Kringle 5 (K5), located outside of angiostain (K1-4) in human plasminogen, displays more potent antiangiogenic activity on endothelial cell proliferation than angiostatin itself. Using a yeast two-hybrid system in vivo, we have recently identified Rgl2 (guanine nucleotide dissociation stimulator (RalGDS)-like factor 2) as a binding protein of human K5. In order to confirm in vitro protein interaction between K5 and Rgl2, we developed bacterial recombinant expression systems for them. K5 and Rgl2 proteins were expressed in high yields and purified into pure forms with His tags and GST fusion, respectively. GST-pull down experiments clearly demonstrated that K5 interacts specifically with Rgl2 in vitro. These results indicate that Rgl2 functions as a receptor protein for K5 in vitro as well as in vivo, leading to anti-angiogenesis through regulating Ras signaling pathways.
Bax, a mammalian pro-apoptotic member of the Bcl-2 family induces cell death when expressed in yeast. To investigate whether Bax expression can induce cell death in plant, we produced transgenic Arabidopsis plants that contained murine Bax cDNA under control of a glucocorticoid-inducible promoter. Transgenic plants treated with dexamethasone, a strong synthetic glucocorticoid, induced Bax accumulation and cell death, suggesting that some elements of cell death mechanism by Bax may be conserved among various organisms. Therefore, we developed novel yeast genetic system, and cloned several Plant Bax Inhibitors (PBIs). Here, we report the function of two PBIs in detail. PBI1 is ascorbate peroxidase (sAPX). Fluorescence method of dihydrorhodamine123 oxidation revealed that expression of Bax in yeast cells generated reactive oxygen species (ROS), and which was greatly reduced by co-expression with sAPX. These results suggest that sAPX inhibits the generation of ROS by Bax, which in turn suppresses Baxinduced cell death in yeast. PBI2 encodes nucleoside diphosphate kinase (NDPK). ROS stress strongly induces the expression of the NDPK2 gene in Arabidopsis thaliana (AtNDPK2). Transgenic plants overexpressing AtNDPK2 have lower levels of ROS than wildtype plants. Mutants lacking AtNDPK2 had higher levels of ROS than wildtype. $H_2O_2$ treatment induced the phosphorylation of two endogenous proteins whose molecular weights suggested they are AtMPK3 and AtMPK6. In the absence of $H_2O_2$ treatment, phosphorylation of these proteins was slightly elevated in plants overexpressing AtNDPK2 but markedly decreased in the AtNDPK2 deletion mutant. Yeast two-hybrid and in vitro protein pull-down assays revealed that AtNDPK2 specifically interacts with AtMPK3 and AtMPK6. Furthermore, AtNDPK2 also enhances the MSP phosphorylation activity of AtMPK3 in vitro. Finally, constitutive overexpression of AtNDPK2 in Arabidopsis plants conferred an enhanced tolerance to multiple environmental stresses that elicit ROS accumulation in situ. Thus, AtNDPK2 appears to playa novel regulatory role in $H_2O_2$-mediated MAPK signaling in plants.
Kinesin-II, a molecular motor, consists of two different motor subunits, KIF3A and KIF3B, and one large kinesin superfamily-associated protein 3 (KAP3), forming a heterotrimeric complex. KAP3 is associated with the tail domains of motor subunits. However, its exact role remains unclear. Here, we demonstrated KAP3 binding to the carboxyl (C)-terminal tail region of HS-associated protein X-1 (HAX-1). HAX-1 bound to the C-terminal region of KAP3, but not to KIFs (KIF3A, KIF3B, and KIF5B) and the kinesin light chain (KLC) in the yeast two-hybrid assays. The interaction was further confirmed in the glutathione S-transferase (GST) pull-down assay and by co-immunoprecipitation. Anti- HAX-1 antibody as well as anti-KIF3A antibody co-immunoprecipitated KIF3B and KAP3 from mouse brain extracts. These results suggest that KAP3 could mediate the interaction between Kinesin-II and HAX-1.
Jang, Won Hee;Jeong, Young Joo;Choi, Sun Hee;Lee, Won Hee;Kim, Mooseong;Kim, Sang-Jin;Urm, Sang-Hwa;Moon, Il Soo;Seog, Dae-Hyun
Journal of Life Science
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v.25
no.5
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pp.594-600
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2015
Protein-protein interactions have a critical role in the regulation of many cellular functions. Postsynaptic density-95/disks large/zonula occludens-1 (PDZ) domain is one of domains that mediate protein-protein interactions. PDZ domains typically bind to the specific motif at the carboxyl (C)-terminal end of partner proteins. Multi-PDZ domain protein 1 (MUPP1), which has 13 PDZ domains, serves a scaffolding function for structure proteins and signaling proteins, but the cellular function of MUPP1 has not been fully elucidated. We used the yeast two-hybrid system to identify proteins that interact with PDZ domains of MUPP1. We found an interaction between MUPP1 and muskelin. Muskelin was recently identified as a GABAA receptor (GABAAR) α1 subunit binding protein and known to have a role in receptor endocytosis and degradation. Muskelin bound to the 3rd PDZ domain, but not to other PDZ domains of MUPP1. The C-terminal end of muskelin was essential for the interaction with MUPP1 in the yeast two-hybrid assay. When co-expressed in HEK-293T cells, muskelin but not the C-terminal deleted muskelin was co-immunoprecipitated with MUPP1. In addition, MUPP1 co-localized with muskelin at the same subcellular region in cells. These findings collectively suggest that MUPP1 or its interacting proteins could modulate GABAAR trafficking and turnover through the interaction with muskelin.
Se Young Pyo;Young Joo Jeong;Sung Woo Park;Mi Kyoung Seo;Won Hee Lee;Sang-Hwa Urm;Sang Jin Kim;Mooseong Kim;Jung Goo Lee;Dae-Hyun Seog
Journal of Life Science
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v.33
no.1
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pp.1-7
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2023
Intracellular cargo transport is mediated by molecular motor proteins, such as kinesin and cytoplasmic dynein. Kinesins make up a large subfamily of molecular motors. Kinesin-1 is a plus-end-directed molecular motor protein that moves various cargoes, such as organelles, protein complexes, and mRNAs, along a microtubule track. It consists of the kinesin superfamily protein (KIF) 5A, 5B, and 5C (also called kinesin heavy chains) and kinesin light chains (KLCs). Kinesin-1 interacts with many different binding proteins through its carboxyl (C)-terminal region of KIF5s and KLCs, but their binding proteins have not yet been fully identified. In this study, a yeast two-hybrid assay was used to identify the proteins that interact with the KIF5A specific C-terminal region. The assay revealed an interaction between KIF5A and glutamate-rich 4 (ERICH4). ERICH4 bound to the KIF5A specific the C-terminal region but did not interact with the C-terminal region of KIF5B or KIF3A (a motor protein of kinesin-2). In addition, KIF5A did not interact with another isoform, ERICH1. Glutathione S-transferase (GST) pull-downs showed that KIF5A interacts with GST-ERICH4 and GST-ERICH4-amino (N)-terminal but not with GST-ERICH4-C or GST alone. When co-expressed in HEK-293T cells, ERICH4 co-localized with KIF5A and co-immunoprecipitated with KIF5A and KLC but not KIF3B. Together, our findings suggest that ERICH4 is capable of binding to KIF5A and that it may serve as an adaptor protein that links kinesin-1 with cargo.
Jeong, Young Joo;Park, Sung Woo;Kim, Sang-Jin;Lee, Won Hee;Kim, Mooseong;Urm, Sang-Hwa;Seog, Dae-Hyun
Journal of Life Science
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v.29
no.3
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pp.369-375
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2019
Microtubules form through the polymerization of ${\alpha}-$ and ${\beta}-tubulin$, and tubulin transport plays an important role in defining the rate of microtubule growth inside cellular appendages, such as the cilia and flagella. Heterotrimeric kinesin 2 is a molecular motor member of the kinesin superfamily (KIF) that moves along the microtubules to transport multiple cargoes. It consists of two motor subunits (KIF3A and KIF3B) and a kinesin-associated protein 3 (KAP3), forming a heterotrimeric complex. Heterotrimeric kinesin 2 interacts with many different binding proteins through the cargo-binding domains of the KIF3s, but these binding proteins have not yet been specified. To identify these proteins for KIF3A, we performed yeast two-hybrid (Y2H) screening and found a specific interaction with ${\beta}2-tubulin$ (Tubb2), a microtubule component. Tubb2 was found to bind to the cargo-binding domain of KIF3A but did not interact with KIF3B, KIF5B, or kinesin light chain 1 in the Y2H assay. The carboxyl-terminal region of Tubb2 is essential for interaction with KIF3A. Other Tubb isoforms, including Tubb1, Tubb3, Tubb4, and Tubb5, also interacted with KIF3A in the Y2H screening. However, ${\alpha}1-tubulin$ (Tuba1) did not interact with KIF3A. In addition, an antibody to KIF3A specifically co-immunoprecipitated the KIF3B and KAP3 associated with Tubb2 from mouse brain extracts. In combination, these results suggest that a heterotrimeric kinesin 2 motor protein is capable of binding to tubulin and may transport it in cells.
Kim, Mooseong;Jeong, Young Joo;Park, Sung Woo;Seo, Mi Kyoung;Kim, Sang Jin;Lee, Won Hee;Urm, Sang-Hwa;Lee, Jung Goo;Seog, Dae-Hyun
Journal of Life Science
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v.32
no.3
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pp.189-195
/
2022
Kinesin-2 comprises two subfamilies of the heterotrimeric or homodimeric motors found in mammalian cells. Heterotrimeric kinesin-2 consists of kinesin superfamily proteins (KIFs) 3A and 3B and kinesin-associated protein 3 (KAP3), which is a molecular motor protein that moves along microtubules. It plays diverse roles in cargo transport, including anterograde trafficking in cilia, and interacts with many different cargoes and proteins, but their binding proteins have not yet been fully identified. In this study, the yeast two-hybrid assay was used to identify the proteins that interact with the cargo-binding domain (CBD) of KIF3A, and an interaction between KIF3A and brain expressed X-linked 2 (Bex2) was found. Bex2 bound to the CBD-containing C-terminal tail region of KIF3A but did not interact with the same region of KIF3B or KIF5A (a motor protein of kinesin-1). KIF3A interacted with another isoform, Bex1, but did not interact with Bex3. In addition, glutathione S-transferase (GST) pull-downs showed that KIF3A specifically interacts with GST-Bex1 and GST-Bex2 but not with GST alone. When co-expressed in HEK-293T cells, Bex2 co-localized with KIF3A and co-immunoprecipitated with KIF3A and KIF3B but not KIF5B. In combination, these results suggest that Bex2 is capable of binding to heterotrimeric kinesin-2 and may serve as an adaptor protein that links heterotrimeric kinesin-2 with cargo.
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