The purpose of this study was to develop Peptoniphilus mikwangii-specific quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) primers based on the 16S ribosomal RNA (16S rDNA) gene. The specificity of the primers was determined by conventional PCR using 29 strains of 27 oral bacterial species including P. mikwangii. The sensitivity of the primers was determined by qPCR using the purified genomic DNA of P. mikwangii KCOM $1628^T$ (40 ng to 4 fg). The data showed that the qPCR primers (RTB134-F4/RTB134-R4) could detect P. mikwangii strains exclusively and as little as 40 fg of the genomic DNA of P. mikwangii KCOM $1628^T$. These results suggest that the developed qPCR primer pair can be useful for detecting P. mikwangii in epidemiological studies of oral bacterial infectious diseases.
The polymerase chain reaction (PCR) amplification technique was used for comparison of Listeria monocytogenes serotypes. PCR primers for the fragment of invasion-associated protein (iap) gene were highly specific for all the serotypes of L. monocytogenes. Other Listeria spp., such as Listeria ivanovii and Listeria innocua were not produced the PCR fragments by above primer set. The nucleotide sequences of PCR products showed high homologies in comparison of all the isolated serotypes except unknown type II-2. The deduced amino acid sequences of the PCR products also showed similar to one another. The various region of the PCR products, called a Thr-Asn repeat region was presented. All of isolated L. monocytogenes serotypes possessed 16 to 20 Thr-Asn repeats.
Journal of Practical Agriculture & Fisheries Research
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v.5
no.1
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pp.57-63
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2003
The bovine rotavirus(BRV), bovine coronavirus(BCV) and bovine viral diarrhea virus(BVDV) are main viruses of bovine viral diarrhea disease. These viruses could be rapidly amplified by the reverse transcriptase polymerase chain reaction(RT-PCR). This study was conducted to develop rapid and accurate diagnostic methods of these viral diseases by multiplex RT-PCR. Specific primers were designed based on the sequences reported by Chang KO et. al. (1997) and Schroeder BA, et. al. (1990), RNA were prepared from the cultured viruses, first-stranded DNAs were synthesised by reverse transcriptase. PCR were conducted to amplify specific regions of the viruses by multiplex. Three bands such as 1,062bp for BRV, 458bp for BCV, and 300bp for BVDV were successfully produced by multiplex RT-PCR. In conclusion, this result suggested that these viruses could be diagnosed rapidly and accurately by multiplex RT-PCR.
The use of droplet digital polymerase chain reaction (ddPCR) has greatly improved the quantification of harmful protists, outperforming traditional methods like quantitative PCR. Notably, ddPCR provides enhanced consistency and reproducibility at it resists PCR inhibitors commonly found in environmental DNA samples. This study aimed to determine the most effective filter material for ddPCR protocols by assessing the reproducibility of species-specific gene copy numbers and filtration time across six filter types: cellulose acetate (CA), mixed cellulose ester (MCE), nylon (NY), polycarbonate (PC), polyethersulfone (PES), and polyvinylidene fluoride (PVDF). The study used two species of Chattonella marina complexes as a case study. Filtration rates were slower for NY, PC, and PVDF filters. Moreover, MCE, NY, PES, and PVDF yielded lower DNA amounts than other filters. Importantly, the CA filter exhibited the lowest variance (38-39%) and the highest determination coefficients (R2 = 0.92-0.96), indicating superior performance. These findings suggest that the CA filter is the most suitable for ddPCR quantification of marine protists, offering quick filtration and reliable reproducibility.
A duplex PCR method was developed to detect a transformation vector pSPB130 used in the development of a genetically modified (GM) rose plant. To detect a GM rose plant, the anthocyanin synthase ($ANS$) was used as an endogenous reference gene of rose in PCR detection. The primer pair RHANS-KF/KR producing 107 bp amplicon was used to amplify the $ANS$ gene and no amplified product was observed in any of the 9 different plants used as a template. The primer pair GMRH-KF/KR was designed to amplify the junction sequence between 35S promoter and flavonoid 3',5'-hydroxylase ($F3^{\prime}5^{\prime}H$) gene in pSPB130. The detection limit of the duplex PCR method is approximately 0.5%. This result indicates that this duplex PCR method could be useful for monitoring unauthorized GM rose in Korea.
In this study, the competitive polymerase chain reaction (cPCR) was used to develop a direct enumeration method of Salmonella spp. in pork meat. After comparing three DNA extraction methods, the modified guanidine thiocyanate-phenol-chloroform method was chosen for Salmonella DNA extraction in artificially inoculated pork meat. The previously reported 284-bp invA gene (Rahn et al. Mol. Cell. Probes 1992) was tested for specificity, and 57 Salmonella strains and 24 non-Salmonella strains were evaluated. All Salmonella strains tested were invA positive, and all non-Salmonella strains produced no false positive amplification products. The detection limit achieved was as low as 1,460 colony-forming units (cfu) per 0.1g of pork meat. For cPCR, the invA gene, which features a 82 bp-deletion, was cloned in the pGEM-4Z vector. A known amount of competitor DNA, which has the same primer binding sites, was co-amplified with Salmonella chromosomal DNA from the artificially inoculated pork meat. The cell-number determined by cPCR was approximately equal to the cfu from the most probable number (MPN) method. Finally, the whole procedure took only 5 hr.
The optimized RAPD-PCR conditions, that can be utilized as a basic information for analysis of the gelletic characteristics were developed for genetic analysis of four mulberry varieties, named Milsung, Chungil, Suil, and Hansung using a primer, OPY15 (5'-AGTCGCCCTT-3') from Operon company. We tested several different factors for best PCR condition including concentrations of DNA, primer, Mgclu annealing temperature, number of PCR cycle, and prosence/absence of pre-heating time at the begining of PCR reaction in the $25 \mul$volume. The best RAPD profiles were obtained using 50 ng of DNA, 1 $\mu$M of primer, $1 \mum$of $MgCl_2\;,45^{\circ}C$ of annealing temperature and an absence of pre-heating time. An establishment of the stable and reproducible RAPD-PCR conditions are expected to be useful for the subsequent RAPD-related investigation, such as genetic characterization of the mulberry varieties, re-establishment of phylogenetic relationships and development of new varieties.
Due to the increase in incidence of infection of Mycobacterium tuberculosis complex (MTC), it is imperative that a rapid diagnosis accompanies the handling of MTC. This is due to the three to eight weeks it takes to culture Mycobacteria, and the lack of sensitivity of microscopic examination of AFB. Recently, nested PCR has been used to detect and diagnose mycobacteria. It is especially useful in complementing diagnosis by histological extra pulmonary. After culturing all the specimens and practicing the nested PCR, we did comparison analysis between nested PCR and culture. There were 76 specimens, 31 of which were positive. Of the 31 positive specimens in culturing, only 22 were positive in nested PCR. Of the 45 negative specimens, 36 were negative in nested PCR. As a result, Sensitivity was 71% and specificity was 80%. Furthermore, the positive predictive value was 71% and negative predictive value was 80%. These results indicate that nested PCR based techniques are sensitive, specific, and rapid methods for the detection of MTC.
The objective of this study was to clone a partial fragment of $\alpha$-amylase from Korean maize. We designed and synthesized an oligonucleotide probe and two kinds of PCR primers based on cDNA conserved region of $\alpha$-amylase sequences from other plants. Total RNA from 3-day-old maize seedling was used as template for 1st strand cDNA synthesis and RNA-DNA hybrid was used as template for polymerase chain reaction(PCR). The product of PCR was about 0.5 kb long and inserted into pUC19. We named this recombinant plasmid as pZM$\alpha$'. The cloned fragment was certified by Southern blot analysis using labeled synthetic oligonucleotide as probe.
Although Mycobacterium tuberculosis complex strains remain responsible for the majority of diseases caused by mycobacterial infections worldwide, the increase in HIV infections has allowed for the emergence of other non-tuberculous mycobacteria as clinically significant pathogens. However, Mycobacterium species has a long period of incubation, and requires serious biochemical tests such as niacin, catalase, and nitrate test that are often tedious. The development of rapid and accurate diagnostics can aid in the early diagnosis of disease caused by Mycobacterium. The current DNA amplification and hybridization methods that have been developed target several genes for the detection of mycobacterial species such as hps65, 16S rDNA, rpoB, and dnaj. These methods produce rapid and accurate results. In this study, PCR-restriction fragment length polymorphism analysis(PCR-RFLP) based on the region of the rpoB gene was used to verify the identification of non-tuburculosis Mycobacterium species. A total of 8 mycobacterial reference strains and 13 clinical isolates were digested with restriction enzymes such as Msp I in this study. The results of using this process clearly demonstrated that all 13 specimens were identified by rpoB gene PRA method. The PCR-RFLP method based on the rpoB gene is a simple, rapid, and accurate test for the identification of Mycobacterium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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