Saccharomyces cerevisiae로부터 외래 $\alpha$-amylase의 발현 및 분비를 증진시키기 위하여 여러 실험이 수행되었다. ADC1 promoter와 mouse salivary $\alpha$-amylase cDNA gene의 native signal sequence를 효모의 PRB1 promoter와 invertase leader sequence로 대치한 plasmid vector pCNN(AMY)를 제작하였다. 효모세포에서 생성된 $\alpha$-amylase의 세포외로의 분비율은 mouse o-amylase의 native signal sequence인 경우는 약 89.4%이었으며 invertase leader sequence로 치환된 경우는 96.3%로 분비효율이 증진되었다. 야생주인 K8l/pCNN(AMY)와 호흡결여변이주인 K81/pCNN(AMY)p-의 혐기적 조건하에서의 배양 결과 $\alpha$-amylase 생산량이 K8l/pCNN(AMY)보다 K81/pCNN(AMY)p-가 약 5~8배 정도 증가하였다. $\alpha$-Amylase의 생산에 있어서 배지조성에 따른 K81/pCNN(AMY)의 생산증진의 비교는 배지성분인 yeast extract와 peptone의 구성비율을 비교하였을 때 yeast extract 1%와 peptone 2%, NaCl의 경우 100 mM, 2-mercaptoethanol인 경우에는 0.015%(w/v)을 첨가하였을 때 최대 효소 활성을 나타내었고, 특히 2-mercaptoethanol인 경우에는 대조구에 비해 효소 생산량이 약 3배 정도 증진되었다.
본 실험에서는 식물의 유용유전자를 개발하여 그 발현양상을 확인하기 위하여 효모를 이용하면 그 발현양상을 비교적 빠르게 확인할 수 있는 미토콘드리아 형질전환 방법을 규명하였다. 또한 미토콘드리아(mt)에 관련된 유전자를 TPI promoter를 가진 plasmid에 재조합한 후 효모에 형질전환하여 mt에서 그 유전자의 특성이 발현 되는 것을 확인하였다. 따라서 본 연구의 결과로 mt에 관련된 유전자를 식물의 조직에 형질전환 하여 1개 이상의 유전자가 식물의 mt에 삽입되어 그 유전자의 특성이 발현되는데 이용되어 질수 있을 것이라 생각된다.
Sora An;Park, Kyoung-Phil;Park, Hyoung-Tae;Kim, Kyu-Joong;Kim, Kyunghoon
Journal of Microbiology
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제40권3호
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pp.245-247
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2002
A genomic DNA library of the fungus Trametes versicolor was constructed in a yeast integration vector which contains the URA3 gene of the budding yeast Saccharomyces cerevisiae and the gene responsible for hygromycin B resistance, and fragments acting as autonomously replicating sequences (ARSes) in the budding yeast were identified from the genomic DNA library. Sixteen recombinant plasmids from the library transformed the budding yeast Saccharomyces cerevisiae to Ura+ at high frequencies. They were maintained stably under selective conditions, but were gradually lost from yeast cells at different rates under nonselective conditions, indicating that they contain eukaryotic origins of DNA replication and exist as extrachromosomal plasmids. Base sequences of four ARS DNAs among the 16 cloned fragments revealed that all or the four contain at least one 11 bp [(A/T)TTTA(T/C)(A/G)TTT(A/T)]consensus sequence of the budding yeast ARS.
In order to increase the production of glutathione by maximizing the expression of recombinant gsh plasmids, two genes responsible for the biosynthesis of glutathione were cloned. A gshI gene was cloned onto pBR322 plasmid as 3.6Kb PstI DNA fragment from E. coli K-12 chromosomal DNA. Also gshII gene was cloned onto pUC13 plasmid as 2.2Kb PstI-BamHI DNA fragment. In order to improve the glutathione producing activity more efficiently, various recombinant plasmids containing tandem repeated gshI genes or both genes in various copy number onto the same vector were constructed. E. coli cells harboring pGH501 plasmid (pUC8-gshI$\cdot$I$\cdot$II) showed the highest glutathione synthesizing activity. The conditions for glutathione production with an ATP-generating system such as acetate kinase reaction of E. coli cells or glycolytic pathway of yeast cells were examined using the E. coli cells harboring the pGH501 plasmid. When the acetate kinase reaction of E. coli cells was used as an ATP generating system, 20mM of L-csteine was converted into glutathione with a yield of $100\%$.
흰목이는 고등 담자균류로서 효모와 유사한 분생포자(yeast-like conidia: YLC)가 출아법에 의하여 번식하는 특징을 지닌다. 본 연구에서는 hph 유전자를 지니는 pCambia 1300 plasmid를 Agrobacterium 이용 YLC 형질전환을 수행하였다. 그 결과 NaOH 처리가 이루어진 YLC 세포를 이용하는 경우에서만 형질전환이 가능하였으며 평균 $1.0{\times}10^6$ YLC 세포들로부터 40-50 형질전환체를 생산할 수 있었다. T-DNA 삽입은 PCR에 의하여 확인되었다. 형질전환체의 메탄올추출액은 암세포주인 SKOV-3에 대한 다양한 수준의 독성이 측정되었다.
Kim, Jong-Guk;Hwang, Seon-Kap;Kwon, Kaeg-Kyu;Nam, Joo-Hyun;Hong, Soon-Duck;Seu, Jung-Hwn
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제2권4호
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pp.237-242
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1992
In order to clone the gene coding for alkaline phosphatase in the yeast Kluyveromyces fragilis, a genomic library was constructed using the yeast-E. coli shuttle vector pHN114 as a cloning vector. From the genomic library, a clone carrying the gene was isolated and the plasmid was designated as pSKH101. A restriction enzyme map was made using this plasmid. Subcloning experiments and complementation studies showed that alkaline phosphatase was active only in the original 3.1 kb insert. Southern hybridization analysis confirmed that the cloned DNA fragment was derived from K. fragilis genomic DNA. Using a minicell experiment, the product of the cloned gene was identified as a protein with a molecular weight of 63 KDa. A 0.6 kb HindIII fragment, which showed promoter activity, was isolated using the E. coli promoter-probe vector pKO-1.
Aspergillus nidulans의 tRNA 유전자의 구성과 발현기착을 연구하기 위하여 우선 Aspergillus의 총 tRNA 유전자를 cloning 하였다. Aspergillus의 핵 DNA롱 포자로 부터 분리해 내고 본질 형성에서 분리한 BamHI과 T4 DNA ligase를 사용하여 pBR322플라스미드에 재조합시켜서 cloning하였다. 15벤의 transformation을 하여 30,000개 의 transformants 얻었고, 이 중 Aspergillus DNA를 가지고 있는 colony는 5,300켜개였다. In vivo에 서 S2p로 표지 된 total tRNA를 probe로 하여 colony hybridization 실험 결과, 105개의 total tRNA유전자 clone을 얻었다. 위의 결과와 cohybridization 실험 결과를 분석해 보면, Asprgillus의 tRNA 유전자는 yeast의 그것보다는 좀 더 밀집되어 존재한다고 생각된다.
The endoxylanase (642 bp; 213 amino acids) and ${\beta}-xylosidase$ (1,602 bp; 533 amino acids) genes from Bacillus sp. were amplified by PCR and separately inserted downstream of the yeast ADH1 promoters, resulting in the pAEDX-1 and pAEX plasmid. When the yeast transformants, S. cerevisiae SEY2102 harboring pAEDX-1 or pAEX, were grown on YPD medium, the total activities of the enzymes reached about 9.8 unit/mL for endoxylanase and 2.9 unit/mL for ${\beta}-xylosidase$. When the three kinds of xylan from oat spelts, birch wood, and corncob were hydrolyzed by treatment of recombinant endoxylanase and ${\beta}-xylosidase$, it was found that xylose, xylobiose and xylotriose were produced and xylose was the major product after 12 h reaction. In addition, with the higher amount of enzymes, the more amount of xylose was produced.
The cuclodextrin glucanotransferase (CGTase) gene of Bacillus macerans was subcloned at the downstream of yeast ADH1 promoter, and then the resulting plasmid pVT-CGTM(9.15 kb) was introduced into the yeast host strain, Saccharomyces cerevisias 2805. The transformed yeast, S. cerevisiae 2805/pVT-CGTM, showed the starch-hydrolyzing activity on the starch-azure plate. The optimal conditions for the CGTase expression were found to be 2% dextrose, initial pH5.5, 3$0^{\circ}C$, and 48hr cultivation. Under this condition, the extracellular CGTase activity reached at 0.53 U/mL, whereas the intracellular activity was about 0.03U/mL. This result indicates that the signal peptide of Bacillus CGTase functioned well in S. cerevisiae.
발현 Vector인 pKK223-3를 이용하여 효모 Thiol-Specific Antioxidant단백질 유전자를 대장균에 도입시켜 이 단백질을 발현시켰다. 이 단백질은 대장균 단백질의 약 1% 정도로 발현되었으며, 물리 및 화학적 특성은 효모의 것과 동일한 특성을 보였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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