Our previous study revealed a novel role of Fas-associated death domain-containing protein (FADD) in islet development and insulin secretion. Insulin-degrading enzyme (IDE) is a zinc metalloprotease that selectively degrades biologically important substrates associated with type 2 diabetes (T2DM). The current study was designed to investigate the effect of FADD phosphorylation on IDE. We found that the mRNA and protein levels of IDE were significantly downregulated in FADD-D mouse livers compared with control mice. Quantitative real-time polymerase chain reaction analysis showed that FADD regulates the expression of IDE at the transcriptional level without affecting the stability of the mRNA in HepG2 cells. Following treatment with cycloheximide, the IDE protein degradation rate was found to be increased in both FADD-D primary hepatocytes and FADD-knockdown HepG2 cells. Additionally, IDE expression levels were reduced in insulin-stimulated primary hepatocytes from FADD-D mice compared to those from control mice. Moreover, FADD phosphorylation promotes nuclear translocation of FoxO1, thus inhibiting the transcriptional activity of the IDE promoter. Together, these findings imply a novel role of FADD in the reduction of protein stability and expression levels of IDE.
Background: The most common incident cancer and cause of cancer-related deaths in women is breast cancer. The Myc gene is upregulated in many cancer types including breast cancer, and it is considered as a potential anti-cancer drug target. The present study was conducted to evaluate the Myc (gene and protein) expression pattern in an experimental mammary tumour model in rats. Materials and Methods: Thirty six Sprague Dawley rats were divided into: Experimental group (26 animals), which received the chemical carcinogen N-methyl nitrosourea (MNU) and a control group (10 animals), which received vehicle only. c-Myc oncoprotein and its mRNA expression pattern were evaluated using immunohistochemistry (IHC) and semi-quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR), respectively, in normal rat mammary tissue and mammary tumours. The rat glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) gene was used as internal control for semi-quantitative RT-PCR. Results: Histopathological examination of mammary tissues and tumours from MNU treated animals revealed the presence of premalignant lesions, benign tumours, in situ carcinomas and invasive carcinomas. Immunohistochemical evaluation of tumour tissues showed upregulation and heterogeneous cellular localization of c-Myc oncoprotein. The expression levels of c-Myc oncoprotein were significantly elevated (75-91%) in all the tumours. Semi-quantitative RT-PCR revealed increased expression of c-Myc mRNA in mammary tumours compared to normal mammary tissues. Conclusions: Further large-scale investigation study is needed to adopt this experimental rat mammary tumour model as an in vivo model to study anti-cancer strategies directed against Myc or its downstream partners at the transcriptional or post-transcriptional level.
Alginate and alginate-derived oligomannuronate enhanced penicillin production in shake flask and fermentor cultures of Penicillium chrysogenum Wis 54-1255 (containing a single copy of the penicillin gene cluster) and in the high producter strain P. chrysogenum AS-P-99 (containing multiple copies of the penicillin gene cluster). Alginate was not used as a single carbon source by P. chryogenum. The stimulatory effect on penicillin production was observed in a defined medium and, to a lower extent, in a complex production medium containing corn steep liquor. Alginate-supplemented cells showed higher transcript levels of the three penicillin biosynthetic genes, pcbAB, pcbC, and penDE, than cells grown in the absence of alginate. The promoters of the pcbAB, pcbC, and penDE genes were coupled to the reporter lacZ gene and introduced as monocopy constructions in P. chrysogenum Wis 54-1225 npe10 by targeted integration in the pyrG locus; the reporter ${\beta}$-galactosidase activity expressed from the three promoters was stimulated by alginate added to the culture medium of the transformants. These results indicate that the stimulation of penicillin production by alginate was derived from an increase in the transcriptional activity of the penicillin biosynthesis genes. The induction by alginate of the transcription of the three penicillin biosynthetic genes is good example of the coordinated induction of secondary metabolism genes by elicitors of plant (or microbial) origin.
Background: Metal-responsive transcription factor-1 (MTF-1) is a key transcriptional regulator playing crucial roles in metal homeostasis and cellular adaptation to diverse oxidative stresses. In order to understand cellular pathways associated with metal regulation and stress responses in Pacific abalone (Haliotis discus hannai), this study was aimed to isolate the genetic determinant of abalone MTF-1 and to examine its expression characteristics under basal and experimentally stimulated conditions. Results: The abalone MTF-1 shared conserved features in zinc-finger DNA binding domain with its orthologs; however, it represented a non-conservative shape in presumed transactivation domain region with the lack of typical motifs for nuclear export signal (NES) and Cys-cluster. Abalone MTF-1 promoter exhibited various transcription factor binding motifs that would be potentially related with metal regulation, stress responses, and development. The highest messenger RNA (mRNA) expression level of MTF-1 was observed in the testes, and MTF-1 transcripts were detected during the entire period of embryonic and early ontogenic developments. Abalone MTF-1 was found to be Cd inducible and highly modulated by heat shock treatment. Conclusion: Abalone MTF-1 possesses a non-consensus structure of activation domains and represents distinct features for its activation mechanism in response to metal overload and heat stress. The activation mechanism of abalone MTF-1 might include both indirect zinc sensing and direct de novo synthesis of transcripts. Taken together, results from this study could be a useful basis for future researches on stress physiology of this abalone species, particularly with regard to heavy metal detoxification and thermal adaptation.
The expression of BCL-2 interacting cell death suppressor (BIS), an anti-stress or anti-apoptotic protein, has been shown to be regulated at the transcriptional level by heat shock factor 1 (HSF1) upon various stresses. Recently, HSF1 was also shown to bind to BIS, but the significance of these protein-protein interactions on HSF1 activity has not been fully defined. In the present study, we observed that complete depletion of BIS using a CRISPR/Cas9 system in A549 non-small cell lung cancer did not affect the induction of heat shock protein (HSP) 70 and HSP27 mRNAs under various stress conditions such as heat shock, proteotoxic stress, and oxidative stress. The lack of a functional association of BIS with HSF1 activity was also demonstrated by transient downregulation of BIS by siRNA in A549 and U87 glioblastoma cells. Endogenous BIS mRNA levels were significantly suppressed in BIS knockout (KO) A549 cells compared to BIS wild type (WT) A549 cells at the constitutive and inducible levels. The promoter activities of BIS and HSP70 as well as the degradation rate of BIS mRNA were not influenced by depletion of BIS. In addition, the expression levels of the mutant BIS construct, in which 14 bp were deleted as in BIS-KO A549 cells, were not different from those of the WT BIS construct, indicating that mRNA stability was not the mechanism for autoregulation of BIS. Our results suggested that BIS was not required for HSF1 activity, but was required for its own expression, which involved an HSF1-independent pathway.
MspTL is the major surface protein of Treponema lecithinolyticum associated with periodontitis and endodontic infections. Our recent investigation revealed that MspTL induces proinflammatory cytokines and intercellular adhesion molecule 1 in THP-1 cells and periodontal ligament cells. In this study we conducted oligonucleotide microarray analysis to investigate the global transcriptional regulation in THP-1 cells stimulated with purified recombinant MspTL. MspTL upregulated the expression of 90 genes in THP-1 cells at least four fold, and the functions of these genes were categorized into adhesion, apoptosis/antiapoptosis, cell cycle/growth/differentiation, chemotaxis, cytoskeleton organization, immune response, molecular metabolism, proteolysis, signaling, and transcription. The majority of the modified genes are known to be NF-${\kappa}B$-responsive and interferon-stimulated genes (ISGs). The expression of 12 selected genes was confirmed by real-time RT-PCR. Because prostaglandin $E_2(PGE_2)$ is an important inflammatory mediator and Cox-2 was found to be induced by MspTL in the microarray analysis, we determined the level of $PGE_2$ in the culture supernatants of MspTL-treated cells and found that MspTL significantly increased $PGE_2$. Our results provide insight into the gene regulation of host cells in response to MspTL, and may contribute to the understanding of the molecular mechanism in periodontitis.
Chlamydophila psittaci is an important intracellular pathogen. Persistent infection is an important state of the host-parasite interaction in this chlamydial infection, which plays a significant role in spreading the organism within animal populations and in causing chronic chlamydiosis and serious sequelae. In this study, a C. psittaci persistent infection cell model was induced by penicillin G, and real-time quantitative PCR was used to study the transcriptional levels of 10 C. psittaci genes (dnaA, dnaK, ftsW, ftsY, grpE, rpsD, incC, omcB, CPSIT_0846, and CPSIT_0042) in acute and penicillin-G-induced persistent infection cultures. Compared with the acute cultures, the penicillin-G-treated cultures showed a reduced chlamydial inclusion size and a significantly decreased number of elementary body particles. Additionally, some enlarged aberrant reticulate body particles were present in the penicillin-G-treated cultures but not the acute ones. The expression levels of genes encoding products for cell division (FtsW, FtsY) and outer membrane protein E encoding gene (CPSIT_0042) were downregulated (p < 0.05) from 6 h post-infection onward in the persistent infection cultures. Also from 6 h post-infection, the expression levels of DnaA, DnaK, IncC, RpsD, GrpE, and CPSIT_0846 were upregulated (p < 0.05); however, the expression level of OmcB in the persistent infection was< almost the same as that in the acute infection (p > 0.05). These results provide new insight regarding molecular activities that accompany persistence of C. psittaci, which may play important roles in the pathogenesis of C. psittaci infection.
Glucose (xylose) isomerases from Streptomyces sp. have been used for the production of high fructose corn syrup for industrial purposes. An 11-kb DNA fragment containing the xyl gene cluster was isolated from Streptomyces lividans TK24 and its nucleotide sequences were analyzed. It was found that the xyl gene cluster contained a putative transcriptional repressor (xylR), xylulokinase (xylB), and xylose isomerase (xylA) genes. The transcriptional directions of the xylB and xylA genes were divergent, which is consistent to those found in other streptomycetes. A gene encoding XylR was located downstream of the xylB gene in the same direction, and its mutant strain produced xylose isomerase regardless of xylose in the media. The enzyme expression level in the mutant was 4.6 times higher than that in the parent strain under xylose-induced condition. Even in the absence of xylose, the mutant strain produce over 60% of enzyme compared with the xylose-induced condition. Gel mobility shift assay showed that XylR was able to bind to the putative xyl promoter, and its binding was inhibited by the addition of xylose in vitro. This result suggested that XylR acts as a repressor in the S. lividans xylose operon.
Kollati, Yedukondalu;Akella, Radha Rama Devi;Naushad, Shaik Mohammad;Patel, Rajesh K.;Reddy, G. Bhanuprakash;Dirisala, Vijaya R.
Genomics & Informatics
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v.19
no.3
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pp.29.1-29.10
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2021
In our previous studies, we have demonstrated the association of certain variants of the thyroid-stimulating hormone receptor (TSHR), thyroid peroxidase (TPO), and thyroglobulin (TG) genes with congenital hypothyroidism. Herein, we explored the mechanistic basis for this association using different in silico tools. The mRNA 3'-untranslated region (3'-UTR) plays key roles in gene expression at the post-transcriptional level. In TSHR variants (rs2268477, rs7144481, and rs17630128), the binding affinity of microRNAs (miRs) (hsa-miR-154-5p, hsa-miR-376a-2-5p, hsa-miR-3935, hsa-miR-4280, and hsa-miR-6858-3p) to the 3'-UTR is disrupted, affecting post-transcriptional gene regulation. TPO and TG are the two key proteins necessary for the biosynthesis of thyroid hormones in the presence of iodide and H2O2. Reduced stability of these proteins leads to aberrant biosynthesis of thyroid hormones. Compared to the wild-type TPO protein, the p.S398T variant was found to exhibit less stability and significant rearrangements of intra-atomic bonds affecting the stoichiometry and substrate binding (binding energies, ΔG of wild-type vs. mutant: -15 vs. -13.8 kcal/mol; and dissociation constant, Kd of wild-type vs. mutant: 7.2E-12 vs. 7.0E-11 M). The missense mutations p.G653D and p.R1999W on the TG protein showed altered ΔG(0.24 kcal/mol and 0.79 kcal/mol, respectively). In conclusion, an in silico analysis of TSHR genetic variants in the 3'-UTR showed that they alter the binding affinities of different miRs. The TPO protein structure and mutant protein complex (p.S398T) are less stable, with potentially deleterious effects. A structural and energy analysis showed that TG mutations (p.G653D and p.R1999W) reduce the stability of the TG protein and affect its structure-functional relationship.
SCO6993 (606 amino acids) in Streptomyces coelicolor belongs to the large ATP-binding regulators of the LuxR family regulators having one DNA-binding motif. Our previous findings predicted that SCO6993 may suppress the production of pigmented antibiotics, actinorhodin, and undecylprodigiosin, in S. coelicolor, resulting in the characterization of its properties at the molecular level. SCO6993-disruptant, S. coelicolor ΔSCO6993 produced excess pigments in R2YE plates as early as the third day of culture and showed 9.0-fold and 1.8-fold increased production of actinorhodin and undecylprodigiosin in R2YE broth, respectively, compared with that by the wild strain and S. coelicolor ΔSCO6993/SCO6993+. Real-time polymerase chain reaction analysis showed that the transcription of actA and actII-ORF4 in the actinorhodin biosynthetic gene cluster and that of redD and redQ in the undecylprodigiosin biosynthetic gene cluster were significantly increased by SCO6993-disruptant. Electrophoretic mobility shift assay and DNase footprinting analysis confirmed that SCO6993 protein could bind only to the promoters of pathway-specific transcriptional activator genes, actII-ORF4 and redD, and a specific palindromic sequence is essential for SCO6993 binding. Moreover, SCO6993 bound to two palindromic sequences on its promoter region. These results indicate that SCO6993 suppresses the expression of other biosynthetic genes in the cluster by repressing the transcription of actII-ORF4 and redD and consequently negatively regulating antibiotic production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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