The current study was undertaken to determine the effect of various conjugated linoleic acid (CLA) isomers on differentiation of pig preadipocyte during culture. Preadipocyte(stroma-vascular cell) was isolated from the backfat of newborn pigs and cultured to differentiate into mature fat cell. Different doses of CLA isomers were treated to the culture media at different times. Cell differentiation was determined by measuring the glycerol3-phosphate dehydrogenase activity of the cultured preadipocytes. Twenty and fifty $\mu$M of trans110_cis 12 isomer of CLA inhibited differentiation of pig preadipocyte whereas cis9-cis II isomer stimulated the differentiation. Both cis9-transII and trans9-trans11 isomers showed no effect. Effect of CLA isomer was more evident at the early stage of culture(day 0-8), than the late stage(day 8-14). These results suggest that each CLA isomer has different effect on pig preadipocyte differentiation.
When porcine primordial germ cells (PGCs) isolated from the genital ridge and placed in culture to establish EG cells, a large proportion of PGCs are lost during the early period of culture. To characterize the in vitro death of porcine PGCs, PGCs were cultured in suspension, and apoptosis analyzed using a fluorescent activated cell sorter-based DNA fragmentation assay. The results from flow cytometric analysis showed an increase in apoptosis in cultured cells. However, the cells isolated from the genital ridges are a mixture of PGCs and somatic cells. To detect apoptotic signals specific from porcine PGCs, quantitative TUNEL assay was performed at different time of culture (0 ∼ 24 h). The proportion of apoptotic porcine PGCs determined by double staining with alkaline phosphatase activity and in situ TUNEL assay increased as the time of culture progressed and continued at least 24 h. These results demonstrate that one of the causes of loss of porcine PGCs in vitro is apoptosis.
High cell density culture of Bacillus thuringiensis was conducted in fed-batch culture and TCRC using a bioreactor incorporating ceramic membrane filter. Cell growth of B. thuringiensis in fed-batch culture increased linearly, which was well matched by the results of cell growth modeling. In spite of the slower growth rate during fed-batch culture, no spore formation was observed, which was contrary to the results of continuous culture. Changing culture mode to batch culture after fed-batch operation induced a 2.7$\times$$10^9$ CFU/mL spore concentration using a 300 g/L glucose feed concentration. In TCRC operation incorporating ceramic filter within the bioreactor, the effect of glucose feed concentrations on the cell growth and spore formation of B. thuringiensis was determined. A maximum cell concentration of 1.8$\times$$10^{10}$ CFU/ml, which corresponds to 82.6 g-cell/L, was obtained in the TCRC using a 50 g/L glucose feed concentration. In the TCRC, cell growth increased linearly and glucose concentration was limited, which agreed well with the results of cell growth modeling. No spore formation was observed except when 1 g/L of glucose was fed. Changing to batch culture induced a 1.2$\times$$10^{10}$ CFU/mL of spore concentration, which was the highest spore concentration obtained among the various culture modes examined. The optimal glucose feed rate was found to be 0.55 g-glucose/h.
This study compared cell expansion and colony forming ability in human cord blood stem cells cultured ex vivo with two kinds of cytokine combinations, two kinds of media, presence or absence of fetal bovine serum (FBS) and two or three dimensional (2D or 3D) culture environments. Purified $CD34^+$ cells were cultured in the IMDM (Iscove's Modified Dulbecco's Medium) and SFM (Serum Free Medium) containing a cytokine cocktail-I (coc-I) (EPO, GMCSF, SCF, and IL-3) or a cytokine cocktail-II (coc-II) (TPO, G-CSF, SCF, IL-6, and Flt3/Flk-2 ligand) with or without FBS. Generally, higher cellular and clonogenic expansion were observed in the coc-I cytokine condition, compared to coc-II cytokine condition. 3D (Methocult) and 2D (IMDM + coc-I + FBS) conditions gave the greatest cell ($2,258{\pm}456$ fold) and CFU (BFU-E: $652{\pm}19$, CFU-GM: $520{\pm}58$, CFU-GEMM: $339{\pm}100$ fold) expansions, respectively. In aspect of medium, IMDM was better than SFM, except for coc-II condition without FBS. In conclusion, 'IMDM + coc-I + FBS' and 'IMDM + coc-I' were the best CFU expansions on the occasion of all culture conditions. FBS and 2D conditions had affirmative effect on CFU expansion, generally. These data might provide a variety of notions about ex vivo expansion of hematopoietic stem cells.
Adipose-derived stem cells (ADSCs) are considered promising tools for tissue regeneration. However, ADSCs have very poor proliferation capacity. Therefore, fetal bovine serum (FBS) is generally added to the culture media of ADSCs. As FBS contains many uncharacterized components that may affect cellular functions, methods for serum-free cultures of ADSCs have been widely investigated. In this study, to develop an efficient method for a serum-free culture of ADSC-T, we used an ADSC line established by introducing the simian virus 40 (SV40) T gene into primary ADSCs. We then investigated the effect of amino acids, vitamins, and other components on the growth of ADSC-T. When the ADSC-T cells were plated with DMEM/F12 serum-free medium, the cells did not proliferate, and the mixture of amino acids, vitamins, and B27 supplement did not increase the growth of the cells. However, when the ADSC-T cells were provided with serum-free DMEM/F12 after they had been cultured with serum-supplemented DMEM for 24 h, the cells proliferated, and the vitamins and B27 supplement increased the cell growth. Stem-Pro serum-free medium also appeared to be useful as a suspension culture for the ADSC-T cells. The ADSC-T cells secreted large amounts of proteins of around 70 kDa. Insulin-like growth factor (IGF) and fibroblast growth factor basic (FGF basic) were secreted by ADSC-T in larger amounts in the serum-free culture than in the serum-supplemented culture.
Kim, Sang-Gyeong;Seo, Heon-Seok;Lee, Jong-Won;Sin, Dong-Geon;Lee, Jae-Gwan;Kim, Hyeon-Min;Kim, Jae-Sik;Seo, Jang-Su
KSBB Journal
/
v.14
no.5
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pp.593-599
/
1999
In this study, optimal conditions to infect CD34 positive cells containing hematopoietic stem cells obtained from cord blood and bone marrow were found using two different retroviral vectors expressing human growth hormone (hGH) and $\beta$-galactosidase. CD34 positive cells were successfully infected with recombinant retroviruses only when the CD34 positive cells were co-cultured with packaging cells secreting recombinant retroviruses. To find the highest infection efficiency for the gene transfer, CD34 positive cells from cord blood were co-cultured with packaging cells secreting recombinant retroviruses encoding E. coli lacZ gene. The highest infection efficiency was obtained when CD34 positive cells were cultured for 3 days, and then co-culturing was done for another 2 days. When CD34 positive cells from bone marrow were co-cultured with packaging cells secreting recombinant retroviruses encoding hGH gene, the maximum amount of hGH was also secreted at the same conditions found above, i.e. 3 days of culture and 2 days of co-culture. These results show that there are optimal conditions for the gene transfer into hematopoietic stem cells regardless of sources of target cells or retroviral vectors used to infect.
This study was carried out to establish the in vitro short-term culture system of developing male germ cells by purifing germ cells of various stages. The decapulated testicular cells were incubated with collagenase (lmg/ml) and try psin (2.5mg/ml) in HBSS. After separating male germ cell, the separated germ cells were stained with heamatoxylin/eosin and determined developing stages under light microscopy. The purity of pachtene spermatocytes a and round spermatid were 85%, respectively. Yield of total male germ cells was highly variable between individuals, with a mean value of 3.5 to 4.5 ${\times}$ 10$^7$ cells/testis. Viability of the cell was over 97% after separation. In DMEM medium, the optimal cell number for culture is approximately 1 x 10$^5$ cells/dish, but low cell den-sities than 1 ${\times}$ 10$^5$ cell/dish showed a decreased cell viability. Furthermore, about :36.8% of pac-hytene cells was successfully cultured for 6 days and some of cells were developed to secondary spermatids and round spermatids. Therefore, our data suggested that this culture conditions will be utilize as a feasible tools to produce tran-sgenic livestock using techniques such as intrac-ytoplasmic injection and cell fusion.
Effects of salicylic acid (SA) on anthocyanin synthesis in cell suspension cultures of grapes (Vitis vinifera L.) were investigated. tow concentrations (0.1 to 1$\mu$M) of SA did not affect the cell growth and anthocyanin accumulation whereas high concentrations (5 to 10$\mu$M ) of SA inhibited cell growth with increasement of anthocyanin synthesis. Five micromoles of SA promoted anthocyanin accumulation 4 folds compared to control cells. When SA was treated on the different culture times (0 to 7day), the highest pigment accumulation was obtained at the cells of second day. A low productivity of anthocyanin under continuous dark incubation was also recovered by adding SA which mimicked light irradiation effect These results suggest that SA is one of essential agents in anthocyanin biosynthesis.
The effect of exogenous phosphate supply on the regulation of phosphate metabolism was investegated during catabolic repression and catabolic derepression in yeast (Saccharomyces uvarum). As the results, when sugar was supplimented in cells cultivated under phosphate free, the growith rate was low but it was capable of cell division. Polyphosphate "B" was accumulated highly in proportion to amount of phosphate added to the medium. Without regard to phosphate supply of the medium, the total amount of polyphospgate was almost similar, although each polyphosphate was turned over. Activities of all phosphatases remained continuousoy high in the cells cultivated in the phosphate free medium. Especially under catabolic repression, the function of polyphosphate system was shown to compensate the ATP/ADP system as phosphate donor, energy source and regulator.
This experiment was carried out to know the processes of protoplast isolation, culture and plant regeneration in aims of introducing foreign genes into plant cells through plant gene vector, and cellular selection for plant improvement. The main results indicated that 2% cellulase plus 0.5% macerozyme is proper for isolation of protoplasts from leaf mesophyll cells of N. plumbaginifolia, plating efficiency was higher in 1.4-2.0 x 10$^4$ cells/ml, complete cell wall was regenerated after 2 days culture, cell division and cell mass were observed after 4 days and 2 weeks, respectively, colony was developed after 3 weeks culture, addition of 1-2mg/l BA promoted shoot differentiation while root differentiation did not required hormone and seeds were harvested from more than 100 cell lines for further investigation and study.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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