In Vitro Culture Following Purfication of Mouse Spermatogenic Cells

생쥐 정자세포의 분리와 체외 배양에 관한 연구

This study was carried out to establish the in vitro short-term culture system of developing male germ cells by purifing germ cells of various stages. The decapulated testicular cells were incubated with collagenase (lmg/ml) and try psin (2.5mg/ml) in HBSS. After separating male germ cell, the separated germ cells were stained with heamatoxylin/eosin and determined developing stages under light microscopy. The purity of pachtene spermatocytes a and round spermatid were 85%, respectively. Yield of total male germ cells was highly variable between individuals, with a mean value of 3.5 to 4.5 ${\times}$ 10$^7$ cells/testis. Viability of the cell was over 97% after separation. In DMEM medium, the optimal cell number for culture is approximately 1 x 10$^5$ cells/dish, but low cell den-sities than 1 ${\times}$ 10$^5$ cell/dish showed a decreased cell viability. Furthermore, about :36.8% of pac-hytene cells was successfully cultured for 6 days and some of cells were developed to secondary spermatids and round spermatids. Therefore, our data suggested that this culture conditions will be utilize as a feasible tools to produce tran-sgenic livestock using techniques such as intrac-ytoplasmic injection and cell fusion.

본 연구는 생쥐의 고게정관내에 존재하는 분화단계의 정자세포를 발생단계별로 분리하여, 체외에서 단기간 배양체계를 확립하기 위하여 실시하였다. 8주령 이상된 생쥐의 정소로부터 정소막을 제거시킨 후, collagenase (1mg/ml), trypsin(2.5mg/ml)를 처리하여 곡세정관을 간질세포와 분리하여 배양액에 부유시켰다. 부유세포는 Celcep장치를 이용하여 세포크기와 밀도 차이에 의해 분화 단계별로 분리하였다. 회수된 세포의 균질성은 haematoxylin/eosin 또는 orcein으로 염색한 후, 광학현미경하에서 확인한 결과 약 85% pachytene spermatocyte와 round spermatid을 성공적으로 분리해냈다. 따라서 sedimentation velocity에 의해서 생쥐의 spermatogenic cell의 발달단계별 분리가 가능함을 알 수 있었다. 이러한 방법으로 분리된 pachytene spermatogenic cell들은 DMEM 배양액에서 6일 이상 배양한 결과 약 36%의 생존율을 보였다. 따라서, 분화단계별 정자 세포의 분리 및 배양체계의 확립은 웅성생식세포의 발생과정에 따른 생리 또는 분자생물학적 현상을 규명함은 물론 세포융합기술의 이용에 의한 형질전환동물 생산에의 응용을 통해 가축에 있어서의 형질전환 생산효율의 개선에 기여할 수 있으리라 사료된다.