Histone methylation has diverse functions including transcriptional regulation via its lysine or arginine residue methylation. Studies indicate that deregulation of histone methylation is linked to human cancers including leukemia. Histone H3K27 methyltrnasferase response element II binding protein (RE-IIBP), as a transcriptional repressor to target gene IL-5, interacts with HDAC and is over-expressed in leukemia patient samples. In this study, we have identified that hematopoiesis-related genes GATA1 and HOXA9 are down-regulated by RE-IIBP in K562 and 293T cells. Transient reporter analysis revealed that GATA1 transcription was repressed by RE-IIBP. On the other hand, HOXA9 and PBX-related homeobox gene MEIS1 was up-regulated by RE-IIBP. These results suggest that RE-IIBP might have a role in hematopoiesis or leukemogenesis by regulating the transcription of target genes, possibly via its H3K27 methyltransferase activity.
CRISPR interference (CRISPRi) has been developed as a transcriptional control tool by inactivating the DNA cleavage ability of Cas9 nucleases to produce dCas9 (deactivated Cas9), and leaving dCas9 the ability to specifically bind to the target DNA sequence. CRISPR/Cas9 technology has limitations in designing target-specific single-guide RNA (sgRNA) due to the dependence of protospacer adjacent motif (PAM) (5'-NGG) for binding target DNAs. Reportedly, Cas9-NG recognizing 5'-NG as the PAM sequence has been constructed by removing the dependence on the last base G of PAM through protein engineering of Cas9. In this study, a dCas9-NG protein was engineered by introducing two active site mutations in Cas9-NG, and its ability to regulate transcription was evaluated in the gal promoter in E. coli. Analysis of cell growth rate, D-galactose consumption rate, and gal transcripts confirmed that dCas9-NG can completely repress the promoter by recognizing DNA targets with PAM of 5'-NGG, NGA, NGC, NGT, and NAG. Our study showed possible PAM sequences for dCas9-NG and provided information on target-specific sgRNA design for regulation of both gene expression and cellular metabolism.
Brassica napus is the third most important oilseed crop in the world; however, in Korea, it is greatly affected by cold stress, limiting seed growth and production. Plants have developed specific stress responses that are generally divided into three categories: cold-stress signaling, transcriptional/post-transcriptional regulation, and stress-response mechanisms. Large numbers of functional and regulatory proteins are involved in these processes when triggered by cold stress. Here, our objective was to investigate the different genetic factors involved in the cold-stress responses of B. napus. Consequently, we treated the Korean B. napus cultivar Naehan at the 4-week stage in cold chambers under different conditions, and RNA and cDNA were obtained. An in silico analysis included 80 cold-responsive genes downloaded from the National Center for Biotechnology Information (NCBI) database. Expression levels were assessed by reverse transcription polymerase chain reaction, and 14 cold-triggered genes were identified under cold-stress conditions. The most significant genes encoded zinc-finger proteins (33.7%), followed by MYB transcription factors (7.5%). In the future, we will select genes appropriate for improving the cold tolerance of B. napus.
Eun-Chong Lee;Kyungwoo Kim;Woong-Jae Jung;Hyoung-Pyo Kim
BMB Reports
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v.56
no.7
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pp.398-403
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2023
Natural killer (NK) cells are an essential part of the innate immune system that helps control infections and tumors. Recent studies have shown that Vorinostat, a histone deacetylase (HDAC) inhibitor, can cause significant changes in gene expression and signaling pathways in NK cells. Since gene expression in eukaryotic cells is closely linked to the complex three-dimensional (3D) chromatin architecture, an integrative analysis of the transcriptome, histone profiling, chromatin accessibility, and 3D genome organization is needed to gain a more comprehensive understanding of how Vorinostat impacts transcription regulation of NK cells from a chromatin-based perspective. The results demonstrate that Vorinostat treatment reprograms the enhancer landscapes of the human NK-92 NK cell line while overall 3D genome organization remains largely stable. Moreover, we identified that the Vorinostat-induced RUNX3 acetylation is linked to the increased enhancer activity, leading to elevated expression of immune response-related genes via long-range enhancer-promoter chromatin interactions. In summary, these findings have important implications in the development of new therapies for cancer and immune-related diseases by shedding light on the mechanisms underlying Vorinostat's impact on transcriptional regulation in NK cells within the context of 3D enhancer network.
Yong-Kyu Lee;Hyeon Ho Heo;Nackhyoung Kim;Ui-Hyun Park;Hyesook Youn;Eun-Yi Moon;Eun-Joo Kim;Soo-Jong Um
BMB Reports
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v.57
no.6
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pp.299-304
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2024
Upregulation of PRAME (preferentially expressed antigen of melanoma) has been implicated in the progression of a variety of cancers, including melanoma. The tumor suppressor p53 is a transcriptional regulator that mediates cell cycle arrest and apoptosis in response to stress signals. Here, we report that PRAME is a novel repressive target of p53. This was supported by analysis of melanoma cell lines carrying wild-type p53 and human melanoma databases. mRNA expression of PRAME was downregulated by p53 overexpression and activation using DNA-damaging agents, but upregulated by p53 depletion. We identified a p53-responsive element (p53RE) in the promoter region of PRAME. Luciferase and ChIP assays showed that p53 represses the transcriptional activity of the PRAME promoter and is recruited to the p53RE together with HDAC1 upon etoposide treatment. The functional significance of p53 activation-mediated PRAME downregulation was demonstrated by measuring colony formation and p27 expression in melanoma cells. These data suggest that p53 activation, which leads to PRAME downregulation, could be a therapeutic strategy in melanoma cells.
The plant defense responses to microbial infection are tightly regulated and integrated with the developmental program for optimal resources allocation. Notably, the defense-associated hormone salicylic acid (SA) acts as a promoter of flowering while several plant pathogens actively target the flowering signaling pathway to promote their virulence or dissemination. Ralstonia pseudosolanacearum inject tens of effectors in the host cells that collectively promote bacterial proliferation in plant tissues. Here, we characterized the function of the broadly conserved R. pseudosolanacearum effector RipL, through heterologous expression in Arabidopsis thaliana. RipL-expressing transgenic lines presented a delayed flowering, which correlated with a low expression of flowering regulator genes. Delayed flowering was also observed in Nicotiana benthamiana plants transiently expressing RipL. In parallel, RipL promoted plant susceptibility to virulent strains of Pseudomonas syringae in the effector-expressing lines or when delivered by the type III secretion system. Unexpectedly, SA accumulation and SA-dependent immune signaling were not significantly affected by RipL expression. Rather, the RNA-seq analysis of infected RipL-expressing lines revealed that the overall amplitude of the transcriptional response was dampened, suggesting that RipL could promote plant susceptibility in an SA-independent manner. Further elucidation of the molecular mechanisms underpinning RipL effect on flowering and immunity may reveal novel effector functions in host cells.
Cinnamaldehyde is a natural compound extracted from cinnamon bark essential oil, acclaimed for its versatile properties in both pharmaceutical and agricultural fields, including antimicrobial, antioxidant, and anticancer activities. Although potential of cinnamaldehyde against plant pathogenic bacteria like Agrobacterium tumefaciens and Pseudomonas syringae pv. actinidiae causative agents of crown gall and bacterial canker diseases, respectively has been documented, in-depth studies into cinnamaldehyde's broader influence on plant pathogenic bacteria are relatively unexplored. Particularly, Pectobacterium spp., gram-negative soil-borne pathogens, notoriously cause soft rot damage across a spectrum of plant families, emphasizing the urgency for effective treatments. Our investigation established that the Minimum Inhibitory Concentrations (MICs) of cinnamaldehyde against strains P. odoriferum JK2, P. carotovorum BP201601, and P. versatile MYP201603 were 250 ㎍/ml, 125 ㎍/ml, and 125 ㎍/ml, respectively. Concurrently, their Minimum Bactericidal Concentrations (MBCs) were found to be 500 ㎍/ml, 250 ㎍/ml, and 500 ㎍/ml, respectively. Using RNA-sequencing analysis, we identified 1,907 differentially expressed genes in P. carotovorum BP201601 treated with 500 ㎍/ml cinnamaldehyde. Notably, our results indicate that cinnamaldehyde upregulated nitrate reductase pathways while downregulating the citrate cycle, suggesting a potential disruption in the aerobic respiration system of P. carotovorum during cinnamaldehyde exposure. This study serves as a pioneering exploration of the transcriptional response of P. carotovorum to cinnamaldehyde, providing insights into the bactericidal mechanisms employed by cinnamaldehyde against this bacterium.
There were many different families of zinc finger proteins that contained multiple cysteine and/or histidine residues and used zinc to stabilize their folds. The classical C2H2 zinc finger proteins were the founding members of this superfamily and were among the most abundant proteins in eukaryotic genomes. C2H2 proteins typically contained several C2H2 fingers that made tandem contacts along the DNA. Here we reported a novel C2H2 type zinc finger gene, ZNF438, which encoded 828 amino acids that formed five zinc finger domains. Bioinformatics analysis revealed that the ZNF438 was mapped to human chromosome 10p11.2 and shared 62% identity with rat and mouse homologues. RT-PCR analysis indicated that it was ubiquitously expressed in 18 human adult tissues. With immunofluorescence assay, it was shown that the exogenous Flag-tagged ZNF438 was located in nucleus of COS-7 cells. To further explore the function of ZNF438, we examined the transcriptional activity of ZNF438 protein by transfecting recombinant pM-ZNF438 into mammalian cells. The subsequent analysis based on the duel luciferase assay system showed that ZNF438 was a transcriptional repressor.
Efficient expression of the Salmonella Typhimurium tdc ABCDEG operon involved in the degradation of L-serine and L-threonine requires TdcA, the transcriptional activator of the tdc operon. We found that the tdcA gene was transiently activated when the bacterial growth condition was changed from aerobic to anaerobic, but this was not observed if Salmonella was grown anaerobically from the beginning of the culture. Expression kinetics of six tdc genes after anaerobic shock demonstrated by a real-time PCR assay showed that the tdc CDEG genes were not induced in the tdcA mutant but tdcB maintained its inducibility by anaerobic shock even in the absence of tdcA, suggesting that an additional unknown transcriptional regulation may be working for the tdcB expression. We also investigated the effects of nucleoid-associated proteins by primer extension analysis and found that H-NS repressed tdcA under anaerobic shock conditions, and fis mutation delayed the peak expression time of the tdc operon. DNA microarray analysis of genes regulated by TdcA revealed that the genes involved in N-acetylmannosamine, maltose, and propanediol utilization were significantly induced in a tdcA mutant. These findings suggest that Tdc enzymes may playa pivotal role in energy metabolism under a sudden change of oxygen tension.
MspTL is the major surface protein of Treponema lecithinolyticum associated with periodontitis and endodontic infections. Our recent investigation revealed that MspTL induces proinflammatory cytokines and intercellular adhesion molecule 1 in THP-1 cells and periodontal ligament cells. In this study we conducted oligonucleotide microarray analysis to investigate the global transcriptional regulation in THP-1 cells stimulated with purified recombinant MspTL. MspTL upregulated the expression of 90 genes in THP-1 cells at least four fold, and the functions of these genes were categorized into adhesion, apoptosis/antiapoptosis, cell cycle/growth/differentiation, chemotaxis, cytoskeleton organization, immune response, molecular metabolism, proteolysis, signaling, and transcription. The majority of the modified genes are known to be NF-${\kappa}B$-responsive and interferon-stimulated genes (ISGs). The expression of 12 selected genes was confirmed by real-time RT-PCR. Because prostaglandin $E_2(PGE_2)$ is an important inflammatory mediator and Cox-2 was found to be induced by MspTL in the microarray analysis, we determined the level of $PGE_2$ in the culture supernatants of MspTL-treated cells and found that MspTL significantly increased $PGE_2$. Our results provide insight into the gene regulation of host cells in response to MspTL, and may contribute to the understanding of the molecular mechanism in periodontitis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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