Anaplasma phagocytophilum major surface protein-2 (Msp2 or p44) is the immunodominant outer membrane protein of the bacterium. Recently, we disclosed that Msp2 was an A. phagocytophilum adhesin for binding to host neutrophils and HL-60 cells, probably mediated by attachment to platelet selectin glycoprotein ligand-1 (PSGL-1). In this study, we further elucidated that Msp2 bound to PSGL-1/FucT IV-transfected BJAB but not nontransfected BJAB cells. Binding of recombinant Msp2 or cell (lee bacteria to the surface of PSGL-1/FucT IV-transfected BJAB cells was significantly higher than to nontransfected BJAB cells (p<0.01 and p<0.01). Also, Msp2 monoclonal antibody and soluble recombinant Msp2 as antagonist led to concentration-dependent reductions in A. phagocytophilum adhesln (p<0.05 and p<0.01) to transfected BJAB cells. Thus, we conclude that Msp2 of. A. phagocytophilum acts as an adhesin by which the bacterium binds to PSGL-1 on host neutrophils and myeloid cells.
The exquisite structure and attractive biological properties of biominerals have great potential and increased interest for use in a wide range of medical and industrial applications. Calcium carbonate biomineralization, mainly controlled by shell matrix proteins, has been used as a representative model to understand the biomineralization mechanism. In this study, in vitro calcium carbonate crystallization was carried out under room temperature and atmospheric pressure using recombinant shell matrix protein GRP_BA and artificial shell matrix protein GG1234. Both proteins inhibited the growth of typical rhombohedral calcite crystals in the calcium carbonate crystallization using $CaCl_2$ solution and $(NH_4)_2CO_3$ vapor, and spherulitic calcite crystals with rosette-like structures were synthesized in both the presence of GRP_BA and GG1234. These results might be caused by the properties of block-like domain structure and intrinsically disordered proteins. We expect that this study can contribute to enhance understanding of the calcium carbonate biomineralization controlled by shell matrix proteins.
Pichia pastoris, a methylotrophic yeast widely used for the production of heterologous proteins, was used to produce Hepatitis B surface antigen (HBsAg) under the control of the strong, tightly-regulated alcohol oxidase promoter. It is highly induced during the growth on methanol, but the presence of non-methanol carbon sources such as glycerol and glucose repressed fully the expression of alcohol oxidase. In this study, glycerol and sorbitol feedings for the expression of the recombinant HBsAg were compared to examine the potential of sorbitol as a less repressive carbon source in fed-batch fermentation. The sorbitol feeding enhanced the production yield by 12% compared to that in glycerol feeding, although the cell concentration was lower.
Kim, Jong-Uk;Choi, Dong-Soon;Joo, Hyun;Min, Churl-K.
KSBB Journal
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v.23
no.3
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pp.231-238
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2008
The second family member of tissue inhibitors of matrix metalloproteinases, TIMP-2, is a 21kDa protein which inhibits matrix metalloproteinases 2 (MMP-2). Expression of mammalian proteins in E. coli often forms inclusion bodies that are made up of mis-folded or insoluble protein aggregates. The requirement for the formation of 6 disulfide bonds in the process of the TIMP-2 folding is likely to be incompatible with the reducing environment of E. coli. However, this incompatibility can be often overcome by introducing a mutagenesis that could lead to enhancement of the protein solubility. In this reason, we have attempted to express the soluble TIMP-2 in E. coli by applying a modified staggered extension process (StEP), one of the in vitro PCR-based recombinant mutagenesis methods, and error-prone PCR. C-terminally located CAT fusion protein with respect to mutated TIMP-2 proteins enables us to differentiate the soluble TIMP-2 from the insoluble in E. coli by virtue of chloramphenicol resistance. According to this scheme, E. coli harboring properly-folded CAT fused to TIMP-2 protein was selected, and some of the resulting colonies exhibited an enhanced, soluble expression of TIMP-2 compared to the wild type, implying (i) the StEP technique is successfully employed to enhance the proper folding thereby increasing the solubility of TIMP-2, and (ii) the CAT dependent screening may be a simple and effective method to differentiate the soluble protein expression in E. coli.
Park, Seung-Won;Kang, Seok-Woo;Goo, Tae-Won;Kim, Seong-Ryul;Paik, Soon-Young
Journal of Life Science
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v.22
no.4
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pp.456-465
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2012
Heterodimeric recombinant human bone morphogenetic proteins (rhBMPs) are powerful tools for bone tissue engineering. However, BMPs have several important limitations in their application to bone regeneration. BMPs have a short half-life and must be used in high concentrations, which may be cost-inefficient. To overcome these problems, we established a stable cell line that expressed the fusion protein comprised of recombinant human BMP2/7 heterodimer protein and PTD (rhBMP2/7-PTD). This stable cell line enabled high process yields by continuously expressing rhBMP2/7-PTD products at high levels throughout cultivation. This synthesized BMP7 was fused to a BMP2 protein with four glycine residues (to allow free bond rotation of the domains) and PTD. To demonstrate that the rhBMP2/7-PTD protein that was secreted from an rhBMP2/7-PTD-expressing stable cell line exhibited biological activity consistent with its role as an osteogenic differentiation induction growth factor, we evaluated BMP-induced ALP activity. Our results suggest that this cell line may be a powerful and efficient tool for applications such as bone tissue regeneration.
Song, Ji-Hye;Hwang, Dong Hyeon;Oh, Doo-Byoung;Rhee, Sang Ki;Kwon, Ohsuk
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.41
no.1
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pp.17-25
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2013
The thermotolerant methylotrophic yeast Hansenula polymorpha is an attractive model organism for various fundamental studies, such as the genetic control of enzymes involved in methanol metabolism, peroxisome biogenesis, nitrate assimilation, and resistance to heavy metals and oxidative stresses. In addition, H. polymorpha has been highlighted as a promising recombinant protein expression host, especially due to the availability of strong and tightly regulatable promoters. In this study, we investigated the possibility of employing human serum albumin (HSA) as the fusion tag for the secretory expression of heterologous proteins in H. polymorpha. A set of four expression cassettes, which contained the methanol oxidase (MOX) promoter, translational HSA fusion tag, and the terminator of MOX, were constructed. The expression cassettes were also designed to contain sequences for accessory elements including His8-tag, $2{\times}(Gly_4Ser_1)$ linkers, tobacco etch virus protease recognition sites (Tev), multi-cloning sites, and strep-tags. To determine the effects of the size of the HSA fusion tag on the secretory expression of the target protein, each cassette contained the HSA gene fragment truncated at a specific position based on its domain structure. By using the Green fluorescence protein gene as the reporter, the properties of each expression cassette were compared in various conditions. Our results suggest that the translational HSA fusion tag is an efficient tool for the secretory expression of recombinant proteins in H. polymorpha.
Recombinant baculoviruses having expanded host range were selected by coinfection of Autographa california NPV and Bombyx mori NPV into Sf-9 and BmN-4 insect cell lines. In order to determine the polyhedra morhplogy of RecS-A6, one of a recombinant baculovirus, polyhedra of RecS-A6 produced in insect cells were observed by phase contrast microscope and scanning electron microscope. The results revealed that the recombinant baculovirus had a various polyhedra morphology which was different from its parental viruses, suggesting that the various morhpology of recombinant baculovirus with an expanded host range was due to the genetic recombination of viral genome. To analyze the genomic recombinantion of the recombinant baculoviruses, genomic DNAs of two parent viruses and RecS-A6 were digested with restriction endonuclease and subjected to agarose gel electrophoresis. Southern blot analysis revealed that RecS-A6 has two polyhedrin gene of AcNPV and BmNPV in a viral genome. Polyhedral protein of recombinant baculovirus was analysed by SDS-PAGE. The result showed that molecular weight of polyhedral protein of RecS-A6 containing two polyhedrin gene of AcNPV and BmNPV was as the 31 kDa band of AcNPV and 30 kDa band of BmNPV.
Kim, Kee-Yeun;Kwon, Suk-Yoon;Song, Jae-Young;Lee, Haeng-Soon;Kwak, Sang-Soo
Journal of Plant Biotechnology
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v.31
no.2
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pp.175-178
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2004
Transgenic tobacco (Nicotiana tabacum L. cv Bright Yellow-2) cell lines expressing a human histone H1.5 (referred to as hH1.5), which suppress collagen-induced rheumatoid arthritis, were developed under the oxidative stress-inducible peroxidase (SWPA2) promoter. Tobacco BY-2 cells were transformed by Agrobacterium-mediated method. The kanamycin-resistant calli were selected on the modified MS medium containing 150mg/L kanamycin and 300mg/L claforan. Transgenic cell lines were confirmed by PCR and northern blot analysis. Recombinant hH1.5 (rhH1.5) protein (42 kDa) was also detected by Western blot analysis, showing a different molecular weight of human hH1.5 (32 kDa). These results suggested that a hH1.5 gene was properly introduced in tobacco cultured cells under the control of SWPA2 promoter. The further characterization of rhH1.5 protein remains to be studied.
We have now constructed a novel recombinant baculovirus producing fusion protein with Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) polyhedrin and Bacillus thuringiensis(Bt) cryIA(c) crystal protein. The fusion protein expressed by the recombinant baculovirus in insect cells was characterized. The N-terminal of cryIA(c) gene of Bt subsp. kurstaki HD-73 was introduced under the control of polyhedrin gene promoter of AcNPV, by fusion in the front of intact polyhedrin gene or by insertion into the HindIII site in polyhedrin gene. The recombinant baculoviruses were named as BtrusI or BtrusII, respectively. Although single transcript from the fusion protein gene was apparently observed. BtrusI was produced the two proteins, 92 kDa fusion protein and only polyhedrin. In addition, fusion protein produced by BtrusI did not form polyhedra. Interestingly, however, the cells infected with BtrusII did not show a 33 kDa polyhedrin band as a cells infected with BtrusI. Cells infected with BtrusII were only produced fusion protein, but the polyhedra formed by fusion protein was not observed. To determine the insecticidal toxicity of fusion protein, therefore, Sf9 cells infected with BtrusI were inoculated to Bombyx mori larvae. Sf9 cells infected with BtrusI that expressed the fusion protein caused larval mortality although the insecticidal toxicity was low. In conclusion, our results clearly demonstrated that the fusion protein with polyhedrin and Bt cryIA(c) crystal protein have a insecticida toxicity.
Using recombinant human growth hormone as a model protein, we carried out unfolding by adding a denaturant such as urea, guanidine HCl, or SDS followed by refolding by dilution and dialysis. The objectives were to monitor the structural changes during in vitro refolding process and, based on the results, to develop a quantitative method of refolding progress assessment. The changes in surface hydrophobicity were measured by fluorescence tagging of 1-anilinonaphthalene-8-sulfonate(1,8-ANS) to the hydrophobic portions, and those in the secondary structure were monitored by using far UV-CD(circular dichroism) spectroscopy. Also, we used RP-HPLC to separate and quantify the folded and unfolded proteins to correlate the result with the structure analysis. Our results indicate the surface hydrophobicity are well correlated with the formations of the secondary structure, primarily ${\alpha}$-helices, as well as the disulfide bridges. We expect this monitoring technique can be applied in industrial fields as a means to quantitatively assess the progress of in-vitro refolding of recombinant proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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