In vitro antimicrobial activities of hot water extracts of Chamaecyparis obtuse, for methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) was compared to commonly used conventional antimicrobial agents. All MRSA was susceptible to linezolid or vancomycin, but also to erythromycin. MIC range and MIC90 to erythromycin, clindamycin, levofloxacin, tetracycline for MRSA were each 4 ㎍/mL, 2 ~ >128 ㎍/mL, ≤0.06 ~ >128 ㎍/mL, 0.25 ~ >128 ㎍/mL, 0.25~64 ㎍/mL and 4 ㎍/mL, .128 ㎍/mL, >128 ㎍/mL, >128 ㎍/mL, 64 ㎍/mL. The hot water extracts of leaf of C. obtuse had the lowest MIC range, MIC50, and MIC90 (0.125 µL/mL) for the MRSA tested, and it was possible more potent than various conventional antimicrobial agents. Screen antibacterial drug candidate with high antibacterial activity such as derivatives of C. obtuse leaf extract such as terpinen-4-ol or using combined therapy with commercialized antibacterial agents will likely be helpful in treating refractory MRSA infections.
We isolated marine actinomycetes, strain D-5 which produces anti-methicillin resistant Staphylococcus aureus (anti-MRSA) compound. Streptomyces sp. D-5 relatively grew well in the 20~25℃, pH 8.0, and NaCl 3.0%. The ethyl acetate extract of D-5 culture was separated by C18 ODS open column and reverse phase HPLC to yield anti-MRSA compound. The molecular weight of this compound was determined to be 898 by a Liquid chromatograph-mass spectrometer (LC-MS). Compared with penicillin G, this compound showed significant anti-MRSA activity. It also exhibited an inhibition zone of 26 mm at a concentration of 64 ㎍/disk and an inhibition zone of 16 mm at a concentration of 16 ㎍/disk against the MRSA KCCM 40511. Furthermore, the co-treatment of HPLC peak 5 compound and vancomycin caused a more rapid decrease in MRSA cells than each compound alone. It showed 86.8% growth inhibition activity within 12 hours at a low concentration of 50 ㎍/mL during co-treatment, and 97.1% growth in-hibition activity within 48 hours against MRSA KCCM 40511. Taken together, our results suggest that Streptomyces sp. D-5 and its anti-MRSA compound could be employed as a potent agent in MRSA infection.
The intestinal microbiota are important to the host with regard to resistance they impart against bacterial infections and their involvement in mediating metabolic functions. Lactic acid producing bacteria such as Lactobacillus play an important physiological role in these matters. The aim of the present study was to isolate Lactobacillus sp. that inhibits enteric pathogens. Initially, 17 isolates from healthy Koreans were collected on Lactobacillus selective medium. Resistance of the isolates to antibiotics including rifampicin, streptomycin, clindamycin and vancomycin was measured. One of the isolate was identified as Lactobacillus ruminus on the basis of bacterial cell morphology, cultural characteristic and biochemical characteristics, 16S rRNA sequence analysis and PCR-RAPD. Antimicrobial activity of the bacterium against Vancomycin Intermediate Resistant Staphylococcus aureus (VISA) and Vancomycin-Resistant Enterococci (VRE) was measured. About $10^4$ cells of VISA or VRE were mixed with 1, 5, and 9 mL of L. ruminus SPM 0211 and the final volume was adjusted to 10 mL with brain heart infusion (BHI) broth. The cell suspension was incubated for 3, 6, 9, and 24 h, serially diluted and then plated on BHI agar plates. As numbers of L. ruminus SPM 0211 were increased, viable cell count of VISA and VRE decreased. The strongest antimicrobial activity of SPM 0211 was observed after 9 h incubation in any mixture, almost completely inhibiting the growth of these two bacteria. The results suggest that the freshly isolated L. ruminus SPM 0211 may be used as a pro-biotic microbe that prevents the colonization of enteric pathogens and can thereby promote good gastrointestinal health.
A 36-year-old man, who had undergone thoracoscopic anterior spinal fusion using the plate system and posterior screw fusion three months previously, presented to our hospital with left flank pain and fever. Computed tomography indicated the presence of a psoas muscle abscess. However, after two days of percutaneous catheter drainage, a mycotic abdominal aortic pseudoaneurysm was detected via computed tomography. We performed in situ revascularization using a prosthetic graft with omental wrapping. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus was identified on blood and pus culture, and systemic vancomycin was administered for one month. Although the abscess recurred, it was successfully treated with percutaneous catheter drainage and systemic vancomycin administration for three months, without the need for instrumentation removal. The patient remained asymptomatic throughout two years of follow-up.
Purpose: This study was conducted to identify factors influencing compliance of multidrug-resistant organism infection control in intensive care units (ICU) nurses. Methods: Data were collected from 254 ICU nurses who were working at 6 general and advanced general hospitals in D city and G Province. Results: 77.2% and 84.4% of the subjects correctly answered to questions about Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus (MRSA) and Vancomycin-Resistant Enterococcus (VRE), respectively. The scores of MRSA infection control compliance and VRE infection control compliance were 3.41 and 3.43, respectively. The factors influencing MRSA infection control compliance were empowerment, environmental safety recognition, and education satisfaction, which explained 30% of MRSA infection control compliance. The factors significantly related to VRE infection control compliance were empowerment, hospital types, environmental safety recognition, number of education sessions, and neonatal ICU, which explained 37% of VRE infection control compliance. Conclusion: It is necessary to develop efficient educational programs for infection control including educational contents to improve empowerment and environmental safety recognition of nurses. Furthermore, administrative support for those infection control programs is also necessary.
${\beta}$ Ketoacyl acyl carrier protein synthase III (KAS III) initiates fatty acid synthesis in bacteria and is a key target enzyme to overcome the antibiotic resistance problem. In our previous study, we found flavonoid inhibitors of Enterococcus faecalis KAS III and proposed three potent antimicrobial flavonoids against Enterococcus faecalis and Vancomycin-resistant Enterococcus faecalis with MIC values in the range of 128-512 ${\mu}g/mL$ as well as high binding affinities on the order from $10^6$ to $10^7\;M^{-1}$. Using these series of flavonoids, we conducted biological assays as well as docking study to find potent flavonoids inhibitors of Staphylococcus aureus KAS III with specificities against Staphylococcus aureus and Methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Here, we propose that naringenin (5,7,4'-trihydroxyflavanone) and eriodictyol (5,7,3',4'-tetrahydroxyflavanone) are potent antimicrobial inhibitors of Staphylococcus aureus KAS III with binding affinity of $3.35{\times}10^5$ and $2.01{\times}10^5\;M^{-1}$, respectively. Since Arg38 in efKAS III is replaced with Met36 in saKAS III, this key difference caused one hydrogen bond missing in saKAS III compared with efKAS III, resulting in slight discrepancy in their binding interactions as well as decrease in binding affinities. 4'-OH and 7-OH of these flavonoids participated in hydrogen bonding interactions with backbone carbonyl of Phe298 and Ser152, respectively. In particular, these flavonoids display potent antimicrobial activities against various MRSA strains in the range of 64 to 128 ${\mu}M$ with good binding affinities.
Staphylococcus aureus is a major cause of nosocomial infections and is one of the most commonly isolated bacterial species in the hospital and continues to be an important pathogen in both community and hospital-acquired infection. Methicillin resistant S. aureus (MRSA), which is associated with hospitals is now being isolated in the community. The purpose of this study is to investigate the carrier rate of S. aureus in the community, antibiotic resistance patterns of the organism, detection of MRSA and mecA gene in MRSA. Ninety strains $(46.4\%)$ of S. aureus were isolated from the nasal specimens of 194 elementary school students. Eighty-nine strains $(98.9\%)$ of 90 S. aureus were resistant to penicilin, 36 strains $(40.0\%)$ to erythromycin, 14 strains $(15.6\%)$ to fusidic acid, 11 strains $(12.2\%)$ to gentamycin, 9 strains $(10.0\%)$ to tobramycin, 5 strains $(5.6\%)$ to oxacillin, 4 strains $(4.4\%)$ to clindamycin, 2 strains $(2.2\%)$ to tetracycline, 1 strains $(1.1\%)$ to fosfomycin. None of $90(0\%)$ S. aureus isolates was resistant to ciprpfloxacin, trimethoprim/sulfamethoxazole, levofloxacin, linezolid, moxifloxacin, nitrofurantoin, norfloxacin, rifampicin, quinupristin/dalfopristin, teicoplanin, and vancomycin. Five strains $(5.6\%)$ of 90 S. aureus isolates were MRSA. The mecA gene was detected from five MRSA strains by PCR.
The objectives of this study were: i) to detect the presence of Staphylococcus aureus and methicillin-resistant S. aureus (MRSA) in raw milk, cheese, beef minced meat, and chicken meat samples; ii) to evaluate the antimicrobial susceptibility of the isolates; and iii) to determine clonal relation among the isolates by using pulsed-field gel electrophoresis (PFGE) method. Therefore, a total of 160 food samples were randomly collected between August 2014 and May 2015 in Hatay province, located in the southern Turkey. Twenty (12.5%) of the samples were found to be contaminated with S. aureus. A total of 40 isolates from the 20 positive samples were confirmed to be S. aureus by multiplex PCR based on 16S rRNA and nuc gene. The mec A gene was not detected in any of the S. aureus strains. In the present study, 39 out of 40 (97.5%) isolates were found to be resistant to one or more antibiotics. All of isolates were susceptible to gentamicin, oxacillin, and vancomycin. The highest resistance rate was detected in penicillin (95%) and ampicillin (92.5%), followed by tetracycline (30%), erythromycin (20%), ciprofloxacin (12.5%). Nine major patterns were determined by PFGE. In 6 of these patterns, thirty-six strains (90%) had identical PFGE profiles.
van den Honert, Michaela Sannettha;Gouws, Pieter Andries;Hoffman, Louwrens Christiaan
Food Science of Animal Resources
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v.41
no.1
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pp.135-144
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2021
This study determined the antibiotic resistance patterns of Escherichia coli and Staphylococcus aureus from the raw meat and feces of three game species from three different farms across South Africa. The Kirby-Bauer disk diffusion method was used according to the Clinical and Laboratory Standards Institute 2018 guidelines. E. coli was tested against ampicillin, ceftazidime, chloramphenicol, streptomycin, sulphafurazole and tetracycline. S. aureus was tested against tetracycline, erthromycin, vancomycin, penicillin, oxacillin and cefoxitin. There were no significant differences in the E. coli antibiotic resistance profiles between the meat and fecal samples (except towards ceftazidime where 5% of the meat isolates were resistant and 0% of the fecal isolates). The S. aureus meat isolates showed high (75%) resistance towards penicillin and on average, 13% were resistant to oxacillin/ cefoxitin, indicating methicillin resistance. The results from this study indicate that there is incidence of antibiotic resistant bacteria from the feces and meat of wildlife species across South Africa, suggesting that cross contamination of the meat occurred during slaughter by antibiotic resistant bacteria from the abattoir personnel or equipment and or from carcass fecal matter. In addition, the results highlight the importance of food safety and hygiene procedures during slaughter to prevent cross-contamination of antibiotic resistant bacteria, as well as pathogens, onto raw meat.
Multiplex-PCR protocols were designed in order to make a rapid identification of MRSA. MecA, femB, and 165 rRNA genes were amplified for making a detection of MRSA. The incidence of MRSA in the clinical isolates of Staphylococcus aureus was examined by using a multiplex-PCR assay. The mecA gene was detected in 266 strains out of 336 clinical isolates of S. aureus, thus the incidence of MRSA was approximately 76.5%. The MRSAs of 247 strains (96.1%) showed resistance to more than eight species of the antimicrobial agents tested. The isolates of MRSA showed 27 different antimicrobial-resistant patterns. The results indicate that many different MRSA strains having high multidrug resistance are actually prevalent in Korea. Also, VISA was screened from the MRSA. Two strains were grown on the BHI agar plate supplemented with $8\;\mu\textrm{g}/ml$ of vancomycin at a frequency of $1/10^8$ colony forming units or higher.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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