Suspension culture is a useful tool for culturing embryonic stem (ES) cells in large-scale, but the stability of pluripotency and karyotype has to be maintained $in$$vitro$ for clinical application. Therefore, we investigated whether the chromosomal abnormality of ES cells was induced in suspension culture or not. The ES cells were cultured in suspension as a form of aggregate with or without mouse embryonic fibroblasts (MEFs), and 0 or 1,000 U/ml leukemia inhibitory factor (LIF) was treated to suspended ES cells. After culturing ES cells in suspension, their karyotype, DNA content, and properties of pluripotency and differentiation were evaluated. As a result, the formation of tetraploid ES cell population was significantly increased in suspension culture in which ES cells were co-cultured with both MEFs and LIF. Tetraploid ES cell population was also generated when ES cells were cultured alone in suspension regardless of the existence of LIF. On the other hand, the formation of tetraploid ES cell population was not detected in LIF-free condition, in which MEFs were included. The origin of tetraploid ES cell population was turned out to be E14 ES cells and not MEFs by microsatellite analysis and the basic properties of them were still maintained despite ploidy-conversion to tetraploidy. Furthermore, we identified the ploidy shift from tetraploidy to near-triploidy as tetraploid ES cells were differentiated spontaneously. From these results, we demonstrated that suspension culture system could induce ploidy-conversion generating tetraploid ES cell population. Moreover, optimization of suspension culture system may make possible mass-production of ES cells.
The suspension culture of an anchorage-dependent cell line (Bok-l) from Bombina orientalis was successful in respects of cost and efficiency. The amount of cells obtained from the suspension culture was almost equivalent to that from the anchorage-dependent culture. This result shows the possibility of suspension culture for scale-up. The cells in suspension produced an antibacterial peptide as much as anchorage-dependent cells did. The cell growth ($6.0\times10^6cells/m\ell$) and viability (>80%) at 10 rpm were higher than that at 0 rpm ($1.9\times10^6cells/m\ell$, 65~80%) and 30 rpm ($1.8\times10^6cells/m\ell$ 40~76%). The size of cells became smaller at the agitation rate of 30 rpm. The antibacterial activities of cell extracts from suspension cultured cells were confirmed against gram-negative and gram-positive bacteria by the inhibition zone assay and the liquid growth inhibition assay.
In the present study, the protective effects of Bcl-2 over-expression in a suspension culture (without any adaptation) and spent medium (low nutrient and high toxic metabolite conditions) were investigated. In the suspension culture without prior adaptation, the viability of the control cell line fall to 0% by day 7, whereas the Bcl-2 cell line had a viability of 65%. The difference in the viability and viable cell density between the Bcl-2 and control cell lines was more apparent in the suspension culture than the static culture, and became even more apparent on day 6. Fluorescence microscopic counting revealed that the major mechanism of cell death in the control cell line in both the static and suspension cultures was apoptosis. For the Bcl-2 cell lines, necrosis was the major mode of cell death in the static culture, but apoptosis became equally important in the suspension culture. When the NS0 6A1 cell line was cultured in spent medium taken from a 14 day batch culture, the control cell line almost completely lost its viability by day 5, whereas, the Bcl-2 still had a viability of 73%. The viable cell density and viability of the Bcl-2 cell line cultivated in fresh medium were 2.2 and 2.7 fold higher, respectively, than those of the control cultures. However, the viable cell density and viability of the Bcl-2 cultivated in the spent medium were 8.7 and 7.8 fold higher, respectively, than those of the control cultures. Most of the dead cells in the control cell line were apoptotic; whereas, the major cell death mechanisms in the Bcl-2 cell line were necrotic.
Callus and cell suspension cultures of Eurycoma longifolia Jack could be an alternative supply of 9-hydroxycanthin-6-one and 9-methoxycanthin-6-one. The callus tissues were initiated from leaves of different trees. The friable calli were used for the preparation of the cell suspension cultures of E. longifolia. The leaf explant of tree Eu-9 produced the most callus and also induced high cell biomass in the cell suspension culture, but it produced low quantity of 9-methoxycanthin- 6-one and 9-hydroxycanthin-6-one. The leaf explant from tree Eu-8 produced low quantity of callus and cell biomass, but produced the highest quantity of 9-methoxycanthin- 6-one and 9-hydroxycanthin-6-one. Optimum production of cell biomass was obtained on cell culture medium with pH 5.75 prior to autoclaving, but high alkaloids content could be induced in culture medium in acidic condition with pH 4.75 and 5.25 prior to autoclaving.
Prakash Gunjan;Emmannuel C.J.S.K.;Srivastava Ashok K.
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제10권3호
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pp.198-204
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2005
Seeds of neem were collected from different parts of India and analyzed for their azadirachtin content by High Performance Liquid Chromatography (HPLC). In order to assess the effects of genotypic and geographical variation on azadirachtin content in cell cultures, callus development was attempted in the seeds containing high and low concentration of azadirachtin. The concentration of azadirachtin in callus cultures was significantly affected by the explant source. Seed kernels with higher azadirachtin content produced higher azadirachtin content in callus cultures and lower azadirachtin content was seen in callus cultures produced from seed kernels with low azadirachtin content. The protocol for development of elite stock culture of Azadirachta indica was established with the objective of selecting a high azadirachtin-producing cell line. The highest azadirachtin-producing cell line was selected and the effects of different media and illumination conditions on growth and azadirachtin production were studied in shake flask suspension culture. Detailed batch growth kinetics was also established. These studies provided elite starter culture and associated protocols for cultivation of A. indica plant cell culture in the bioreactor.
Aconitine alkaloids produced from cell suspension cultures of Aconitum napellus for the first time. The effects of various culture conditions on cell biomass and aconitine accumulation in cell suspension cultures were investigated. Suspension cell cultures of A. napellus were established by transferring callus tissues from leaf explants onto liquid MS medium supplemented with $1\;mg/l$ NAA and $0.1\;mg/l$ kinetin. Among the culture media tested, MS medium had a pronounced effect on cell growth and aconitine accumulation. The maximum dry cell weight was obtained at inoculum size of 3 g (FCW) per flask and in MS medium supplemented with 5% sucrose after 8 weeks. The addition of salicylic acid (SA) and yeast extract (YE) in the MS medium enhanced aconitine accumulation. Using a proper combination of culture condition and supplements, aconitine content could reach 0.043% (dry weight basis), that was $2.5{\sim}3$ fold higher that detected in control cultures.
Interleukin-18 (IL-18), otherwise known as interferon-gamma-inducing factor (IGIF), is one of several well characterized and important cytokines that contribute to host defenses. The complementary DNA (cDNA) of mature human interleukin-18 gene (hIL-18) was fused with the signal peptide of the rice amylase 1A gene (Ramy1A) and introduced into the plant expression vector under the control of a duplicated CaMV 35S promoter. The recombinant plasmid was transformed into tobacco (Nicotiana tabacum L. cv Havana) using the Agrobacterium-mediated transformation method. The integration of the hlL-18 gene into the genome of transgenic tobacco plants was confirmed by polymerase chain reaction (PCR) amplification and its expression was observed in the suspension cells that were derived from the transgenic plant callus by using Northern blot analysis. The hlL-18 protein was detected in the extracts of the transgenic callus and in the medium of the transgenic tobacco suspension culture by using immunoblot analysis. Based upon enzyme-linked immunosorbant assay (ELISA) results, the expression level of the hlL-18 protein approximated $166{\mu}g/L$ in the suspension culture medium. Bioassay results from the induction of $interferon-{\gamma}$ from a KG-1 cell line indicated that the hlL-18 secreted into the suspension culture medium was bioactive.
Siregar Luthfi Aziz Mahmud;Chan Lai-Keng;Boey Peng-Lim
Journal of Plant Biotechnology
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제5권2호
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pp.131-135
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2003
Callus and cell suspension cultures of Eurycoma longifolia Jack were initiated from leaves of different trees. The leaf explant of tree Eu9 produced the most calli and also induced high cell biomass in the cell suspension culture. Optimum production of cell biomass could be initiated in proliferating culture medium with a pH of 5.75 prior to autoclaving. The effects of macronutrient inorganic salts of Murashige and Skoog (MS) liquid medium supplemented with X on production of cell biomass of Eurycoma longifolia were also investigated. The highest cell biomass was produced in MS medium containing macronutrients of $21\;mM\;NH_4NO_3,\;12.25\;mM\;KNO_3,\;3.00\;mM\;CaCl_2.2H_2O,\;0.575\;mM\;MgSO_4.7H_2O$, and $1.83\;mM\;KH_2PO_4$. A new medium labeled as TAM was formulated for the production of Eurycoma longifolia cell biomass in the cell suspension culture.
Cell growth and gomisin J production by suspension cultures of Schisandra chinensis Baillon were investigated under various culture media, initial sucrose concentrations, shaking speeds, and inoculum sizes. Callus was induced from in vitro cultivated leaf segments on MS medium supplemented with $1\;mg/{\ell}$ NAA. The maximum dry cell weight of 2.23 g was obtained at inoculum size of 0.5 g fresh cell weight and in MB5 medium supplemented with $1\;mg/{\ell}$ NAA, 3% sucrose after 8 weeks. The production of gomisin J in suspension cell cultures was maximized in WPM medium containing 5% sucrose. The shaking speed for maintaining maximal cell dry weight was 100 rpm while the best shaking speed for gomisin J accumulation was 140 rpm.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제9권2호
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pp.173-181
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2004
To delay the onset of apoptosis in the culture, transformed Tn 5B1-4 cells harboring anti-apoptotic genes, bcl-2 and baculovirus p35, have been established and analyzed for their anti-apoptotic ability in suspension culture using spinner flasks. In the suspension culture at agitation speeds of 100 rpm and 200 rpm, the cell growth of cell clone expressing Bcl-2 protein was much higher than other two clones and the maximum cell density of the clone was 6.0 ${\times}$ 10$^{6}$ cells/ml and 6.2 ${\times}$ 10$^{6}$ cells/ml at day three of the incubation. On the other hand, the cell growth of cell clone expressing baculovirus protein P35 was much higher than other two clones in suspension culture at agitation speed of 300 rpm and the maximum cell density of the clone was 6.1 ${\times}$ 10$^{6}$ cells/ml at day three of the incubation. Based on the pattern of genomic DNA laddering and the microscopic observation of apoptotic bodies, the more apoptotic bodies are induced in Tn 5B1-4 control cell clone at higher agitation speed. This result shows that the shear stress can be a main factor in inducing apoptosis in spinner flask culture. At low agitation speed, cell clone expressing Bcl-2 was more effective in delaying the onset of apoptosis than the cell clone expressing P35. On the other hand, at high agitation speed, cell clones expressing baculovirus P35 was more effective in delaying the onset of apoptosis than the cell clone expressing Bcl-2. Therefore, anti-apoptotic genes, bcl-2 and baculovirus p35, can playa distinct role depending on agitation speed in the suspension culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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