Leaves of Chionanthus retusus were found to be damaged by leaf spot disease associated with a fungus in Iksan, Korea. Leaf spots were angular to irregular, vein-limited, scattered, 1-8 mm diameter, brownish-gray to dark brown when dry, with heavy fructification. The pathogen causes premature defoliation of C. retusus plant and was identified as Pseudocercospora chionanthi-retusi based on morphological and molecular-phylogenetic analyses. The phylogenetic tree was constructed using multi-locus DNA sequence data of partial actin (actA), partial translation elongation factor 1-alfa (tef1), partial DNA-directed RNA polymerase II second largest subunit (rpb2) genes, and internal transcribed spacer regions. Current study provides detail morphological description of P. chionanthi-retusi on C. retusus in Korea, with supports of phylogenetic analysis and pathogenicity test.

딸기에 발생하는 흰가루병과 점박이응애는 수확기 문제되는 주요 병해충이다. 딸기 수확기 병해충방제를 위해 적용 약제를 처리하지만 최근에는 소비자의 요구에 따라 친환경적 병해충 방제 방법이 요구되고 있다. 딸기 정식 후 자외선 램프(ultraviolet B, UV-B)를 이용한 친환경 병해충 방제효과를 조사하기 위해 수확기 토경과 수경재배로 2년 동안 시험을 수행하였다. 설향, 킹스베리, 두리향 품종을 정식하였으며 UV-B 램프+멀칭 종류(흑색, 녹색, 빛반사시트[light reflection sheet, LRS])별 4처리로 시험을 수행하였다. 처리는 UV-B+흑색 또는 녹색 멀칭, UV-B+흑색 또는 녹색+LRS, 무처리로 하였다. UV-B 램프 처리에 의한 흰가루병은 모든 품종에서 65% 이상의 방제효과를 보였다. 점박이응애 성충밀도는 UV-B+흑색 또는 녹색+LRS 멀칭 처리가 다른 처리보다 가장 낮았다. 따라서 딸기 수확기에 UV-B 램프 처리는 식물체에 미치는 영향도 적으며 흰가루병과 점박이응애 밀도를 낮추는 데 효과적인방제방법이될수있다.

본 연구에서는 수박에서 과실썩음병을 유발하는 Acidovorax citrulli를 억제하는 세균을 선발하고, 선발한 세균이 성장촉진 및 길항 효소를 생성하는지 확인하였다. 전국 26개 지역의 94곳의 수박재배지와 25곳의 대형 원예 육묘장에서 수박 식물체(잎, 꽃, 뿌리) 및 토양을 수집하였다. 수집한 sample에서 tryptic soy agar와 yeast extract peptone dextrose 배지에서 각각 1,953종과 841종 총 2,794종의 미생물을 분리하였으며, 2,794종의 미생물 중 2종의 A. citrulli를 선발하였다. 선발한 A. citrulli에 대한 기내 길항성 검정 결과 3-3B에서 24종, 9-4B에서 14종 총 28종의 길항 세균을 선발하였다. 선발한 길항 세균 중 BNPL-6-3B, HYGPL-1-3B, TIPL-6-1B, YGMP-2-7Y는 2종의 bacterial fruit blotch균 모두에서 강한 길항성을 보였다. 선발한 28종의 길항 세균을 대상으로 총 6가지의 생화학적 검증을 진행하였으며, 선발한 길항 세균 중 CB20R-2-5B, TIPL-4-2B, TIPL-6-1B, TIPL-7-4B 4가지 균주가 5가지의 생화학적 검증에서 성장촉진 및 길항 효소를 분비하는 것을 확인하였다. 또한, BNPL-3-3B와 BNPL-6-3B 두 균주는 성장촉진 효소 분비를 확인하는 4가지의 생화학적 검증(ammonia production, phosphate solubilization, starch hydrolysis, siderophore production)에서 모두에서 효소를 분비하는 것으로 확인되었다. 본 연구에서 선발한 28종의 길항 세균은 배지에서 A. citrulli를 효과적으로 억제하였으며, 사이안화 수소와 단백질분해효소 생산 능력 검정을 통해 길항 활성을 확인하였다. 또한, 선발한 길항 세균의 암모니아 생산 및 불용성 인산 가용화 능력을 확인하여 식물 성장촉진 활성을 가지는 것으로 확인하였다. 따라서, 본 연구결과는 향후 수박 과실썩음병 방제제 및 성장촉진제 등의 친환경 농자재 개발에 유용한 기초 자료가 될 것으로 판단된다.

최근에는 작물의 유도 저항성을 이용한 항바이러스제 개발에 관한 많은 연구가 수행되고 있으나 실제 농업현장에 널리 보급되지 못하고 있는 실정이다. 본 실험은 시설토마토 재배현장에 외생 살리실산, 키토산, 유제놀 처리에 따른 토마토황화잎말림바이러스(Tomato yellow leaf curl virus, TYLCV) 감염억제효과를 검증하고자 수행되었다. 실내검정에서 TYLCV에 감수성 품종인 '슈퍼도태랑'은 항바이러스제 처리 후 TYLCV에 감염된지 12일 후 VP (virus infected control plants)에서 바이러스 증상이 나타나기 시작했다. 접종 32일 후 TYLCV 발병도는 VP에서 98.8%였고, SAT (2 mM salicylic acid)+VP, EGT (200 ㎍/ml eugenol)+VP에서는 각각 98.8%, 98.7%로 발병도가 높았으나, CHT (0.1% chitosan)+VP는 85.7%로 다른 처리들과 통계적으로 유의한 차이를 보였다. 그러나 TYLCV 농도는 CHT+VP에서 OD값이 0.3으로 오히려 가장 높게 나타났으며, 토마토의 초장, 지상부 및 지하부 생체중에서도 뚜렷한 효과를 보이지 않았다. 여름작형 시설재배지에서 도태랑 계열의 토마토품종 '도태랑솔라'를 사용하여 항바이러스 3종의 효과를 조사한 결과, 수확기에 모든 처리구에서 100.0%에 가까운 TYLCV 감염률은 나타냈으며, 수확량에도 처리간의 통계적 유의차가 인정되지는 않았다. 이와 대조적으로 Ty-1과 Ty-3a 유전자를 보유한 TYLCV에 내병성 품종인 'TY자이언츠'는 저항성 유묘검정의 전 조사기간 동안 바이러스 증상이 전혀 관찰되지 않았고, 식물체내 바이러스 농도도 무접종 수준이었다. 본 실험 결과 'TY자이언츠' 품종은 TYLCV 발생이 만연한 지역 및 재배시기에 감수성 품종을 대체할 수 있을 것으로 생각된다. 반면, 저항성 유도물질인 살리실산, 유제놀, 키토산의 항바이러스 효과는 입증되지 않았기 때문에, 아직 시설토마토 재배현장에 적용하기는 어려울 것으로 판단된다.

Apple stem grooving virus (ASGV) is a high-risk viral pathogen that infects many types of fruit trees, especially pear and apple, and causes serious economic losses across the globe. Thus, rapid and reliable detection assay is needed to identify ASGV infection and prevent its spread. A reliable reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) was developed, optimize, and evaluated for the coding region of coat protein of ASGV in pear leaf. The developed RT-LAMP facilitated the simple screening of ASGV using visible fluorescence and electrophoresis. The optimized reaction conditions for the RT-LAMP were 63℃ for 50 min, and the results showed high specificity and 100-fold greater sensitivity than the reverse transcription polymerase chain reaction. In addition, the reliability of the RT-LAMP was validated using field-collected pear leaves. Furthermore, the potential application of paper-based RNA isolation, combined with RT-LAMP, was also evaluated for detecting ASGV from field-collected samples. These assays could be widely applied to ASGV detection in field conditions and to virus-free certification programs.

The incidence of Tomato brown rugose fruit virus (ToBRFV) and biological and molecular characterization of the Palestinian isolates of ToBRFV are described in this study. Symptomatic leaf samples obtained from Solanum lycopersicum L. (tomatoes) and Nicotiana tabacum L. (cultivated tobacco) plants were tested for tobamoviruses infection by reverse transcription polymerase chain reaction. Tomato leaf samples collected from Tulkarm and Qalqilia are infected with ToBRFV-PAL with an infection rate of 76% and 72.5%, respectively. Leaf samples collected from Jenin and Nablus were found to be mixed infected with ToBRFV-PAL and Tobacco mosaic virus (TMV) (100%). Sequence analysis of the ToBRFV-PAL genome showed that the net average nucleotide divergence between ToBRFV/F48-PAL strain and the Israeli and Turkish strains was 0.0026398±0.0006638 (±standard error of mean), while it was 0.0033066±0.0007433 between ToBRFV/F42-PAL and these two isolates. In the phylogenetic tree constructed with the complete genomic sequence, all the ToBRFV isolates were clustered together and formed a sister branch with the TMV. The sequenced Palestinian isolates of ToBRFV-PAL shared the highest nucleotide identity with the Israeli ToBRFV isolate suggesting that the virus was introduced to Palestine from Israel. The findings of this study enhance our understanding of the biological and molecular characteristics of ToBRFV which would help in the management of the disease.

In December 2020, stem and leaf rot symptoms in small-fruited tomato (Solanum lycopersicum) plants were observed in a farmer's vinyl greenhouse located in Pyeongtaek, Gyeonggi Province, Korea. The incidence of diseased plants in the vinyl greenhouse was 2-6%. Seven single-spore isolates of Phoma sp. were obtained from the diseased stems and leaves. All the isolates were identified as Boeremia linicola based on the cultural, morphological and molecular characteristics. Two isolates of B. linicola were tested for pathogenicity on stems and leaves of small-fruited tomato and large-fruited tomato using artificial inoculation. All the tested isolates caused stem and leaf rot symptoms in the inoculated plants. The symptoms were similar to those observed in plants from the vinyl greenhouse investigated. This is the first report of B. linicola causing stem and leaf rot in tomato.