This study is conducted to develop an efficient transformation system via particle bombardment with PLBs (Protocorm-like bodies) in Cymbidium. For this, pCAMBIA3301 vector which carries a herbicide-resistant bar gene and gus gene as a reporter gene was used for transformation with Cymbidium cultivars 'Youngflower ${\times}$ masako' line. To select transformants, proper concentration of herbicide, PPT (phosphinotricin), should be determined. As a result, 5 mg/l of PPT was selected as a proper concentration. Further, proper conditions for particle bombardment were determined to obtain a high frequency of transformation. Results showed that 1.0 ${\mu}g$ of DNA concentration, 1,100 and 1,350 psi for helium gas pressure, 1.0 ${\mu}m$ of gold particle and 6 cm of target distance showed the best result for the particle bombardment experiment. Also, pre-treatment with combination 0.2 M sorbitol and 0.2 M mannitol for 4 hrs prior to genetic transformation increased the transformation efficiency up to 2.5 times. Using transformation system developed in this study, 3.2 ~ 4.0 transgenic cymbidium plants can be produced from 100 bombarded PLBs on average. Putative transgenic plants produced in this system confirmed the presence of the bar gene by PCR analysis. Also, leaves from randomely selected five transgenic lines were applied for Basta solution (0.5% v/v) to check the resistance to the PPT herbicide. As a result, three of them showed resistance and one of them showed the strongest resistance with the maintenance of green color as non-transformed plants showed. Using this established transformation system, more genes of interests can be introduced into Cymbidium plants by genetic transformation in the future.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.29
no.3
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pp.165-170
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2009
A system for the production of transgenic plants has been developed for perennial ryegrass (Lolium perenne L.) via Agrobacterium-mediated transformation. Included in this study were two factors which may affect the gene transfer efficiency: concentrations of acetosyringone (AS, 0 to 300 ${\mu}M$), and co-culture period (1 to 7 days). Both factors were very important to achieve high efficiency gene transformation in the perennial ryegrass. The highest transformation efficiency was obtained when embryogenic calli were inoculated with Agrobacterium in the presence of 100 ${\mu}M$ AS with the culture medium for 5 days. Phosphinothricin resistant calli were developed with into complete plants. GUS histochemical assay, polymerase chain reaction (PCR) and Northern blot analysis of transgenic plants demonstrated that transgenes were integrated into the genome of perennial ryegrass. Using this protocol, it was possible to obtain transformants efficiently for further study.
The CRISPR/Cas9 is a core technology that can result in a paradigm for breeding new varieties. This study describes in detail the sgRNA design, vector construction, and the development of a transgenic plant and its molecular analysis, and demonstrates how gene editing technology through the CRISPR/Cas9 system can be applied easily and accurately. CRISPR/Cas9 facilitates targeted gene editing through RNA-guided DNA cleavage, followed by cellular DNA repair mechanisms that introduce sequence changes at the site of cleavage. It also allows the generation of heritable-targeted gene mutations and corrections. Here, we present detailed procedures involved in the CRISPR/Cas9 system to acquire faster, easier and more cost-efficient gene edited transgenic rice. The protocol described here establishes the strategies and steps for the selection of targets, design of sgRNA, vector construction, and analysis of the transgenic lines. The same principles can be used to customize the versatile CRISPR/Cas9 system, for application to other plant species.
PARK, Young Doo;RONIS D.H.;DUYSEN M.E.;CHENG Z.M.;LORENZEN J.H.
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.24
no.5
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pp.313-317
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1997
Leaf segments of the potato (Solanum tuberosum L.) genotypes, ND860-2, Norchip, Russet Norkotah, Goldrush, and Norqueen Russet were transformed with the coat protein gene of potato virus Y (PVY). The white-skinned genotypes, ND860-2 and Norchip, were easily transformed and regenerated into shoots, whereas the three russet-skinned genotypes had low frequencies of regeneration. Transformed shoots were generally recovered in four to six weeks. Antibody to PVY coat protein detected a single band of 30 kD in western blots of transgenic plants. Transformed plants had a normal phenotype in the greenhouse and many showed a delayed buildup of PVY following inoculation. Several transgenic lines had negative ELISA readings 85 days after inoculation. Transgenic lines which did not show detectable levels of PVY antigen will be further tested for resistance to PVY.
Hairy roots of carrot were induced by Agrobacterium rhizogenes $A_4$ strain within about 2-4 weeks after inoculated from root disc. Early axonic culture is established in RCM agar medium and following is in MS rigid medium. After 15 days culture, the hairy roots were vigrous growth in about 10 times of initial inoculum. Anthocyanin contents of hairy roots were more than of ordinary roots. 2, 4-D ($10^{-4}mg/ l$), sucrose (5%), nitrogen source (0.03M) contained medium was optimized to growth of hairy root and contents of anthocyanin. Phenotypic alterations of leaves are observed in transformed plants and determined the transformation of hairy roots and the transformed plants by opine assay.
The Agrobacterium-mediated transformation has been successfully used method to introduce foreign genes into some monocotyledonous as well as a large number of dicotyledonous plants genome, We developed transgenic Chinese cabbage plants with insect-resistance gene, modified CryIAc, by Agrobacterium-transformation and confirmed transgene copy number by Southern blot analysis. We confirmed that twenty-nine out of 46 transgenic Chinese cabbage plants have single copy of CryIAc. To obtain the sequences information on the transferred DNA (T-DNA) integration into plant genome, we analyzed left border (LB) flanking sequences by genome walking (GW) PCR method. Out of 46 transgenic Chinese cabbage plants examined, 37 carried the vector backbone sequences. This result indicates that the transfer of the vector backbone from the binary vectors resulted mainly from inefficient termination of LB site. Analysis of T-DNA LB flanking region of 9 transgenic Chinese cabbage plants without vector backbone revealed that all LB ends were not conserved and nucleotides up to 36bp from the LB cleavage site were deleted.
Cotton Glutathione S-Transferase (GST: EC 2.5.1.18) was cloned and overexpressed in tobacco (Nicotiana tabacum) plants. Northern blot analysis confirmed the successful transformation of cotton gst gene in tobacco plant. Type I and Type ll transcript patterns were identified in transgenic tobacco plants and only Type I transcripts were discussed in this paper, The activity of GST in the type II transgenic plants was about 1.5-fold higher than those of the wild type and non-expresser by using 1-chloro-2,4-dinitrobenzene (CDNB) and reduced glutathione as the substrate. The expression of cotton GST in tobacco plants proved that Gh-5 could be translated into functional protein. Type II transgenic plants produced functional GST in the cells. The effects of cotton GST in the seedlings was evaluated by growing the control and transgenic seedlings at $15^{\circ}C$ in the growth chamber in the light. Overexpressors were grown well compared to the control plants (non-expressors). lo test far tolerance to salinity, seeds of Gh-5 overexpressors and the wild type Xanthi seedlings were grown at 0, 50, 100, 150, and 200 mM NaCl solution. Gh-5 transgenic seedlings showed higher growth rate over control seedlings on 50 and 100 mM NaCl solution. There was no difference in growth rate at 150 and 200mM NaCl concentration.
Park, Sung-Chul;Kim, Myoung Duck;Kim, Sun Ha;Kim, Yun-Hee;Jeong, Jae Cheol;Lee, Haeng-Soon;Kwak, Sang-Soo
Journal of Plant Biotechnology
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v.42
no.1
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pp.19-24
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2015
Glycine betaine (GB) is one of the compatible solutes that accumulate in the chloroplasts of certain halotolerant plants under salt or cold stress. The codA gene for choline oxidase, the enzyme that converts choline into GB, has been cloned from a soil bacterium Arthrobacter globiformis. We generated transgenic sweetpotato plants [Ipomoea batatas (L.) Lam] expressing codA gene in chloroplasts under the control of the SWPA2 promoter (referred to as SC plants) and evaluated SC plants under oxidative and drought stresses. SC plants showed enhanced tolerance to methyl viologen (MV)-mediated oxidative stress and drought stress due to induced expression of codA. At $5{\mu}M$ of MV treatment, all SC plants showed enhanced tolerance to MV-mediated oxidative stress through maintaining low ion leakage and increased GB levels compared to wild type plants. When plants were subjected to drought conditions, SC plants showed enhanced tolerance to drought stress through maintaining high relative water contents and increased codA expression compared to wild type plants. These results suggest that the SC plants generated in this study will be useful for enhanced biomass production on global marginal lands.
Agrobacterium tumefaciens-mediated cotyledonary node transformation was used to produce transgenic soybean. Cotyledonary node explants of three cultivars and one genotype were co-cultivated with strains Agrobacterium (LBA4404, GV3101, EHA101, C58) containing the binary vectors (pCAMBIA3301 and pPTN289) carrying with CaMV 35S promoter-GUS gene as reporter gene and NOS promoter-bar gene conferring resistance to glufosinate (herbicide Basta) as selectable marker. There was a significant difference in the transformation frequency depend on bacteria strain. The EHA101 strain of the bacterial strains employed gave the maximum efficiency (3.6%). One hundred-six lines transformed showed the resistance in glufosinate. Histochemical GUS assay showed that at least 11 plants transformed with the GUS gene were positive response. The soybean transformants were obtained from the Thorne (5 plants), 1049 (5 plants) and Bakun (1 plant), respectively. Southern blot analysis and leaf painting assay revealed that the GUS and bar gene segregated and expressed in their progeny.
This study was conducted to produce herbicide resistant plants by transferring phosphinothricin acetyltransferase (PAT) gene into Populus alba $\times$ Populus glandulosa No .3 using Agrobacterium tumefaciens MP 90/PAT. Leaf segments from in vitro grown shoots of hybrid poplar No. 3 were soaked in a AB medium containing Agrobacterium tumefaciens MP 90/PAT for 10 min and cocultivated for 2 days on MS medium containing 1.0 mg/L 2,4-D and 0.2mg/L kinetin (CIM). Putative transformed calli could be selected after cocultivation of leaf segments on CIM supplemented with 50mg/L kanamycin and 500mg/L cefotaxime for 3 weeks. The selected calli were cultured on CIM supplemented with 50 mg/L kanamycin and 500 mg/L cefotaxime for 5~8 weeks before transfer to WPM containing 1.0mg/L zeatin, 0.1mg/L BAP, 50 mg/L kanamycin and 500mg/L cefotaxime for shoot regeneration. Shoots were regenerated from the callus after 4 week cultivation, and the regenerants were grown on the same medium for 7~l0 weeks. The plants rooted on 1/2 WPM containing 0.2 mg/L IBA and 50 mg/L kanamycin. To confirm the gene insertion into plants, GUS activity was detected by histochemical assay in the transformed plants. Finally, the presence of both NPT II and PAT genes from the transgenic plants were confirmed by PCR amplification with the gene specific primers and subsequent PCR-Southern blot with DIG-labeled PAT gene probe. After acclimatization in pots for 4 weeks, the plants were sprayed by 3 mL/L of Basta to test resistance to the herbicide. The transgenic plants remained green, whereas all the control plants died after one week.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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