Runt-related transcription factor 2 (RUNX2) is a key transcription factor for bone formation and osteoblast differentiation. Various signaling pathways and mechanisms that regulate the expression and transcriptional activity of RUNX2 have been thoroughly investigated since the involvement of RUNX2 was first reported in bone formation. As the regulation of Runx2 expression by extracellular signals has recently been reviewed, this review focuses on the regulation of post-translational RUNX2 activity. Transcriptional activity of RUNX2 is regulated at the post-translational level by various enzymes including kinases, acetyl transferases, deacetylases, ubiquitin E3 ligases, and prolyl isomerases. We describe a sequential and linear causality between post-translational modifications of RUNX2 by these enzymes. RUNX2 is one of the most important osteogenic transcription factors; however, it is not a suitable drug target. Here, we suggest enzymes that directly regulate the stability and/or transcriptional activity of RUNX2 at a post-translational level as effective drug targets for treating bone diseases.
The elevated expression of the hyaluronan-mediated motility receptor (HMMR) is known to be highly associated with tumor progression in prostate cancer, but the molecular mechanisms underlying the regulation of HMMR expression remain unclear. Here, we report that mammalian target of rapamycin (mTOR) is a key regulator of HMMR expression, for which its kinase activity is required. Pharmacological inhibitors of mTOR, such as rapamycin and Torin2, markedly suppressed the mRNA level as well as the protein level of HMMR in LNCaP and PC-3 cells. Our data demonstrate that such regulation occurs at the transcription level. HMMR promoter reporter assays revealed that the transcription factor SRF is responsible for the mTOR-mediated transcriptional regulation of HMMR gene. Consistently, the suppression of HMMR expression by Torin2 was noticeably reversed by the overexpression of SRF. Moreover, our findings suggest that the SRF binding sites responsible for the transcriptional regulation of HMMR through the mTOR-SRF axis are located in HMMR promoter sequences carrying the first intron, downstream of the translational start site. Furthermore, the upregulation of HMMR by DHT was abolished by stimulation with rapamycin, prior to DHT treatment, suggesting that mTOR activity is required for the induction of HMMR expression by androgen. Collectively, our study provides new mechanistic insights into the role of mTOR/SRF/AR signaling in HMMR regulation in prostate cancer cells.
The phytochemical quercetin has gained attention for its anti-inflammatory and anti-tumorigenic properties in various types of cancer. Tumorigenesis involves the aberrant regulation of kinase/phosphatase, highlighting the importance of maintaining homeostasis. Dual Specificity Phosphatase (DUSP) plays a crucial role in controlling the phosphorylation of ERK. The current study aimed to clone the DUSP5 promoter, and investigate its transcriptional activity in the presence of quercetin. The results revealed that quercetin-induced DUSP5 expression is associated with the serum response factor (SRF) binding site located in the DUSP5 promoter. The deletion of this site abolished the luciferase activity induced by quercetin, indicating its vital role in quercetin-induced DUSP5 expression. SRF protein is a transcription factor that potentially contributes to quercetin-induced DUSP5 expression at the transcriptional level. Additionally, quercetin enhanced SRF binding activity without changing its expression. These findings provide evidence of how quercetin affects anti-cancer activity in colorectal tumorigenesis by inducing SRF transcription factor activity, thereby increasing DUSP5 expression at the transcriptional level. This study highlights the importance of investigating the molecular mechanisms underlying the anti-cancer properties of quercetin, and suggests its potential use in cancer therapy.
Background: B cell-activating factor belonging to the TNF family (BAFF) is primarily expressed by macrophages and dendritic cells, and stimulates B cell proliferation, differentiation, survival, and Ig production. In the present study, we explored the effect of activin A on BAFF expression by APCs. Methods: To investigate the effect of activin A on BAFF expression by mouse APCs, we measured the level of BAFF expression at the transcriptional and protein levels using RT-PCR and ELISA. Results: Activin A markedly enhanced BAFF expression in mouse macrophages and dendritic cells at both the transcriptional and protein levels. SB431542, an activin receptor-like kinase 4 (ALK4) inhibitor, completely abrogated activin A-induced BAFF transcription. Furthermore, overexpression of DN-Smad3 abolished activin-induced BAFF expression at the transcriptional and protein levels. Conclusion: These results demonstrate that activin A can enhance BAFF expression through ALK4-Smad3 pathway.
The E2F gene family appears to regulate the proliferation and differentiation of events that are required for adipogenesis. Pref-1 is a transmembrane protein that inhibits adipocyte differentiation in 3T3-L1 cells. In this study, we found that the expression of pref-1 is regulated by the transcription factor E2F1. The expression of pref-1 and E2F1 was strongly induced in preadipocytes and at the late differentiation stage. Using luciferase reporter assay, ChIP assay and EMSA, we found that the -211/-194 region of the pref-1 promoter is essential for the binding of E2F1 as well as E2F1-dependent transcriptional activation. Knockdown of E2F1 reduced both pref-1 promoter activity and the level of pref-1 mRNA. Taken together, our data suggest that transcriptional activation of pref-1 is stimulated by E2F1 protein in adipocytes.
Transcriptional rate of lactate dehydrogenase A-gene(LDH-A) during the prereplicative phase of regenerating rat liver was determined by in vitro run-off transcription assay. The results show that the transcription rate of LDH A-gene increases between 12 hours and 15 hours peaking at 13 hours after partial hepatectomy of rat liver. The increased rate of LDH A-gene transcription was interfered after DL-propranolol treatment intraperitoneally injected twice at 1 hour and 8 hours after partial hepatectomy indicating that the transcriptional control of LDH A-gene expression may be mediated by beta adrenergic receptor and cAMP as a second messenger. And also was it shown that the temporally increased rate of LDH A-gene transcription was maximum one hour after the second cAMP-surge which is known to play an important role for the initiation of DNA replication during regeneration of rat liver. And the transcriptional rate of LDH A-gene was decreased to the basal level at the time period when the hepatocytes proliferate rapidly suggesting that the induced LDH Aisozyme may be required for the initiation of DNA replication during regeneration of rat liver. These data may be supporting for the hypothesis suggesting that the induced LDH A-isozyme during the pre-replicative phase of regenerating rat liver may play bifunctional roles as a glycolytic enzyme and a helix destablizing protein as well.
Journal of the Korean Data and Information Science Society
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v.27
no.1
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pp.225-243
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2016
Thanks to recent advance of next generation sequencing techniques, RNA-seq enabled to have an unprecedented opportunity to identify transcript variants with isoform diversity and allelic imbalance (Anders et al., 2012) by different transcriptional rates. To date, it is well known that those features might be associated with the aberrant patterns of disease complexity such as tissue (Anders and Huber, 2010; Anders et al., 2012; Nariai et al., 2014) specific differential expression at isoform levels or tissue specific allelic imbalance in mal-functionality of disease processes, etc. Nevertheless, the knowledge of post-transcriptional modification and AI in transcriptomic and genomic areas has been little known in the traditional platforms due to the limitation of technology and insufficient resolution. We here stress the potential of isoform variability and allelic specific expression that are relevant to the abnormality of disease mechanisms in transcriptional genetic regulatory networks. In addition, we systematically review how robust Bayesian approaches in RNA-seq have been developed and utilized in this regard in the field.
In order to provide the basis for developing practical mouse embryonic stem cells (mESCs) culture method, how the endogenous level of self-renewal-stimulating factor genes was altered in the mESCs by different extracellular signaling was investigated in this study. For different extracellular signaling, mESCs were cultured in 2 dimension (D), 3D and integrin-stimulating 3D culture system in the presence or absence of leukemia inhibitory factor (LIF) and transcriptional level of $Lif$, $Bmp4$ and $Wnt3a$ was evaluated in the mESCs cultured in each system. The expression of three genes was significantly increased in 3D system relative to 2D system under LIF-containing condition, while only $Wnt3a$ expression was increased by 3D culture under LIF-free condition. Stimulation of integrin signaling in mESCs within 3D system with exogenous LIF significantly up-regulated transcriptional level of $Bmp4$, but did not induce transcriptional regulation of $Lif$ and $Wnt3a$. In the absence of LIF inside 3D system, the expression of $Lif$ and $Bmp4$ was significantly increased by integrin signaling, while it significantly decreased $Wnt3a$ expression. Finally, the signal from exogenous LIF significantly caused increased expression of $Lif$ in 2D system, decreased expression of $Bmp4$ in both 2D and 3D system, and decreased expression of $Wnt3a$ in integrin-stimulating 3D system. From these results, we identified that endogenous expression level of self-renewal-stimulating factor genes in mESCs could be effectively regulated through artificial and proper manipulation of extracellular signaling. Moreover, synthetic 3D niche stimulating endogenous secretion of self-renewal-stimulating factors will be able to help develop growth factor-free maintenance system of mESCs.
Probing Streptomyces albus ATCC 21838 chromosomal DNA with a proline tRNA sequence resulted in an isolation of a putative integrating element in the 6.4-kb EcoRI fragment. It was found that Streptomyces lividans TK-24 transformed with a cloned DNA fragment on a multicopy plasmid, produced a higher level of spore pigment and mycelial red pigment on a regeneration agar. Furthermore, the transformant S. lividans TK-24 produced a markedly increased level of undecylprodigiosin in a broth culture. A nucleotide sequence analysis of the cloned region revealed several open reading frames homologous to the integrases of integrating plasmids or temperate bacteriophages, signal-transducing regulatory proteins with a conserved ATP-binding domain, oxidoreductases ($\beta$-ketoacyl reductase), and an AraC-like transcriptional regulator. To examine the effect on antibiotic production, each coding region was overexpressed separately from the other genes in the region in S. lividans TK-24 with; pJHS3044 for the expression of the signal-transducing regulatory protein homologue, pJHS3045 for the homologue of oxidoreductase, and pJHS3051 for the homologue of the AraC-like transcriptional regulator. Phenotypic studies of S. lividans TK-24 strains harboring plasmids for the overexpression of individual genes suggested the following effects of the genes on antibiotic production: The oxidoreductase homologue stimulated the production of actinorhodin and undecylprodigiosin, which was influenced by the culture conditions; the homologue of the AraC-like transcriptional regulator was the most effective factor in antibiotic production within all the culture conditions tested; the signal-transducing regulatory protein homologue repressed the effect due to the homologue of the AraC-like transcriptional regulator, however, the antibiotic production was derepressed upon entering the stationary phase.
Lee, Hyun Sung;Lim, Jong Gyu;Han, Kook;Lee, Younghoon;Choi, Sang Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.8
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pp.1380-1389
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2015
Prx1, an AhpF-dependent 2-Cys peroxiredoxin (Prx), was previously identified in Vibrio vulnificus, a facultative aerobic pathogen. In the present study, transcription of the V. vulnificus prx1ahpF genes, which are adjacently located on the chromosome, was evaluated by analyzing the promoter and intergenic region of the two genes. Northern blot analyses revealed that transcription of prx1ahpF results in two transcripts, the prx1 and prx1ahpF transcripts. Primer extension analysis and a point mutational analysis of the promoter region showed that the two transcripts are generated from a single promoter. In addition, the 3' end of the prx1 transcript at the prx1ahpF intergenic region was determined by a 3'RACE assay. These results suggested that the prx1ahpF genes are transcribed as an operon, and the prx1 transcript was produced by transcriptional termination in the intergenic region. RNA secondary structure prediction of the prx1ahpF intergenic region singled out a stem-loop structure without poly(U) tract, and a deletion analysis of the intergenic region showed that the atypical stem-loop structure acts as the transcriptional attenuator to result in the prx1 and prx1ahpF transcripts. The combined results demonstrate that the differential expression of prx1 and ahpF is accomplished by the cis-acting transcriptional attenuator located between the two genes and thereby leads to the production of a high level of Prx1 and a low level of AhpF.
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