Nguyen, Hai Thi;Nguyen, Huong Lan;Nguyen, Minh Hong;Nguyen, Thao Kim Nu;Dinh, Hang Thuy
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.30
no.7
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pp.1005-1012
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2020
Acid mine drainage (AMD) has been a serious environmental issue that threatens soil and aquatic ecosystems. In this study, an acid-tolerant sulfate-reducing bacterium, strain S4, was isolated from the mud of an AMD storage pond in Vietnam via enrichment in anoxic mineral medium at pH 5. Comparative analyses of sequences of the 16S rRNA gene and dsrB gene involved in sulfate reduction revealed that the isolate belonged to the genus Desulfovibrio, and is most closely related to Desulfovibrio oxamicus (with 99% homology in 16S rDNA sequence and 98% homology in dsrB gene sequence). Denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) analyses of dsrB gene showed that strain S4 represented one of the two most abundant groups developed in the enrichment culture. Notably, strain S4 was capable of reducing sulfate in low pH environments (from 2 and above), and resistance to extremely high concentration of heavy metals (Fe 3,000 mg/l, Zn 100 mg/l, Cu 100 mg/l). In a batch incubation experiment in synthetic AMD with pH 3.5, strain S4 showed strong effects in facilitating growth of a neutrophilic, metal sensitive Desulfovibrio sp. strain SR4H, which was not capable of growing alone in such an environment. Thus, it is postulated that under extreme conditions such as an AMD environment, acid- and metal-tolerant sulfate-reducing bacteria (SRB)-like strain S4 would facilitate the growth of other widely distributed SRB by starting to reduce sulfate at low pH, thus increasing pH and lowering the metal concentration in the environment. Owing to such unique physiological characteristics, strain S4 shows great potential for application in sustainable remediation of AMD.
Park, Si Jae;Lee, Seung Hwan;Oh, Young Hoon;Lee, Sang Yup
KSBB Journal
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v.29
no.4
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pp.244-249
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2014
Biosynthesis pathway of medium-chain-length (MCL) polyhydroxyalkanoates (PHA) from fatty acid ${\beta}$-oxidation pathway was constructed in recombinant Escherichia coli by introducing the Pseudomonas sp. 61-3 PHA synthase gene (phaC2) and the maoC genes from Pseudomonas putida, Sinorhizobium meliloti, and Ralstonia eutropha. The metabolic link between fatty acid ${\beta}$-oxidation pathway and PHA biosynthesis pathway was constructed by MaoC, which is homologous to P. aeruginosa (R)-specific enoyl-CoA hydratase (PhaJ1). When the E. coli W3110 strains expressing the phaC2 gene and one of the maoC genes from P. putida, Sinorhizobium meliloti, and Ralstonia eutropha were cultured in LB medium containing 2 g/L of sodium decanoate as a carbon source, MCL-PHA that mainly consists of 3-hydroxyhexanoate (3HHx), 3-hydroxyoctanoate (3HO) and 3-hydroxydecanoate (3HD), was produced. The monomer composition of PHA and PHA contents varied depending on MaoC employed for the production of PHA. The highest PHA content of 18.7 wt% was achieved in recombinant E. coli W3110 expressing the phaC2 gene and the P. putida maoC gene. These results suggest that MCL-PHA biosynthesis pathway can be constructed in recombinant E. coli strains from the b-oxidation pathway by employing MaoC able to supply (R)-3-hydroxyacyl-CoA, the substrate of PHA synthase.
The gene encoding squalene synthase (SQS) of the lipid-producing heterotrophic microalga Aurantiochytrium sp. KRS101 was cloned and characterized. The krsSQS gene is 1,551 bp in length and has two exons and one intron. The open reading frame of the gene is 1,164 bp in length, yielding a polypeptide of 387 predicted amino acid residues with a molecular mass of 42.7 kDa. The deduced krsSQS sequence shares at least four conserved regions known to be required for SQS enzymatic activity in other species. The protein, tagged with $His_6$, was expressed into soluble form in Escherichia coli. The purified protein catalyzed the conversion of farnesyl diphosphate to squalene in the presence of NADPH and $Mg^{2+}$. This is the first report on the characterization of an SQS from a Thraustochytrid microalga.
Park, Byung-Min;Kim, Su-Ung;Lee, Seong-Yong;Chung, Hun-Taeg
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1995.04a
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pp.79-79
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1995
Although synthetic antisense oligodeoxynucleotides (ODNs) have been used to dissect gene function in vitro, technical difficulties of targeted delivery prevented the use of this approach for investigating the effect of gene products in vivo. Here we report the use of local delivery of antisense transforming growth factor-${\beta}$l (TGF-${\beta}$1) oligonucleotides to decrease the fibrosis in the skin wound. Adult wounds heal with scar-tissue formation, whereas fetal wounds heal without scarring and with a lesser inflammatory and cytokine response. We reasoned that strategy emptying antisense TGF-${\beta}$1 ODNs complementary to TGF-${\beta}$1 mRNA might decrease the scarring in dermal wound of mouse. To evaluate this concept, we tested the effects of antisense ODNs targeted to TGF-${\beta}$1 mRNA by topical application of the chemical on the skin wound. Phosphorothioate antisense ODNs was employed to retard their degradation. When antisense TGF-${\beta}$1 ODNs were applied into the wound site, there was a maked reduction of scar compared with control wound site, These effects of antisense TGF-${\beta}$1 ODNs on the scar formation were associated with decreased expression of TGF-${\beta}$1 gene. However sense TGF-${\beta}$l ODNs had no effect on expression of TGF-${\beta}$1 gene. Also, control wounds healed with excessive fibrosis, whereas the antisense treated wounds healed with less fibrosis. In conclusion, our results indicate that antisense TGF-${\beta}$1 ODNs could be used for amelioating scar formation during wound healing.
To precisely analyze the role of ovarian steroids in the regulation of laminin chain gene expression in mouse uterine tissues, the ovariectomized mouse model was used. Ovariectomized mice received a single injection of steroid hormones and total RNA was isolated from whole uterine tissues. Messenger RNA levels of each laminin chain (A, 81, and 82) were determined by competitive RT-peR procedures. Estradiol decreased mRNA levels of laminin 81 chain about two-fold, and 82 chain rather moderately. Estradiol-induced inhibition of laminin 81 and 82 chain mRNA levels were completely blocked by pretreatment with estrogen receptor antagonist tamoxifen. Estriol, a short acting estrogen which cannot induce hyperplastic responses of rodent uterine tissues, also showed an inhibitory effect on 81 and 82 chain mRNA levels, while estrone, an inactive estrogen, failed to influence either 8 chain mRNA levels. Effects of steroids on A chain mRNA level were quite different from those on 8 chains. Laminin A chain mRNA level was slightly increased by estradiol treatment, but negatively affected by progesterone. Progesterone treatment greatly increased both 8 chain mRNA levels, but slightly decreased A chain mRNA level compared to the control. The effect of progesterone on laminin chain-specific mRNA levels was further increased by co-injection of estradiol in a time-dependent manner. Progesterone-induced 81 and 82 chain mRNA transcription was inhibited by RU486, a synthetic anti-progesterone /anti-glucocorticoid. The present study demonstrates for the first time that steroids are able to regulate laminin gene expression in mouse uterine tissues, indicating that steroid-regulated laminin gene expression is involved in uterine growth and probably differentiation.
Seo, Hak Soo;Li, Jinjie;Lee, Sun-Young;Yu, Jae-Woong;Kim, Kil-Hyun;Lee, Suk-Ha;Lee, In-Jung;Paek, Nam-Chon
Molecules and Cells
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v.24
no.2
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pp.185-193
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2007
Symbiotic nitrogen fixation with nitrogen-fixing bacteria in the root nodules is a distinctly beneficial metabolic process in legume plants. Legumes control the nodule number and nodulation zone through a systemic negative regulatory system between shoot and root. Mutation in the soybean NTS gene encoding GmNARK, a CLAVATA1-like serine/threonine receptor-like kinase, causes excessive nodule development called hypernodulation. To examine the effect of nts mutation on the gene expression profile in the leaves, suppression subtractive hybridization was performed with the trifoliate leaves of nts mutant 'SS2-2' and the wild-type (WT) parent 'Sinpaldalkong2', and 75 EST clones that were highly expressed in the leaves of the SS2-2 mutant were identified. Interestingly, the expression of jasmonate (JA)-responsive genes such as vspA, vspB, and Lox2 were upregulated, whereas that of a salicylate-responsive gene PR1a was suppressed in the SS2-2 mutant. In addition, the level of JA was about two-fold higher in the leaves of the SS2-2 mutant than in those of the WT under natural growth conditions. Moreover, the JA-responsive gene expression persists in the leaves of SS2-2 mutant without rhizobia infection in the roots. Taken together, our results suggest that the nts mutation increases JA synthesis in mature leaves and consequently leads to constitutive expression of JA-responsive genes which is irrelevant to hypernodulation in the root.
Ha, Chang Man;Kim, Dong Hee;Lee, Tae Hwan;Kim, Han Rae;Choi, Jungil;Kim, Yoonju;Kang, Dasol;Park, Jeong Woo;Ojeda, Sergio R.;Jeong, Jin Kwon;Lee, Byung Ju
Molecules and Cells
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v.45
no.8
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pp.537-549
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2022
Preproenkephalin (PPE) is a precursor molecule for multiple endogenous opioid peptides Leu-enkephalin (ENK) and Met-ENK, which are involved in a wide variety of modulatory functions in the nervous system. Despite the functional importance of ENK in the brain, the effect of brain-derived factor(s) on PPE expression is unknown. We report the dual effect of neural epidermal growth factor (EGF)-like-like 2 (NELL2) on PPE gene expression. In cultured NIH3T3 cells, transfection of NELL2 expression vectors induced an inhibition of PPE transcription intracellularly, in parallel with downregulation of protein kinase C signaling pathways and extracellular signal-regulated kinase. Interestingly, these phenomena were reversed when synthetic NELL2 was administered extracellularly. The in vivo disruption of NELL2 synthesis resulted in an increase in PPE mRNA level in the rat brain, suggesting that the inhibitory action of intracellular NELL2 predominates the activation effect of extracellular NELL2 on PPE gene expression in the brain. Biochemical and molecular studies with mutant NELL2 structures further demonstrated the critical role of EGF-like repeat domains in NELL2 for regulation of PPE transcription. These are the first results to reveal the spatio-specific role of NELL2 in the homeostatic regulation of PPE gene expression.
Non-viral gene carriers continue to attract a great deal of interest due to advantageous safety profile. Among the non-viral gene carriers, cationic liposomes or synthetic gene carriers are efficient DNA carriers in vitro. but their in vivo applications are greatly hampered because of low biocompatibility. On the other hand, chitosan, a natural cationic polysaccharide, is a candidate non-viral vector for gene delivery because of its low cytotoxicity and high positive charges. In this work, targeted gene carrier was synthesized to target artery wall cells using low molecular water-soluble chitosan (LMWSC). The molecular weight $(M_W)$ and degree of de acetylation (DDA) of LMWSC were measured by relative viscometer and Kina titration. respectively. The structure of LMWSC was analyzed by measuring FTIR, $^1H-NMR,\;and\;^{13}C-NMR$. AWBP-PEG-g-LMWSC was synthesized by conjugation of the artery wall binding peptide (AWBP), a specific targeting peptide, to the end of pegylated LMWSC as a gene carrier to target artery wall cells. The synthesized AWBP-PEG-g-LMWSC were analyzed by measuring FTIR, $^1H-NMR$, zeta -potentiometer, and atomic force microscopy (AFM).
The genotoxicity of pendimethalin [N-(l-ethylpropyl)-2, 6-dinitro-3, 4-xylidine, C$\_$13/H$\_$19/N$_3$O$_4$, M.W.=281.3, CAS No. 40487-42-1], one of selective herbicide, was evaluated in bacterial gene mutation system, chromosome aberration in mammalian cell system and in vivo micronucleus assay with rodent. In bacterial gene mutation assay, pendimethalin revealed dose-dependent mutagenic potential in 313 ∼ 5,000 ${\mu}$g/plate of Salmonella typhimurium TA 98 and TA 1537 both in the absence and presence of S-9 metabolic activation system, and TA 100 only in the absence of S-9 mixture. In the TA 1535, slight increase of revertant was also observed in the presence of S-9 metabolic activation system. No mutagenic potential was observed in the TA 1535 without metabolic activation system and TA l00 in the presence of S-9 mixture. In mammalian cell system using Chinese hamster lung (CHL) fibroblast, no clastogenicity of pendimethalin was observed both in the absence and presence of S-9 metabolic activation system in the concentration range of 2.32∼9.28 ${\mu}$g/ml. And also, in vivo bone marrow micronucleus assay, pendimethalin revealed no clastogenic potential in the dose range of 203∼810 mg/kg body weight after oral administration in mice. Consequently, in vitro chromosome aberration with mammalian cells and in vivo bone marrow micronucleus assay revealed no clastogenic potential of pendimethalin. However, pendimethalin revealed mutagenic potential in bacterial gene mutation assay.
Xiong, Ai Sheng;Yao, Quan-Hong;Peng, Ri-He;Li, Xian;Fan, Hui-Qin;Guo, Mei-Jin;Zhang, Si-Liang
BMB Reports
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v.37
no.3
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pp.282-291
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2004
Phytases catalyze the release of phosphate from phytic acid. Phytase-producing microorganisms were selected by culturing the soil extracts on agar plates containing phytic acid. Two hundred colonies that exhibited potential phytase activity were selected for further study. The colony showing the highest phytase activity was identified as Aspergillus niger and designated strain 113. The phytase gene from A. niger 113 (phyI1) was isolated, cloned, and characterized. The nucleotide and deduced amino acid sequence identity between phyI1 and phyA from NRRL3135 were 90% and 98%, respectively. The identity between phyI1 and phyA from SK-57 was 89% and 96%. A synthetic phytase gene, phyI1s, was synthesized by successive PCR and transformed into the yeast expression vector carrying a signal peptide that was designed and synthesized using P. pastoris biased codon. For the phytase expression and secretion, the construct was integrated into the genome of P. pastoris by homologous recombination. Over-expressing strains were selected and fermented. It was discovered that ~4.2 g phytase could be purified from one liter of culture fluid. The activity of the resulting phytase was 9.5 U/mg. Due to the heavy glycosylation, the expressed phytase varied in size (120, 95, 85, and 64 kDa), but could be deglycosylated to a homogeneous 64 kDa species. An enzymatic kinetics analysis showed that the phytase had two pH optima (pH 2.0 and pH 5.0) and an optimum temperature of $60^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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