The effect of various cellulosic and hemicellulosic substrates on the induction of cellulase and xylanase complexes in Aapergillus nidulans was investigated. The most efficient substrates for the induction of cellulase and xylanase complexes were carboxymethylcellulose for endoglucanase, cellobiose for ${\beta}-glucosidase$, and xylan for endoxylanase and ${\beta}-xylosidase$, respectively. However, the mixtures of these substrates, especially CMC-xylan and CMC-xylan-laminarin mixture, were much more effective not only for the enhancement of the biosynthesis of all the cellulase and xylanase complexes but also for the balanced production of these enzyme components than individual substrate. The polyacrylamide gel electrophoresis followed by activity staining showed the variation in the patterns and relative intensity of ${\beta}-glucosidase$, endoglucanase and endoxylanase components in individual enzyme preparations from A. nidulans cultures grown on different substrates. These results suggest that the biosynthesis is of cellulase and xylanase systems in A. nidulans is regulated in coordination at the level of induction.
A bacterial strain capable of hydrolyzing xylan and locust bean gum (LBG) was isolated from farm soil by enrichment culture using mixture of palm kernel meal (PKM) and wheat bran as carbon source. Nucleotide sequence of 16S rDNA amplified from the isolate YB-1107 showed high similarity with those of genus Cellulosimicrobium strains. Xylanase productivity was increased when the Cellulosimicrobium sp. YB-1107 was grown in the presence of wheat bran or oat spelt xylan, while mannanase productivity was increased drastically when grown in the presence of PKM or LBG. Particularly, maximum mannanase and xylanase activities were obtained in the culture filtrate of media containing 0.7% PKM or 1% wheat bran, respectively. Both enzyme activities were produced at stationary growth phase. Mannanase from the culture filtrate showed the highest activity at $55^{\circ}C$ and pH 6.5. Xylanase activity was optimal at $65^{\circ}C$ and pH 5.5. The predominant products resulting from the mannanase or xylanase hydrolysis were oligosaccharides for LBG or xylan, respectively. In addition, the enzymes could hydrolyze wheat bran and rice bran into oligosaccharides.
Kim, Yong-Gyun;Lee, Sang-Mong;Park, Hyun-Chul;Kim, Keun-Ki;Son, Hong-Joo
Journal of Life Science
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v.17
no.4
s.84
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pp.568-574
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2007
Lignin degrading bacterium Pseudomonas sp. LG2 was able to degrade lignin substrate to a lot of APPL compound. APPL compound was detected in culture supernatants from Pseudomonas sp. LG2 grown with BSC(brewer's spent grain). FAE(ferulic acid esterase) and xylanase are induced from Pseudomonas sp. LG2 in the presence of carbon sources such as oat spelt xylan, HBSG I, II(hydrolyzed brewer's spent grain I, II) and AFBSG(autoclaved fraction from brewer's spent grain). However, xylanase and FAE are not induced by growth of Pseudomonas sp. LG2 on xylose and arabinose. Pseudomonas sp. LG2 is grown on medium containing oat spelt xylan, HBSG I, II and AFBSG and the induction of FAE and xylanase activities of extracellular proteins determined during 14 days. Maximum level of xylanase activity(5.3 U/mg) found at 6 days in culture contained oat spelt xylan as carbon source, whereas maximum level of FAE activity(15.4 mU/mg) was found at 8 days in culture contained AFBSG as carbon source. Most ferulic acid was released in culture supernatants when Pseudomonas sp. LG2 grown on oat spelt xylan, HBSG I, II and AFBSG. FAE of extracellular enzymes was also specific activity on methyl ferulic acid, methyl caffeic acid and methyl p-coumaric acid respectively, but not methyl sinapinic acid, methyl vanillic acid and methyl gallic acid.
A bacterial strain capable of producing high level of extracellular xylanase was isolated from soil. The characteristics of the isolated strain No.236 were identified to be Bacillus stearothermophilus. The maximal xylanase production was observed in the medium containing 0.75% xylan, 0.35% yeast extract, 1.06% $K_2$HPO$_4$and 0.05% CaCO$_3$with initial pH of 6.5 when the strain was cultured at 5$0^{\circ}C$ for 28 hrs with reciprocal shaking. Hydrolysis of xylan by the xylanase revealed that xylose was the only product of the reaction. This suggested that the enzyme produced by Bacillus stearothermophilus No. 236 was an exe-acting xylanase.
Proceedings of the Korea Technical Association of the Pulp and Paper Industry Conference
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2010.04a
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pp.195-206
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2010
Xylan can be applied to improve the strength properties of paper; however the optical properties, such as brightness, are decreased significantly. To solve that problem, an applicable bleaching process is therefore desired. The aim of this research was to investigate the impact of hydrogen peroxide bleaching on hardwood kraft pulp pretreated with birchwood xylan by measuring optical properties (whiteness, brightness, opacity) as well as physical properties (tensile index, tearing index, bulk) of handsheets made from the bleached pulp. Hydrogen peroxide bleaching, as a kind of totally chlorine free (TCF) bleaching method, is quite important industrially for chemical pulp. In our work, the process variables of peroxide bleaching including bleaching temperature, time, initial pH and $MgSO_4$ dosage were studied. The results showed that both good mechanical properties and optical properties could be achieved when the operating parameters were controlled properly and therefore hydrogen peroxide bleaching was proved to be a suitable method for bleaching hardwood kraft pulp with adsorption of birchwood xylan.
The plasmid, pJHKJ4, containing the endoxylanase gene, was introduced into Bacillus subtilis DB 104. The recombinant cells produced 587 unit/ml of endoxylanase at 33 h. The endoxylanase was immobilized covalently on the surface of silica fur effective xylan hydrolysis. The activities of the immobilized and free endoxylanases were optimal at pH 6.5 and 10 mM $MnSO_4$. The optimal temperature of the immobilized endoxylanase was $60^{\circ}C$, whereas that of the free endoxylanase was $65^{\circ}C$. Under these optimal conditions, the activity of the immobilized endoxylanase was 1.7 times higher than that of the fee endoxylanase. From microscope photographs, the immobilized endoxylanase was found to be bounded and evenly distributed on the surface of silica, a nonporous solid support. The enzyme kinetics between the immobilized and free endoxylanases was estimated to be uncompetitive, when plotting double-reciprocal plots against xylan concentrations and endoxylanase activities. These results suggest that the higher activity of the immobilized endoxylanase may be due to increased formation of enzyme-substrate complex, because of the easy accessibility of the immobilized enzyme to the polysaccharide-xylan as a high molecular weight substrate.
A bacterium producing the extracellular mannanase and xylanase was isolated from Korean farm soil by successive subcultures in a minimal medium supplemented with palm kernel meal (PKM) and rice bran. The isolate YB-1106 showed 98% similarity with Microbacterium arabinogalactanolyticum on the basis of 16S rRNA gene sequences. The additional carbohydrates including locust bean gum (LBG) and PKM increased the mannanase productivity of the YB-1106, while the xylanase productivity of the isolate was increased by wheat bran, oat spelt xylan, rice bran and xylose. Particularly, maximum mannanase and xylanase activities were obtained in the culture filtrate of tryptic soy broth supplemented with 1% LBG or 2% wheat bran, respectively. Both enzyme activities were produced at stationary growth phase. The mannanase of culture supernatant was the most active at $50^{\circ}C$ and pH 6.0, while xylanase of culture supernatant was the most active at $55^{\circ}C$ and pH 6.5. The predominant products resulting from the mannanase or xylanase hydrolysis were oligosaccharides for LBG or xylan, respectively.
Streptomyces themocyaneovio-laceus producing the thermostable xylanase was used for the production of xylooligosaccharides from xylan. The optimal conditions for the xylanase production were investigated in jar fermentor, which operated at 2 vvm aera-tion and 400 rpm agitation speed at $50^{\circ}C$ for 24 h. The optimal reaction condtion for the production of xylooli-gosaccharides with xylanases which were prepared by the percipitation with ammonium sulfate were obtained by the reaction at $60^{\circ}C$ for 12 h in the mixture composed of 10% birchwood xylan in 50 mM sodium phosphate buffer (pH 6.0)and 10 unit/ml of xylanase. In this optimal condition for the xylooligosaccharides production the mixture of xylooligosaccharides (58.8 g/I) which were composed of 20.1 g/I of xyobiose, 8.9 g/I of xylotriose 4.5 g/I of xylotetraose 16.2g/I of xylopentaose and 9.1 g/I xylohexaose and 5.0 g/I of xylose was produced from 100 g/I of birchwood xylan by the xylanases of S thermocyaneoviolaceus .
Acetyl xylan esterase gene (AXE) from Aspergillus ficuum was cloned and its Pichia expression plasmid, pPICZ$\alpha$C-AXE (4.6 kb), was constructed, in which the AXE gene was under the control of the AOXI promoter and connected downstream of mating factor u-1 signal sequence. The plasmid linearized by Sacl was integrated into the 5'AOXI region of the chromosomal DNA of P. pastoris. In the flask batch culture of P. pastoris transformant on methanol medium, the cell concentration and total AXEase activity reached at 6.0 g-dry cell weight/1 and 77 unit/ml after 36 h cultivation, respectively. In the fed-batch culture employing the optimized methanol and histidine feeding strategy, the cell concentration and total AXEase activity were significantly increased to about 97 g-dry cell weight/1 and 930 unit/ml. Most of AXEase activity (>90%) was found in the extracellular medium and the majority of extracellular protein (>80%) was AXEase enzyme (33.5 kDa). This result means that about 9.8 g/1 of AXEase protein was produced in the extracellular medium.
To improve a new yeast strain capable of converting xylan to ethanol directly, we tried protoplast fusion between xylose fermenting yeast (Candida sp. X-6-41) and xylan assimilating yeast (Crypto-coccus sp. XB-33), finally selected the most promising two fusants (XFU-1 and XFU-2). As the optimum conditions for protoplast formation, the yeast cells were cultured to exponential phase in YPD and YPX containing 0.6M KCI, respectively, and then treated with zymolyase (0.25mg/$m\ell$), cellulase(4mg/$m\ell$) and 100mM 2-mercaptoethanol at pH 8 and 3$0^{\circ}C$. The protoplasts of parental auxotrophs were fused in the presence of 20mM CaCl$_2$and 40% polyethylene glycol(M.W.4000). The physiological and morphological characteristics of the fusants, such as assimilation of carbon sources, cell size, growth rate, xylanase activity and xylan fermentation ability were investigated. Xylanase activity of fusants that cultured in chemically minimal medium was higher than that of fusants that cultured in completed medium, because xylanase producing activity of xylose fermenting yeast(X-6-41) was inhibited by isoleucine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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