Li, Hai Ying;Lee, Byung-Ky;Kim, Joong-Soo;Jung, Sung-Jun;Oh, Seog-Bae
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제12권6호
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pp.315-321
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2008
Eugenol is widely used in dentistry to relieve pain. We have recently demonstrated voltage-gated $Na^+$ and $Ca^{2+}$ channels as molecular targets for its analgesic effects, and hypothesized that eugenol acts on $P2X_3$, another pain receptor expressed in trigeminal ganglion (TG), and tested the effects of eugenol by whole-cell patch clamp and $Ca^{2+}$ imaging techniques. In the present study, we investigated whether eugenol would modulate 5'-triphosphate (ATP)-induced currents in rat TG neurons and $P2X_3$-expressing human embryonic kidney (HEK) 293 cells. ATP-induced currents in TG neurons exhibited electrophysiological properties similar to those in HEK293 cells, and both ATP- and $\alpha$, $\beta$-meATP-induced currents in TG neurons were effectively blocked by TNP-ATP, suggesting that $P2X_3$ mediates the majority of ATP-induced currents in TG neurons. Eugenol inhibited ATP-induced currents in both capsaicin-sensitive and capsaicin-insensitive TG neurons with similar extent, and most ATP-responsive neurons were IB4-positive. Eugenol inhibited not only $Ca^{2+}$ transients evoked by $\alpha$, $\beta$-meATP, the selective $P2X_3$ agonist, in capsaicin-insensitive TG neurons, but also ATP-induced currents in $P2X_3$-expressing HEK293 cells without co-expression of transient receptor potential vanilloid 1 (TRPV1). We suggest, therefore, that eugenol inhibits $P2X_3$ currents in a TRPV1-independent manner, which contributes to its analgesic effect.
Park, Jin-Bong;Kim, Young-Rae;Jeon, Byeong-Hwa;Park, Seung-Kiel;Oh, Sae-Ock;Kim, Young-Geun;Lee, Sang-Do;Kim, Kwang-Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제7권4호
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pp.223-229
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2003
Using phospholipase D1 (PLD1)-overexpressing PC12 (PLD1-PC12) cells, the regulatory roles of PLD1 on ATP-induced currents were investigated. In control and PLD1-PC12 cells, ATP increased PLD activity in an external $Ca^{2+}$ dependent manner. PLD activity stimulated by ATP was substantially larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. In whole-cell voltage-clamp mode, ATP induced transient inward and outward currents. The outward currents inhibited by TEA or charybdotoxin were significantly larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. The inward currents known as $Ca^{2+}$ permeable nonselective cation currents were also larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. However, the difference between the two groups of cells disappeared in $Ca^{2+}$-free external solution, where ATP did not activate PLD. Finally, ATP-induced $^{45}Ca$ uptakes were also larger in PLD1-PC12 cells than in control cells. These results suggest that PLD enhances ATP-induced $Ca^{2+}$ influx via $Ca^{2+}$ permeable nonselective cation channels and increases subsequent $Ca^{2+}$-activated $K^+$ currents in PC12 cells.
To find the mechanism underlying the ADP-induced increase in the outward current in ovulated mouse oocytes, we examined changes in voltage-dependent currents using the whole cell voltage clamp technique and the internal perfusion technique. Eggs were collected from the oviduct of superovulated mice with PMSG and hCG. Membrane potential was held at -60 mV (or -80 mV in the case of recording $Ca^{2+}$ currents) and step depolarizations or hyperpolarizations were applied for 300 ms. By step depolarizations, outward currents comprising steady-state and time-dependent components were elicited. They were generated in response to the positive potential more than 20 mV with severe outward rectification and were blocked by external TEA, a specific $K^{+}$ channel blocker, suggesting that they be carried via $K^{+}$ channels. Internally-perused 5 mM ADP gradually increased outward $K^{+}$ currents (IK) 1 min after perfusion of ADP and reached slowly to maximum (150~170%) 5 min later over the positive potential range, implying that ADP might not be acted directly to the $K^{+}$ channels. IK were decreased by 5 mM ATP without affecting the steady-state component of outward current. In contrast to the effect of ADP and ATP on IK, both effect of ATP and ADP on inward $Ca^{2+}$ currents (ICa) could not be detected due to the continuous decrease in current amplitudes with time-lapse ("run-down" phenomena). To check if there is a G protein-involved regulation in the ionic current of mouse oocytes, 1 mM GTP was applied to the cytoplasmic side, and the outward current and inward currents were recorded. ICa was promptly increased in the presence of GTP whereas IK was not changed. from these results, it is concluded that the ATP-dependent regulation is likely linked in the ADP-induced increase in the outward $K^{+}$ current, and G protein-involved cellular signalling might affect ion channels carrying $Ca^{2+}$ and $K^{+}$ in mouse oocytes.
Adenosine 5'-triphosphate (ATP) is an important extracellular signaling molecule which is involved in a variety of physiological responses in many different tissues and cell types, by acting at P2 receptors, either ionotropic (P2X) or G protein-coupled metabotropic receptors (P2Y). P2X receptors have seven isoforms designated as $P2X_{1^-}P2X_7$. In this study, we investigated the electrophysiological and pharmacological properties of rat $P2X_{1^-}P2X_4$ currents by using whole-cell patch clamp technique in a heterologous expression system. When ATP-induced currents were analyzed in human embryonic kidney (HEK293) cells following transient transfection of rat $P2X_{1^-}P2X_4$, the currents showed different pharmacological and electrophysiological properties. ATP evoked inward currents with fast activation and fast desensitization in $P2X_{^1-}$ or $P2X_{3^-}$ expressing HEK293 cells, but in $P2X_{2^-}$ or $P2X_{4^-}$ expressing HEK293 cells, ATP evoked inward currents with slow activation and slow desensitization. While PPADS and suramin inhibited $P2X_2$ or $P2X_3$ receptor-mediated currents, they had little effects on $P2X_4$ receptor-mediated currents. Ivermectin potentiated and prolonged $P2X_4$ receptor-mediated currents, but did not affect $P2X_2$ or $P2X_3$ receptor-mediated currents. We suggest that distinct pharmacological and electrophysiological properties among P2X receptor subtypes would be a useful tool to determine expression patterns of P2X receptors in the nervous system including trigeminal sensory neurons and microglia.
Choi, Seok;Parajuli, Shankar Prasad;Yeum, Cheol Ho;Park, Chan Guk;Kim, Man Yoo;Kim, Young Dae;Cha, Kyoung Hun;Park, Young Bong;Park, Jong Seong;Jeong, Han Seong;Jun, Jae Yeoul
Molecules and Cells
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제26권2호
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pp.181-185
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2008
The effects of calcitonin gene-related peptide (CGRP) on pacemaker currents in cultured interstitial cells of Cajal (ICC) from the mouse small intestine were investigated using the whole-cell patch clamp technique at $30^{\circ}C$. Under voltage clamping at a holding potential of -70 mV, CGRP decreased the amplitude and frequency of pacemaker currents and activated outward resting currents. These effects were blocked by intracellular $GDP{\beta}S$, a G-protein inhibitor and glibenclamide, a specific ATP-sensitive $K^+$ channels blocker. During current clamping, CGRP hyperpolarized the membrane and this effect was antagonized by glibenclamide. Pretreatment with SQ-22536 (an adenylate cyclase inhibitor) or naproxen (a cyclooxygenase inhibitor) did not block the CGRP-induced effects, whereas pretreatment with ODQ (a guanylate cyclase inhibitor) or L-NAME (an inhibitor of nitric oxide synthase) did. In conclusion, CGRP inhibits pacemaker currents in ICC by generating nitric oxide via G-protein activation and so activating ATP-sensitive $K^+$ channels. Nitric oxide- and guanylate cyclase-dependent pathways are involved in these effects.
Phenolic compounds affect intracellular free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) signaling. The study examined whether the simple phenolic compound octyl gallate affects ATP-induced $Ca^{2+}$ signaling in PC12 cells using fura-2-based digital $Ca^{2+}$ imaging and whole-cell patch clamping. Treatment with ATP ($100\;{\mu}M$) for 90 s induced increases in $[Ca^{2+}]_i$ in PC12 cells. Pretreatment with octyl gallate (100 nM to $20\;{\mu}M$) for 10 min inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ response in a concentration-dependent manner ($IC_{50}=2.84\;{\mu}M$). Treatment with octyl gallate ($3\;{\mu}M$) for 10 min significantly inhibited the ATP-induced response following the removal of extracellular $Ca^{2+}$ with nominally $Ca^{2+}$-free HEPES HBSS or depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores with thapsigargin ($1\;{\mu}M$). Treatment for 10 min with the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine ($1\;{\mu}M$) significantly inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase, and treatment with octyl gallate further inhibited the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate significantly inhibited the $[Ca^{2+}]_i$ increase induced by 50 mM KCI. Pretreatment with protein kinase C inhibitors staurosporin (100 nM) and GF109203X (300 nM), or the tyrosine kinase inhibitor genistein ($50\;{\mu}M$) did not significantly affect the inhibitory effects of octyl gallate on the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate markedly inhibited the ATP-induced currents. Therefore, we conclude that octyl gallate inhibits ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in PC12 cells by inhibiting both non-selective P2X receptor-mediated influx of $Ca^{2+}$ from extracellular space and P2Y receptor-induced release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores in protein kinase-independent manner. In addition, octyl gallate inhibits the ATP-induced $Ca^{2+}$ responses by inhibiting the secondary activation of voltage-gated $Ca^{2+}$ channels.
Kim, Na-Ri;Youm, Jae-Boum;Joo, Hyun;Kim, Hyung-Kyu;Kim, Eui-Yong;Han, Jin
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제9권4호
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pp.187-193
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2005
Several signal transduction pathways have been implicated in ischemic preconditioning induced by the activation of ATP-sensitive $K^+$$(K_{ATP})$ channels. We examined whether protein kinase C (PKC) modulated the activity of $K_{ATP}$ channels by recording $K_{ATP}$ channel currents in rabbit ventricular myocytes using patch-clamp technique and found that phorbol 12,13-didecanoate (PDD) enhanced pinacidil-induced $K_{ATP}$ channel activity in the cell-attached configuration; and this effect was prevented by bisindolylmaleimide (BIM). $K_{ATP}$ channel activity was not increased by $4{\alpha}-PDD$. In excised insideout patches, PKC stimulated $K_{ATP}$ channels in the presence of 1 mM ATP, and this effect was abolished in the presence of BIM. Heat-inactivated PKC had no effect on channel activity. PKC-induced activation of $K_{ATP}$ channels was reversed by PP2A, and this effect was not detected in the presence of okadaic acid. These results suggest that PKC activates $K_{ATP}$ channels in rabbit ventricular myocytes.
Background: Recent in vivo experimental evidence suggests that isoflurane-induced cardioprotection may involve $K_{ATP}$ channel activation. However, it was demonstrated that isoflurane inhibited $K_{ATP}$ channel activities in the inside-out patch mode. To explain this discrepancy, the present investigation tested the hypothesis that a metabolite of isoflurane, trifluoroacetic acid (TFA), contributes to isoflurnae-induced cardioprotection via $K_{ATP}$ channel activation during myocardial ischemia and reperfusion. Methods: Single ventricular myocytes were isolated from rabbit hearts by an enzymatic dissociation procedure. Patch-clamp techniques were used to record single-channel currents. $K_{ATP}$ channel activities were assessed before and after the application of TFA with the inside-out patch mode. Results: TFA enhanced channel activity in a concentration-dependent fashion. The concentration of TFA for half-maximal activation and the Hill coefficient were 0.03 mM and 1.2, respectively. TFA did not affect the single channel conductance of $K_{ATP}$ channels. Analysis of open and closed time distributions showed that TFA increased burst duration and decreased the interburst interval without changes in open and closed time distributions shorter than 5 ms. TFA diminished ATP sensitivity of $K_{ATP}$ channels in a concentration-response relationship for ATP. Conclusions: TFA, a metabolite of isoflurane, enhanced $K_{ATP}$ channel activity in a concentration-dependent fashion. These results imply that TFA could mediate isoflurane-induced cardioprotection via $K_{ATP}$ channel activation during myocardial ischemia and reperfusion.
Lee, Song-Yi;Jo, Sooyeon;Lee, Ga Eun;Jeong, Lak Shin;Kim, Yong-Chul;Park, Chul-Seung
Molecules and Cells
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제22권2호
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pp.198-202
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2006
The $P2X_7$ receptor, an ATP-gated cation channel, induces cell death in immune cells and is involved in neurodegenerative diseases. Although the receptor plays various roles in these diseases, the cellular mechanisms involved are poorly understood and antagonists are limited. Here, the development of a cell-based assay for human $P2X_7$ receptor is reported. We established permanent lines of HEK 293 cells expressing a high level of $hP2X_7$ receptor. Functional activity of the $hP2X_7$ receptor was confirmed by whole-cell patch recording of ATP-induced ion currents. Prolonged exposure to ATP resulted in death of the $hP2X_7$-expressing HEK 293 cells and this cell death could be quantified. Two known $P2X_7$ antagonists, PPADS and KN-62, blocked ATP-induced death in a concentration-dependent manner. Thus, this assay can be used to screen for new antagonists of $hP2X_7$ receptors.
Kim, Sung-Joon;Jun, Jae-Yeoul;Choi, Youn-Baik;Kim, Ki-Whan;Kim, Woo-Gyeum
The Korean Journal of Physiology
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제28권1호
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pp.37-50
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1994
Synthetic potassium channel openers (KCOs) are agents capable of opening K-channels in excitable cells. These agents are known to have their maximal potency in the smooth muscle tissue, especially in the vascular smooth muscle. Much attention has been focused on the type of K-channel that is responsible for mediating the effects of KCOs. As the KCO-induced changes are antagonized by glibenclamide, an $K_{ATP}$ (ATP-sensitive K-channel) blocker in the pancreatic ${\beta}-cell,\;K_{ATP}$ was suggested to be the channel responsible. However, there also are many results in favor of other types of K-channel $$(maxi-K,\;small\;conductance\;K_{Ca,}\; SK_{ATP}) mediating the effects of KCOs. Effects of lemakalim, (-)enantiomer of cromakalim (BRL 34915), on the spontaneous contractions and slow waves, were investigated in the antral circular muscle of the guinea-pig stomach. Membrane currents and the effects on membrane currents and single channel activities were also measured in single smooth muscle cells and excised membrane patches by using the patch clamp method. Lemakalim induced hyperpolarization and inhibited spontaneous contractions in a dose-dependent manner. These effects were blocked by glibenclamide and low concentrations of tetraethyl ammonium (< mM). Glibenclamide blocked the effect of lemakalim on the membrane potential and slow waves. The mechanoinhibitory effect of lemakalim was blocked by pretreatment with glibenclamide. In a whole ceIl patch clamp condition, lemakalim largely increased outward K currents. These outward K currents were blocked by TEA, glibenclamide and a high concentration of intracelIular EGTA (10 mM). Volatage-gated Ca currents were not affected by lemakalim. In inside-out patch clamp experiments, lemakalim increased the opening frequency of the large conductance $Ca^{2+}-activated$ K channels $(BK_{Ca},\;Maxi-K).$ From these results, it is suggested that lemakalim induces hyperpolarization by opening K-channels which are sensitive to internal Ca and such a hyperpolarization leads to the inhibition of the spontaneous contraction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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