulin, calcium-dependent protein kinase, TERMINAL FLOWER 1(TFL1), FLOWERING LOCUS T (FT), receptor-like cytoplasmic kinase and cytoplasmic domain of leucine-rich repeat-receptor like kinase proteins. Our Western blot analysis which uses phospho-specific antibodies showed that five putative LRR-RLKs and two putative RLCKs have autophosphorylation activity in vitro on threonine and/or tyrosine residue(s), suggesting their potential role in signal transduction pathways. Our findings were also discussed in the broader context of recombinant expression and biochemical analysis of soluble and membrane-localised receptor kinases in microbial systems.
Phytochelatins play an important role in heavy metal detoxification in plants as well as in other organisms. The Arabidopsis thaliana mutant cad1-3 does not produce detectable levels of phytochelatins in response to cadmium stress. The hypersensitivity of cad1-3 to cadmium stress is attributed to a mutation in the phytochelatin synthase 1 (AtPCS1) gene. However, A. thaliana also contains a functional phytochelatin synthase 2 (AtPCS2). In this study, we investigated why the cad1-3 mutant is hypersensitive to cadmium stress despite the presence of AtPCS2. Northern and Western blot analyses showed that expression of AtPCS2 is weak compared to AtPCS1 in both roots and shoots of transgenic Arabidopsis. The lower level of AtPCS2 expression was confirmed by RT-PCR analysis of wild type Arabidopsis. Moreover, no tissue-specific expression of AtPCS2 was observed. Even when AtPCS2 was under the control of the AtPCS1 promoter or of the cauliflower mosaic virus 35S promoter (CaMV 35S) it was not capable of fully complementing the cad1-3 mutant for cadmium resistance.
The effect of transgene inactivation in T2, T3 and F2 generations was analyzed in progeny seedlings which had been generated by Agrobacterium (LBA4404/pBI121)-mediated transformation in Arabidopsis thaliana. In a system which investigated in the expression of $\beta$-glucuronidase(GUS)gene in kanamycin-resistant (ke $n^{R}$)seedlings, GUS inactivated seedlings were observed in 5 of 12 tested lines of T2 generation and the frequency of GUS inactivation was approximately 2.3%. Lines with multi-copies of T-DNA exhibited severe GUS gene inactivation with the frequency of 5.8% in T2 generation. In T3 generation lines exhibited GUS gene inactivation with the frequency of 1.3%. In contrast, inactivation increased dramatically up to 12.6% in multi-copy T-DNA line. A similar phenomenon was also found in F2 progeny from a transgenic line which had been crossed with wild-type Arabidopsis plant, WS-O (GUS gene inactivation frequency 9.9%). These results indicate that the foreign gene introduced into the plant was inactivated progressively in its transmission during subsequent generations and the transgenic line with multi-copies of T-DNA tended to show more increased inactivation.
MYB-type transcription factors (TFs) play important roles in plant growth and development, and in the rapid responses to unfavorable environmental conditions. We recently reported the isolation and characterization of a rice (Oryza sativa) MYB TF, OsMYB102, which is involved in the regulation of leaf senescence by downregulating abscisic acid (ABA) biosynthesis and the downstream signaling response. Based on the similarities of their sequences and expression patterns, OsMYB102 appears to be a homolog of the Arabidopsis thaliana AtMYB44 TF. Since AtMYB44 is a key regulator of leaf senescence and abiotic stress responses, it is important to examine whether AtMYB44 homologs in other plants also act similarly. Here, we generated transgenic Arabidopsis plants expressing OsMYB102 (OsMYB102-OX). The OsMYB102-OX plants showed a delayed senescence phenotype during dark incubation and were more susceptible to salt and drought stresses, considerably similar to Arabidopsis plants overexpressing AtMYB44. Real-time quantitative PCR (RT-qPCR) revealed that, in addition to known senescence-associated genes, genes encoding the ABA catabolic enzymes AtCYP707A3 and AtCYP707A4 were also significantly upregulated in OsMYB102-OX, leading to a significant decrease in ABA accumulation. Furthermore, protoplast transient expression and chromatin immunoprecipitation assays revealed that OsMYB102 directly activated AtCYP707A3 expression. Based on our findings, it is probable that the regulatory functions of AtMYB44 homologs in plants are highly conserved and they have vital roles in leaf senescence and the abiotic stress responses.
The effect of NAA and Benzyladenine(BA) for determination times on the formation of adventitious shoots, roots trichmoes and calli in MS basal medium was investigated in leaf segments from ecotype 'Nosses' of Arabidopsis thalliana. Adventitious shoots, roots, trichomes and calli were formed fromed from leaf segments in a wede range of NAA and BA. The optimal combination of hormones for adventitious shoots formation, 20mg/L NAA for trichome formation, 100mg/L for callus formation. Inductive times for formation of adventitious shoots, roots, trichomes and calli were determined at 14, 4, 6 and 18 days respectively by periodical transfer of leaf segments from hormines containing media to hormone free medium.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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2002.04a
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pp.73-82
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2002
The committing step in Met and S-adenosyl-L-methionine (SAM) synthesis is catalyzed by cystathionine ${\gamma}$ -synthase (CGS). Transgenic Arabidopsis thaliana overexpressing CGS under control of 35S promoter show increased soluble Met and its metabolite S-methylmethionine, but only at specific stages of development. CGS-overexpressing seedlings are resistant to ethionine. Similar results were obtained with transgenic potato plants overexpressing Arabidopsis CGS. Several of the transgenic lines show silencing of CGS resulting in deformed p]ants with a reduced capacity for reproductive growth similar as transgenic plants by antisense RNA (CGS[-]). Exogenous feeding of Met to the CGS[-] and CGS[+] silenced plants partially restores their growth. Similar morphological deformities are observed in plants cosuppressed for SAM synthetase, even though such plants accumulate 250 fold more soluble Met than wild type and they overexpress CGS. The results suggest that the abnormalities associated with CGS and SAM synthetase silencing are due in part to a reduced ability to produce SAM, and that SAM may be a regulator of CGS expression.
Over-expression of a copper/zinc superoxide dismutase (Cu/ZnSOD) resulted in substantially increased tolerance to cadmium exposure in Arabidopsis thaliana. Lower lipid peroxidation and $H_2O_2$ accumulation and the higher activities of $H_2O_2$ scavenging enzymes, including catalase (CAT) and ascorbate peroxidase (APX) in transformants (CuZnSOD-tr) compared to untransformed controls (wt) indicated that oxidative stress was the key factor in cadmium tolerance. Although progressive reductions in the dark-adapted photochemical efficiency (Fv/Fm) and quantum efficiency yield were observed with increasing cadmium levels, the chlorophyll fluorescence parameters were less marked in CuZnSOD-tr than in wi. These observations indicate that oxidative stress in the photosynthetic apparatus is a principal cause of Cd-induced phytotoxicity, and that Cu/ZnSOD plays a critical role in protection against Cd-induced oxidative stress.
This study was to examine the accumulated concentration of lead in the organ of Arabidopsis thaliana grown in the soil added three different concentrations of lead. The accumulated concentrations of lead in the stem of plant grown in the soil added official standard concentration of lead of pollutant exhaust notified by the Ministry of Environment (1 mg/l), concentration ten times higher than the official standard concentration (10 mg/l) and concentration fifty times higher (50 mg/l) were similar to the rate of increase between three different concentrations, and increased average 24% compared with normal plant stem. The accumulated concentrations of lead in the leaf of plant grown in the soil added three different concentrations of lead were increased average 57% compared with normal plant leaf. And accumulated concentrations of lead in the leaf was no significant difference according to increase of lead concentration added in the soil as stem, the rate of increase was similar to between three different concentrations. The accumulated concentrations of lead in the root of plant grown in the soil added official standard concentration of lead of pollutant exhaust and concentration ten times higher were increased average 114% compared with normal plant root, but increased about 861% in the concentration fifty times higher than the official standard concentration. This result contrast with the data of stem and leaf. The accumulated concentration of lead in the plant body of Arabidopsis thaliana was increased according to increase of lead concentration added in the soil. Especially, the accumulated concentration of lead in the plant body grown in the concentration fifty times higher than the official standard concentration was increased about 2.6 times than normal plant. These results show that lead contaminated within the soil was more accumulated in the root than the stem or leaf, and accumulated concentrations of lead in the stem and leaf were not increased in proportion to the concentration of lead in the soil, but very increased in proportion to the concentration in the root.
We identified cdf based on screening of the Arabidopsis cDNA library for functional suppressors of the AtBI-1 (a gene described to suppress the cell death induced by Bax gene expression in yeast). The cdf was located on Chr. V and was composed of 5 exons and 4 introns. It encodes a protein of 258 amino acid residues with a molecular weight of 28.8 kDa. The protein has 3 transmembrane domains in the C-terminal region. The cdf has one homologue, named cdf2, which was found in Arabidopsis. Like cdf, cdf2 also induced growth defect in yeast. The effect of the cell growth defect factor was somewhat lower than Bax. cdf could arrest the growth of yeast. Its localization to the nucleus was essential for the suppression of yeast cell proliferation. Morphological abnormality of intracellular network, which is a hallmark of AtBI-1, was attenuated by expression of cdf.
Remorins, a family of plant-specific proteins containing a variable N-terminal region and conserved C-terminal domain, play a role in various biotic and abiotic stresses, including host-microbe interactions. However, their functions remain to be completely elucidated, especially for the Arabidopsis thaliana remorin group 4 (AtREM4). To elucidate the role of remorins in Arabidopsis, we first showed that AtREM4s have typical molecular characteristics of the remorins, such as induction by various types of biotic and abiotic stresses, localization in plasma membrane and homo- and hetero-oligomeric interaction. Next, we showed that their loss-of-function mutants displayed reduced susceptibility to geminiviruses, Beet Curly Top Virus and Beet Severe Curly Top Virus, while overexpressors enhanced susceptibility. Moreover, we found that they interacted with SnRK1, which phosphorylated AtREM4.1, and were degraded by the 26S proteasome pathway. These results suggest that AtREM4s may be involved in the SnRK1-mediated signaling pathway and play a role as positive regulators of the cell cycle during geminivirus infection.
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