In April 2009, the H1N1 pandemic influenza virus emerged as a novel influenza virus. The aim of this study was to compare the performances of several molecular assays, including conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), two real-time reverse transcription (rRT)-PCRs, and two multiplex RTPCRs. A total of 381 clinical specimens were collected from patients (223 men and 158 women), and both the Seeplex RV7 assay and rRT-PCR were ordered on different specimens within one week after collection. The concordance rate for the two methods was 87% (332/381), and the discrepancy rate was 13% (49/381). The positive rates for the molecular assays studied included 93.1% for the multiplex Seeplex RV7 assay, 93.1% for conventional reverse transcription (cRT)-PCR, 89.7% for the multiplex Seeplex Flu ACE Subtyping assay, 82.8% for protocol B rRT-PCR, and 58.6% for protocol A rRT-PCR. Our results showed that the multiplex Seeplex assays and the cRT-PCR yielded higher detection rates than rRT-PCRs for detecting the influenza A (H1N1) virus. Although the multiplex Seeplex assays had the advantage of simultaneous detection of several viruses, they were time-consuming and troublesome. Our results show that, although rRT-PCR had the advantage, the detection rates of the molecular assays varied depending upon the source of the influenza A (H1N1)v virus. Our findings also suggest that rRT-PCR sometimes detected virus in extremely low abundance and thus required validation of analytical performance and clinical correlation.
Background: In the present study, we evaluated four commonly used housekeeping genes, viz., actin-β, elongation factor-1α (EF1α), acidic ribosomal protein (ARP), and glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) as internal references for quantitative analysis of immune genes in nervous necrosis virus (NNV)-infected seven-band grouper, Hyporthodus septemfasciatus. Methods: Expression profiles of the four genes were estimated in 12 tissues of healthy and infected seven-band grouper. Expression stability of the genes was calculated using the delta Ct method, BestKeeper, NormFinder, and geNorm algorithms. Consensus ranking was performed using RefFinder, and statistical analysis was done using GraphpadPrism 5.0. Results: Tissue-specific variations were observed in the four tested housekeeping genes of healthy and NNV-infected seven-band grouper. Fold change calculation for interferon-1 and Mx expression using the four housekeeping genes as internal references presented varied profiles for each tissue. EF1α and actin-β was the most stable expressed gene in tissues of healthy and NNV-infected seven-band grouper, respectively. Consensus ranking using RefFinder suggested EF1α as the least variable and highly stable gene in the healthy and infected animals. Conclusions: These results suggest that EF1α can be a fairly better internal reference in comparison to other tested genes in this study during the NNV infection process. This forms the pilot study on the validation of reference genes in Hyporthodus septemfasciatus, in the context of NNV infection.
Journal of the Korea Institute of Military Science and Technology
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v.20
no.5
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pp.726-732
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2017
Bacillus anthracis, Vibrio cholerae, Variola virus and Shigella dysenteriae are classified as category A and B biological weapons. In this study suggest that 4 genes of Bacillus anthracis, 2 genes of Vibrio cholerae, 1 gene of Variola virus and 1 gene of Shigella dysenteriae were detective 50~500 fg of target DNA per reaction using real-time PCR based assay. Also analytical specificity did not show any cross-reactivity with other related bacteria. Reliable and one reaction could be effective early diagnostic and treatment for detection of unknown samples.
Kim, In-Seop;Park, Yong-Woon;Woo, Hang-Sang;Chong E. Chang;Lee, Soungmin
Journal of Microbiology
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v.38
no.3
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pp.187-191
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2000
A validation study was conducted to determine the efficacy of solvent/Detergent (S/D) inactivation and Q-Sepharose column chromatographic removal of the human immunodeficiency virus (HIV) during the manufacturing of a high purity antihemopilic factor VIII (GreenMono) from human plasma. S/D treatment using the organic solvent, tri (n-butyl) phosphate, and the detergent, Trition X-100, was a robust and effective step in eliminating HIV-1. The HIV-1 titer was reduced from an initial titer of 8.3 log10 TCID50 to undetectable levels within one minute of S/D treatment, HIV-1 was effectively partitioned form factor VIII during Q-Sepharose column chromatography with the log reduction factor of 4.1 . These results strongly assure the safety of GreenMono From HIV.
Bovine blood, cell, tissue, and organ are used as raw materials for manufacturing biologics such as biopharmaceuticals, tissue-engineered products, and cell therapy. Manufacturing processes for the biologics have the risk of viral contamination. Therefore viral validation is essential in ensuring the safety of the products. Bovine parainfluenza virus type 3 (BPIV3) is one of the common bovine pathogens and has widely been known as a contaminant of biologics. In order to establish the validation system for the BPIV3 safety of biologics, a real-time RT-PCR method was developed for quantitative detection of BPIV3 contamination in raw materials, manufacturing processes, and final products. Specific primers for amplification of BPIV3 RNA was selected, and BPIV3 RNA was quantified by use of SYBR Green I. The sensitivity of the assay was calculated to be 2.8 $TCID_{50}/mL$. The real-time RT-PCR method was validated to be reproducible and very specific to BPIV3. The established real-time RT-PCR assay was successfully applied to the validation of Chinese hamster ovary (CHO) cell artificially infected with BPIV3. BPIV3 RNA could be quantified in CHO cell as well as culture supernatant. Also the real-time RT-PCR assay could detect 7.8 $TCID_{50}/mL$ of BPIV3 artificially contaminated in bovine collagen. The overall results indicated that this rapid, specific, sensitive, and robust assay can be reliably used for quantitative detection of BPIV3 contamination during the manufacture of biologics.
This study was conducted to monitor the prevalence of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV), nervous necrosis virus (NNV) and marine birnavirus (MABV) in cultured walleye pollock Gadus chalcogrammus by RT-PCR. All of the viruses tested were not detected by one-step PCR in 62 spleen sample sets, except for NNV in one brain sample set (1/55). By two-step PCR, VHSV was detected in 51.6%(32/62) and NNV was detected in 1.6%(1/62) spleen sample set, but MABV was not detected. In the brain sample sets, the detection rate of NNV was 3.6%(2/55). VHSV and NNV were detected for the first time in cultured walleye pollock in this study. However, the titers of viruses in these sample sets are thought to be very low, because most of the positive sample sets were detected by two-step PCR and none of the fish showed any clinical symptoms of each virus. Continuous monitoring, subsequent virus isolation and validation of carrier fish will be necessary.
Kim, In-Seop;Park, Yong-Woon;Lee, Sung-Rae;Lee, Mahl-Soon;Huh, Ki-Ho;Lee, Soungmin
Journal of Microbiology
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v.39
no.1
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pp.67-73
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2001
A validation study was conducted to evaluate the efficacy and mechanism of the cryo-precipitation, monoclonal anti-FVIIIc antibody (mAb) chromatography, Q-Sepharose chromatography, and lyophilization steps involved in the manufacture of high purity factor VIII (GreenMono) from human plasma, in the removal and/or inactivation of hepatitis A virus (HAV). Samples from the relevant stages of the production process were spiked with HAV and subjected to scale-down processes mimicking the manufacture of the high purity factor VIII concentrate. Samples were collected at each step and immediately titrated using a 50% tissue culture infectious dose (TCID$\_$50/) and then the virus reduction factors were evaluated. HAV was effectively partitioned from factor VⅢ during cryo-precipitation with the log reduction factor of 3.2. The mAb chromatography was the most effective step far removal of HAV with the log reduction factor of $\geq$4.3. HAV infectivity was not detected in the fraction of factor VⅢ, while most of HAV infectivity was recovered in the fractions of flow through and wash during mAb chromatography. Q-Sepharose chromatography showed the lowest efficacy for partitioning HAV with the log reduction factor of 0.7. Lyophilization was an effective step in inactivating HAV with the log reduction factor of 2.3. The cumulative lag reduction factor, $\geq$10.5, achieved for tile entire manufacturing process was several magnitudes greater than the potential HAV load of current plasma pools.
Chikungunya fever is an arboviral disease caused by the Chikungunya virus (CHIKV). The disease has similar clinical manifestations with other acute febrile illnesses which complicates differential diagnosis in low-resource settings. We aimed to develop a rapid test for CHIKV detection based on the nucleic acid lateral flow immunoassay technology. The system consists of a primer set that recognizes the E1 region of the CHIKV genome and test strips in an enclosed cassette which are used to detect amplicons labeled with FITC/biotin. Amplification of the viral genome was done using open-source PCR, a low-cost open-source thermal cycler. Assay performance was evaluated using a panel of RNA isolated from patients' blood with confirmed CHIKV (n = 8) and dengue virus (n = 20) infection. The open-source PCR-NALFIA platform had a limit of detection of 10 RNA copies/ml. The assay had a sensitivity and specificity of 100% (95% CI: 67.56% - 100%) and 100% (95% CI: 83.89% - 100%), respectively, compared to reference standards of any positive virus culture on C6/36 cell lines and/or qRT-PCR. Further evaluation of its performance using a larger sample size may provide important data to extend its usefulness, especially its utilization in the peripheral healthcare facilities with scarce resources and outbreak situations.
Kim, Dong-Myong;Kang, Ho-Chang;Cha, Hyung-Joon;Bae, Jung Eun;Kim, In Seop
Korean Journal of Microbiology
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v.52
no.2
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pp.140-147
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2016
A process for manufacturing virally-safe porcine bone hydroxyapatite (HA) has been developed to serve as advanced xenograft material for dental applications. Porcine bone pieces were defatted with successive treatments of 30% hydrogen peroxide and 80% ethyl alcohol. The defatted porcine bone pieces were heat-treated in an oxygen atmosphere box furnace at $1,300^{\circ}C$ to remove collagen and organic compounds. The bone pieces were ground with a grinder and then the bone powder was sterilized by gamma irradiation. Morphological characteristics such as SEM (Scanning Electron Microscopy) and TEM (Transmission Electron Microscopy) images of the resulting porcine bone HA (THE Graft$^{(R)}$) were similar to those of a commercial bovine bone HA (Bio-Oss$^{(R)}$). In order to evaluate the efficacy of $1,300^{\circ}C$ heat treatment and gamma irradiation at a dose of 25 kGy for the inactivation of porcine viruses during the manufacture of porcine bone HA, a variety of experimental porcine viruses including transmissible gastroenteritis virus (TGEV), pseudorabies virus (PRV), porcine rotavirus (PRoV), and porcine parvovirus (PPV) were chosen. TGEV, PRV, PRoV, and PPV were completely inactivated to undetectable levels during the $1,300^{\circ}C$ heat treatment. The mean log reduction factors achieved were $${\geq_-}4.65$$ for TGEV, $${\geq_-}5.81$$ for PRV, $${\geq_-}6.28$$ for PRoV, and $${\geq_-}5.21$$ for PPV. Gamma irradiation was also very effective at inactivating the viruses. TGEV, PRV, PRoV, and PPV were completely inactivated to undetectable levels during the gamma irradiation. The mean log reduction factors achieved were $${\geq_-}4.65$$ for TGEV, $${\geq_-}5.87$$ for PRV, $${\geq_-}6.05$$ for PRoV, and $${\geq_-}4.89$$ for PPV. The cumulative log reduction factors achieved using the two different virus inactivation processes were $${\geq_-}9.30$$ for TGEV, $${\geq_-}11.68$$ for PRV, $${\geq_-}12.33$$ for PRoV, and $${\geq_-}10.10$$ for PPV. These results indicate that the manufacturing process for porcine bone HA from porcine-bone material has sufficient virus-reducing capacity to achieve a high margin of virus safety.
SoEun Eom;Taechul Park;Kimoon Son;Jiwon Jeong;Jung-Joon Park
Korean journal of applied entomology
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v.62
no.4
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pp.299-305
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2023
Bemisia tabaci is one of polyphagous insect pests that transmits Tomato Yellow Leaf Curl Virus (TYLCV) and Cassava Brown Streak Disease (CBSD). Insecticides are primarily applied to control B. tabaci, but it has limits due to the development of resistance. As a result, a fixed precision sampling plan was developed for its integrated pest management (IPM). The tomato plants were divided into top (more than 130cm from the ground), middle (70 cm to 100 cm above the ground), and bottom (50 cm or less above the ground) strata, before visual sampling of the larvae of B. tabaci. The spatial distribution analysis was conducted using Taylor's power law coefficients with pooled data of top, middle, bottom strata. Fixed precision sampling plan and control decision-making were developed with precision levels and action threshold recommended from published scientific papers. To assess the validation of the developed sampling plans, independent data not used in the analysis were evaluated using the Resampling Validation for Sampling Plan (RVSP) program.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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