Background: PM is known to induce various pulmonary diseases, including asthma, cancer, fibrosis and chronic bronchitis. Despite the epidemiological evidence the pathogenesis of PM-related pulmonary diseases is unclear. Methods: This study examined the effects of PM exposure on the secretion of $TNF-{\alpha}$ and $IL-1{\beta}$ in the cultured alveolar macrophages. The cultured primary alveolar macrophages were treated with the medium, PM ($5{\sim}20{\mu}g/cm^2$), LPS (5ng/ml), and PM with LPS for 24h and 48h respectively. ELISA was used to assay the secreted $TNF-{\alpha}$ and $IL-{\beta}$ in the culture medium. Western blotting was used to identify and determine the level of proteins isolated from the culture cells. The cells cultured in the $Lab-Tek^{(R)}$ chamber slides were stained with immunocytochemical stains. Results: PM induced $TNF-{\alpha}$ and $IL-1{\beta}$ secretion in the culturing alveolar macrophages, collected from the SPF and inflammatory rats. However, the effects were only dose-dependent in the inflammatory macrophages. When the cells were co-treated with PM and LPS, there was a significant synergistic effect compared with the LPS in the both cell types. Conclusion: PM might be play an important role in the induction and/or potentiation of various lung diseases by oversecretion of $TNF-{\alpha}$ and $IL-1{\beta}$.
Background: The alveolar macrophage may metabolize arachidonic acid through cyclooxygenase- and lipoxygenase- catalyzed pathways to produce a variety of metabolites of arachidonic acid. The production of these metabolites of arachidonic acid may enhance the defensive ability of the challenged lung. However, continued stimulation with the consequent production of proinflammtory metabolites of arachidonic acid, may ultimately enhance the disease process by contributing to chronic bronchoconstriction, fibrosis, and the persistent release of toxic oxygen species. Silicosis is an example of a disease process resulting from chronic exposure of the lung to foreign particles. This study was carried out to evaluate the changes of arachidonic acid metabolites from macrophages in experimental silicosis. Methods: We measured $PGE_2$, and $LTB_4$ in cultured macrophages taken from rats by radioimmunoassay at 24 and 48 hours after stimulation by silica dust, natural carbon dust, lipopolysaccharide, calcium ionophore (A23187) and medium (RPMI) as a control. For the experimental silicosis, 50 mg silica in 0.5 ml saline was administered intratracheally into the rat and grown to 20 weeks and measured $PGE_2$, and $LTB_4$ in the cultured macrophages lavaged from that rat. The used stimulants were the same as above. Results: 1) The amount of $PGE_2$ in the cultred macrophages from normal rat was significantly decreased in the group which was stimulated with silica dust for 48 hours compare with control non-stimulated group. 2) In the experimental silicosis group, $PGE_2$, release in cultured macrophages after 48 hours incubation with silica and natural carbon dust tended to be lower than those of non-stimulated group. 3) There were marked changes of $LTB_4$ in the groups of normal rats which were incubated with silica for 24, 48 hours and natural carbon for 48 hours compared with non-stimulated group. 4) In the experimental silicosis group, the release of $LTB_4$ was significantly increased macrophages cultured with silica and natural carbon dust after 24 and 48 hours incubation compared with non-stimulated group. Conclusion: The results of these studies suggest that the in vitro exposure of rat alveolar macrophge to silica and coal dust results in an alteration in alveolar macrophage metabolism of arachidonic acid that may promote an inflammatory reaction in lung tissue.
Klimenko, Oxana V.;Vobruba, Vaclav;Martasek, Pavel
BMB Reports
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v.43
no.4
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pp.257-262
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2010
The aim of work was to investigate changes of 7-ketocholesterol synthesis in alveolar macrophages in the dynamic of lung mechanical ventilation with injurious parameters. The goal of in vitro part of work was to observe influence of 7-ketocholesterol on iNOS and MIP1 $\beta$ production in bronchoalveolar lavage fluid (BALF) cells. We used 17 healthy domestic pigs randomly assigned into two treatment groups: group I with mechanical ventilation with physiological parameters; group II underwent injurious ventilation with high volume tidal (VT) and low positive end expiratory pressure (PEEP). Cells were analyzed for CYP27A1 protein and gene expression levels, 7-ketocholesterol production. In alveolar macrophages of group II, we obtained increase of production of CYP27A1 protein and 7-ketocholesterol, as well as the expression of the CYP27A1 gene at the 2nd hour of ventilation. In the in vitro experiments we show dose-dependent increase of MIP1 $\beta$ and decrease of CYP27A1, iNOS protein production after 7-ketocholesterol treatment.
The phagocytosis and chemotaxis of murine macrophages after treated with saponin fractions are investigated. Phagocytic appearance against yeast was photographed by dying with Wright-Giemsa. Phagocytic activity of peritoneal macrophage was invreased in diol saponin treatment by 48% and was decreased in total saponin treatment by 35%. The ingestion of alveolar macrophage was increased by 50% maximally. Peritoneal chemotactic activity was shown in 17% increases and only diol saponin had effect in alveolar macrophage by 16%. According to SDS-PAGE method the contents of actin did not show any alterations.
Ji-Hye Jung;Se-Ran Yang;Woo Jin Kim;Chin Kook Rhee;Seok-Ho Hong
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.87
no.1
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pp.52-64
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2024
Chronic respiratory diseases such as idiopathic pulmonary fibrosis, chronic obstructive pulmonary disease, and respiratory infections injure the alveoli; the damage evoked is mostly irreversible and occasionally leads to death. Achieving a detailed understanding of the pathogenesis of these fatal respiratory diseases has been hampered by limited access to human alveolar tissue and the differences between mice and humans. Thus, the development of human alveolar organoid (AO) models that mimic in vivo physiology and pathophysiology has gained tremendous attention over the last decade. In recent years, human pluripotent stem cells (hPSCs) have been successfully employed to generate several types of organoids representing different respiratory compartments, including alveolar regions. However, despite continued advances in three-dimensional culture techniques and single-cell genomics, there is still a profound need to improve the cellular heterogeneity and maturity of AOs to recapitulate the key histological and functional features of in vivo alveolar tissue. In particular, the incorporation of immune cells such as macrophages into hPSC-AO systems is crucial for disease modeling and subsequent drug screening. In this review, we summarize current methods for differentiating alveolar epithelial cells from hPSCs followed by AO generation and their applications in disease modeling, drug testing, and toxicity evaluation. In addition, we review how current hPSC-AOs closely resemble in vivo alveoli in terms of phenotype, cellular heterogeneity, and maturity.
Background : Particulate matters (PM) when inhaled is known to induce pulmonary diseases including asthma and chronic bronchitis when inhaled. Despite the epidemiological proofevidence, the pathogenesis of PM-related pulmonary diseases is unclearremain poorly understood. Methods : Primary alveolar macrophages were harvested from the SPF and inflammatory rats by bronchioalveolar lavage (BAL). The cultured primary alveolar macrophages were treated with the medium only, PM only ($5{\sim}40{\mu}g/cm^2$), LPS (5ng/ml) only, and PM with LPS for 24 and 48 hours. The level of secreted nitric oxide (NO) was assayed from the cultured medium by using the Griess reaction. The cultured cells were utilized for the western blotting against the inducible nitric oxide synthase (iNOS) proteins. Immunocyto- chemical staining against the iNOS and NT-proteins were performed in cells that cultured in the $Lab-Tek^{(R)}$ chamber slide after treatments. Results : The PM that utilizein this experiments induced NO formation with iNOS expression in the cultured SPF and inflammatory rats alveolar macrophages, by itself. When the cells were co-treated with PM and LPS, there was a statistically significant synergistic effect on NO formation and iNOS expression over the LPS effect. The cells from the sham control showed minimal immunoreactivity for the NT-proteins. Significantly higher quantities of NT-proteins were detected in the PM and PM with LPS co-treated cells than from the sham control. Conclusion : Increased iNOS expression and NO formation with increased NT-proteins formation might be involved in the pathogenesis of PM-induced lung injury.
Our previous study showed that lungs infected by Pseudomonas, a gram-negative bacteria, produce prostaglandin $D_2$ ($PGD_2$) and prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$), the two major prostanoids generated by cyclooxygenase-2 (COX-2), and that the ratio of $PGD_2$ and $PGE_2$ can affect the outcome of the bacterial lung infection. In this study, we sought to uncover the mechanism that determines the ratio of $PGD_2$ and $PGE_2$ produced in lung inflammation. When treated with lipopolysaccharide (LPS), primary alveolar macrophages, extracted from mouse lung, more $PGE_2$ was produced than $PGD_2$, whereas MH-S, a murine alveolar macrophage cell line, produced more $PGD_2$ than $PGE_2$ in a similar experiment. Western blot analyses showed that the kinetics of COX-2 expression in both cell types is similar and epigenetic silencing of COX-2 expression did not affect expressions of lipocalin-PGD synthase (L-PGDS) and PGE synthase (mPGES-1), major enzymes synthesizing $PGD_2$ and $PGE_2$ in inflammation, respectively, indicating no effect of COX-2 on expressions of the two enzymes. Expressions of L-PGDS and mPGES-1 were also similar in both cell types, suggesting no effect of the two key enzymes in determining the ratio of $PGD_2$ and $PGE_2$ in these cells. A single intraperitoneal injection of LPS to C57BL/6 mice induced COX-2 expression and, similar to alveolar macrophages, produced more $PGE_2$ than $PGD_2$ in the lung. These results suggest that the differential expressions of $PGD_2$ and $PGE_2$ in the lung reflect those in alveolar macrophages and may not be directly determined by the enzymes responsible for $PGD_2$ and $PGE_2$ synthesis.
Background: TNF-alpha is related to the generation of lung fibrosis in patients with UIP. The precise mechanism leading to lung fibrosis by TNF-alpha is unknown. However, the activation of a transcription factor like AP-1(down stream of c-jun N-terminal kinase, JNK) by TNF-alpha may be related to the induction of fibrogenic cytokines like PDGF or IGF-I. Furthermore, JNK was reported to be activated in the radiation-induced lung fibrosis model. This study examined JNK activity in patients with UIP. Methods : The expression of phosphorous JNK(p-JNK), macrophage/monocyte specific markers, CD68, and cytokeratin was evaluated by immunohistochemical(IHC) staining of lung tissues from patients with UIP and lung cancer. An in vitro kinase assay was performed with alveolar macrophages obtained by a bronchol-avleolar lavage from patients with UIP and healthy persons as the control. Results : The IHC stain showed that p-JNK is expressed in the almost all of the alveolar macrophages and smooth muscle cells in patients with UIP. In case of the normal areas of the lung from patients with lung cancer, the alveolar macrophages showed little p-JNK expression. Interestingly, increased JNK activity was not found in the in vitro kinase assay of the alveolar macrophages obtained from both patients with UIP and healthy persons as the control. Furthermore, 10 ng/mL of TNF-alpha failed to increase the JNK activity of the alveolar macrophages in both patients with UIP and healthy people. Conclusion : The JNK was activated constitutionally in patients with UIP. However, the role of JNK in the pathogenesis of lung fibrosis needs to be clarified.
The aim of this study was to evaluate spontaneous and LPS stimulated proinflammatory cytokines and chemokine release of alveolar macrophages in the patients with pulmonary tuberculosis and healthy individuals, as a control. Alveolar macrophages recovered from bronchoalveolar lavage fluids were cultured with or without LPS 0.1, 1, or 10 ${\mu}g/ml$ for 24 and 48 hours in 37C, 5% CO2. TNF-$\alpha$, IL-1$\beta$, IL-6 and IL-8 amount were evaluated using ELISA kit from the supernatants. There were a significant increase in the spontaneous 24 hours release of TNF-$\alpha$ and IL-6 from the involved segments of tuberculosis patients compared with uninvolved segments and normal control There were also increasing trends of release of them after LPS stimulation in involved segments, but not significant. IL-1$\beta$ and IL-8 were not evaluated from the involved segments of tubeculosis and there were not significant differences of them between uninvolved segments of tuberculosis and normal control. It is concluded that cytokine release of alveolar macrophages in the pulmonary tuberculosis was markedly increased, and it was localized to the alveolar macrophages from the involved segments.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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