Renchinkhand, Renchinkhand;Bae, Hyoung Churl;Jeong, Seok Geun;Nam, Myoung Soo
Korean Journal of Agricultural Science
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v.39
no.4
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pp.561-568
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2012
The aim of this study was to introduce a simple method for isolation of ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin from cow's milk, and peptides produced by enzymatic hydrolysis of ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin with alcalase. Whey protein were precipitated from whey by ammonium sulfate and, ${\alpha}$-lactalbumin and ${\beta}$-lactoglobulin were isolated using Hi Prep 26/60 Sephacryl S-100 column gel filtration chromatography. Bovine serum albumin and ${\beta}$-lactoglobulin were isolated by Mono-Q 5/50 GL column anion exchange chromatography of the 50% Ammonium Sulfate-supernatant. Isolated whey proteins were hydrolyzed by proteolytic alcalase. Tricine SDS-PAGE and reverse-phase HPLC analyses revealed that almost hydrolyzed all the ${\alpha}$-lactalbumin, ${\beta}$-lactoglobulin and bovine serum albumin with alcalase. Molecular weight of various peptides derived from alcalase hydrolysate were small molecular weight than 3.5 kDa.
Whey proteins in milk were analyzed by polyacrylamide gel electrophoresis and compared with respect to electrophoregrams, densitograms and concentrations of whey proteins in raw and market milk classified according to 3 kinds of pasteurization by low temperature long time. high temperature short time and ultra-high temperature short time. Relative composition of major whey protein constituents such as bovine serum albumin, ${\alpha}\;-\;lactalbumin\;and\;{\beta}-lactoglobulin$ in raw milk were 3.71:11.44:84.85 and not affected by low temperature long time and high temperature short time pasteurization, even though there were the tendencies of some declining in the actual concentrations. But by ultra-high temperature short time pasteurization compositions of whey protein were changed to 0: 64.75: 35 in which reflected the disapprearance of bovine serum albumin and the extensive decrease of ${\beta}-lactoglobulin$. Storage of low temperature pasteurized milk at $5^{\circ}C$ resulted in a slight decrease of ${\alpha}\;-\;lactalbumin\;a\;{\beta}-lactoglobulin$, but storage at $25^{\circ}C$ did not make any changes until3rd days of storage. Most of whey proteins in high temperature short time pasteurized milk were not affected during storage at $5^{\circ}C\;and\;25^{\circ}C$, but bovine serum albumin and ${\alpha}\;-lactalbumin$ diminished in 2-3 days of storage. Whey proteins of milk treated with ultra-high temeperature were not affected during storage at $5^{\circ}C\;and\;25^{\circ}C$ except a slight decrease of ${\alpha}\;-lactalbumin$ in 2nd day of storage at $5^{\circ}C$.
${\alpha}$-lactalbumin and ${\beta}$-lactoglobulin in whey proteins were separated by high performance membrane chromatography (HPMC). The separation mechanism involved anion-exchange, and the stationary phase was anion CIM (Convective Interaction Media) DEAE, QA disk and cation exchanger SO$_3$(16${\times}$3 mm). Two types of mobile phase were used, buffer A (20 mM Tris-HCI, pH 7.3) and buffer B(buffer A + 1 M NaCl), As the amount of NaCl dissolved in buffer linearly increased, which enabled a gradient elution mode. The optimum mobile phase and operating condition (Buffer A/Buffer B = 100/0 - 30/70 vol%, gradient time 1 min, 30/70 - 10/90 vol.%, gradient time 2 min) were experimentally determined. In this experimental condition, ${\alpha}$-lacta1bumin, ${\beta}$-lactoglobulin were separated within 5 min at a mobile phase flow rate of 4 mL/min.
This experiment was carried out to study changes in solubility and emulsifying properties of whey protein. Whey protein hydrolysates were obtained from tryptic hydrolysis of whey protein concentrate at pH 8.0 and 37$^{\circ}C$ for 6 hours. Emulsifying activity of whey protein hydrolysate was highest at 4 hours of hydroysis and at 5.50% of DH. During hydrolysis of whey protein concentrate with trypsin, ${\alpha}$-lactalbumin was not easily broken down. But ${\beta}$-lactoglobulin was hydrolysed rapidly from the early stage of hydrolysis, producing several low molecular weight peptides, which have to participate in increasing emusifying activity. The solulbility of hydyolysates tended to increase depending on hydrolysis time; however, there was a gradual decrease after 5 hours. The hydrolysate had a minimum solubility near the isoelectric point range (pH 4∼5). The more hydrolysed the whey protein concentrates, the more soluble they are near the pl. They aye also more soluble above pH 6. Emulsifying activity of hydrolysates showed similar results to solubility. Creaming stability gradually increased when hydrolysis increased, increasing rapidly above pH 8 after 4 hours of hydrolysis.
Proceedings of the Membrane Society of Korea Conference
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1994.10a
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pp.72-73
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1994
Whey는 일명 lactoserum 이라고도 하며 치즈제조시 우유를 응고시키는 과정에서 Casein과 지방으로부터 분리되어 나오는 액상의 부산물로 본래 우유 부피의 약 90%를 차지하며, 용해성 단백질, 유당, 비타민과 무기질 등을 함유하고 있다. 유청에 함유되어 있는 단백질은 건조고형분의 약 13%가 되는데, 주요 단백질은 $\beta$-lactoglobulin(50%), $\alpha$-lactalbumin(22%), Serum albumin(5%), Immunoglobulin(12%), Proteose-peptone(10%) 등이 있다. 유청단백질중 가장 많이 함유되어 있는 $\beta$-lactoglobulin은 구형의 단백질로 단량체의 분자량은 약 18,400이며, pH 3.5~7 범위내에서는 해리되지 않는 이량체(dimer)를 형성한다. pH 3.5 이하에서 이량체는 해리되고 다량체의 형성으로 재평성한다. pH 7.0 이상의 알칼리 영역에서는 Conformational Change가 일어나는 것으로 알려져 있으며, 등전점(isoelectric point)은 pH 5.2이다. $\alpha$-lactalbumin은 14,200의 분자량을 가지는 구형의 단백질로 등전점은 pH 4.8이다.
This study was carried out to evaluate the effect of whey protein concentrate-80%(WPC-80) and whey protein isolate(WPI) on the growth of B. bifidum Bb-11. Whey proteins($\alpha$-lactalbumin, $\beta$-lactoglobulin) were digested with trypsin, then their hydrolyzates were separated into three fractions (>10,000Da, 3,000∼10,000Da, <3,000Da) by two-step ultrafiltration process with Centriprep 10 and Centricon-30. These three fractions by molecular weight were evaluate growth-promoting effects for the B. bifidum Bb-11. The results obtained were summarized as follows; The growth rate of B. bifidum Bb-11 tended to increase by supplementation of WPC-80 to basal medium, but decreased by supplementation of WPI. Two whey proteins were hydrolyzed by trypsin at 40$\^{C}$ for 6 hrs, and three fractions were collected by UF treatment and concentrated by Centricon-30. Collected concentrations of protein of F-I and F-II and F-III from $\alpha$-lactalbumin were 11.53mg, 7.79mg, and 5.21 mg and those of protein from $\beta$-lactoglobulin were 4.13mg, 5.30mg, and 9.351mg, respectively. Three fractions of $\alpha$-lactalbumin hydrolyzates promoted the growth rate of B. dbifidum Bb-11. Growth promoting activities of hydrolyzates(F-I and F-II) with molecular weight below 10,000Da were stronger than that of hydrolyzate(F-III) above 10,000Da. However, there was no significant difference between the hydrolyzate F-I and F-II. Three fractions of $\beta$-lactoglobulin hydrolyzates improves the growth rate of B.bifidum Bb-ll. The growth of B.bifidum Bb-ll was decreased after 24 hr incubation by supplementation of either F-II or F-III fraction compared to basal Whey medium, but maintained the enhancement by supplementation of F-I.
The selective extraction behavior of lactoferrin (Lf) from whey protein mixture was examined using reverse micelles formed by the cationic surfactant, cetyldimethylammonium bromide (CDAB). The major whey proteins, including ${\beta}$-lactoglobulin, ${\alpha}$-lactalbumin and bovine serum albumin, were solubilized from aqueous phase to organic phase while Lf was recovered in the aqueous phase. The solubilization behaviors of the proteins were manipulated by the process parameters such as the pH and salt concentration of the aqueous phase and the surfactant concentration in the organic phase. Efficient forward extraction was achieved with sodium borate buffer (50 mM, pH 9) containing 50 mM KCl and organic phase containing 100 mM CDAB. Based on SDS-PAGE and densitometry, about 96% of the initial Lf remained in the aqueous phase after forward extraction. The dialyzed Lf fully maintained its bacteriostatic activity against E. coli O157:H7.
Bovine serum albumin(BSA), $\alpha$-lactalbumin($\alpha$-LA), $\beta$-lactoglobulin($\beta$-LG) and bovine immunoglobulin G (IgG) were investigated the cytotoxicity on tumor cell lines. $\alpha$-LA was showned a tendency of dose dependaent on cytotoxicity using WiDr. The growth of WiDr was inhibited 82% by 1mg/ml of $\alpha$-LA. However, IgG, BSA and $\beta$-LG were not shown the cytotoxicity on WiDr. When $\alpha$-LA was purified by using high pressure liquid chromatography(HPLC), the main component($\alpha$-LA) was eluted at 33.057 min and extremely small quantities eluted at 32.310 min. The cytotoxicity of main component (eluted at 33.057 min peak) was lower than commercial $\alpha$-LA. And the cytotoxic activity of hydrolyzed $\alpha$-LA and $\alpha$-LA treated with EDTA were lower than commercial $\alpha$-LA on tumor cells.
Ha, Woel-Kyu;Juhn, Suk-Lak;Kim, Jung-Wan;Lee, Soo-Won;Lee, Jae-Young;Shon, Dong-Hwa
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.26
no.4
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pp.436-441
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1994
To investigate the lowering effects of in vitro enzymatic hydrolysis by the treatment of chymotrypsin, trypsin, pancreatin, or protease from Aspergillus oryzae on the antigenicity of whey protein isolate (WPI) against rabbit anti ${\alpha}-LA$ antiserum, competitive inhibition ELISA (cELISA) and passive cutaneous anaphylaxis (PCA) test using guinea pig were performed. The results of cELISA showed that the monovalent antigenicity of the whey protein hydrolysates (WPH) to the antiserum was decreased to $10^{-2.5}-10^{-5.5}$ and less by the hydrolysis. The monovalent antigenicity of the WPH hydrolyzed by trypsin, or protease from Asp. nryzae was much lowered by the pretreatment of heat denaturation. The antigenicity of the WPH hydrolyzed by chymotrypsin, trypsin, or pancreatin was much lowered by the pretreatment of pepsin. Especially, the antigenicity of TDP (trypic hydrolysate with pretreatment of heat and pepsin) was found almost to be removed. However, there was not consistency between degree of hydrolysis(DH) and the monovalent antigenicity of the WPH. By the heterologous PCA it was found that all of the PGPH lost the polyvalent antigenicity regardless of the pretreatments although WPI and ${\alpha}-LA$ had the positive high antigenicity. The results suggested that the peptides derived from ${\alpha}-LA$ in WPH could bind specific antibodies but they could not induce allergy. Therefore, it was elucidated that the allergenicity of ${\alpha}-LA$ in whey protein could be destroyed easily by the enzymatic hydrolysis.
Jeewanthi, Renda Kankanamge Chaturika;Kim, Myeong Hee;Lee, Na-Kyoung;Yoon, Yoh Chang;Paik, Hyun-Dong
Food Science of Animal Resources
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v.37
no.1
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pp.62-70
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2017
The aim of this study was identifying a suitable food grade enzymes to hydrolyze whey protein concentrates (WPCs), to give the highest bioactivity. WPCs from ultrafiltration retentate were adjusted to 35% protein (WPC-35) and hydrolyzed by enzymes, alcalase, ${\alpha}-chymotrypsin$, pepsin, protease M, protease S, and trypsin at different hydrolysis times (0, 0.5, 1, 2, 3, 4, and 5 h). These 36 types of hydrolysates were analyzed for their prominent peptides ${\beta}-lactoglobulin$ (${\beta}-Lg$) and ${\alpha}-lactalbumin$ (${\alpha}-La$), to identify the proteolytic activity of each enzyme. Protease S showed the highest proteolytic activity and angiotensin converting enzyme inhibitory activity of IC50, 0.099 mg/mL (91.55%) while trypsin showed the weakest effect. Antihypertensive and antioxidative peptides associated with ${\beta}-Lg$ hydrolysates were identified in WPC-35 hydrolysates (WPH-35) that hydrolyzed by the enzymes, trypsin and protease S. WPH-35 treated with protease S in 0.5 h, responded positively to usage as a bioactive component in different applications of pharmaceutical or related industries.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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