Two fibrinolytic enzymes were purified from the culture supernatant of Fomitella fraxinea mycelia by ion-exchange and gel filtration chromatographies, and were designated as F. fraxenia proteases 1 and 2 (FFP1 and FFP2). The apparent molecular masses of the enzymes were estimated to be 32 kDa and 42 kDa, respectively, by SDS-PAGE and gel filtration chromatography. Both enzymes had the same optimal temperature ($40^{\circ}C$), but different pH optima (10.0 and 5.0 for FFP1 and FFP2, respectively). FFP1 was relatively stable at pH 7.0-9.0 and temperature below $30^{\circ}C$, whereas FFP2 was very stable in the pH range of 4-11 and temperature below $40^{\circ}C$. FFPI activity was completely inhibited by phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) and aprotinin, indicating that this enzyme is a serine protease. The activity of FFP2 was enhanced by the addition of $CO^{2+}$ and $Zn^{2+}$ and inhibited by $Cu^{2+},\;Ni^{2+}$, and $Hg^{2+}$. Furthermore, FFP2 activity was strongly inhibited by EDTA and 1,10-phenanthroline, implying that the enzyme is a metalloprotease. Both enzymes readily hydrolyzed fibrinogen, preferentially digesting the $A{\alpha}$- and $B{\beta}$-chains of fibrinogen over ${\gamma}$-chain. FFP1 showed broad substrate specificity for synthetic substrates, but FFP2 did not. $K_{m}$ and $V_{max}$ values of FFP1 for a synthetic substrate, N-succinyl-Ala-Ala-Pro-Phe-pNA, were 0.213 mM and 39.68 units/ml, respectively. The first 15 amino acids of the N-terminal sequences of both enzymes were APXXPXGPWGPQRIS and ARPP(G)VDGQ(R,I)SK(L)ETLPE, respectively.
A protease, which had no tryptic and chymotryptic activity, was purified from the hepatopancreas of shrimp, P. japonicus, through ammonium sulfate fractionation, QSepharose ionic exchange, benzamidine Sepharose 6B affinity, and Sephacryl S-100 gel chromatography. Molecular weight (M.W.) of the protease was estimated to be 24 kDa by gel filtration and showed a single peptide band by sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The protease had a low ratio of acidic to basic amino acids, which is different with pro teases from marine animals. The enzyme was partially inhibited by benzamidine, tosyl-L-lysine chioromethyl ketone (TLCK), phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), soybean trypsin inhibitor (SBTI), and pepstatin. The enzyme did not have any activity against benzoyl-D,L-arginine p-nitroanilide (BAPNA) or benzoyl-L-tyrosine ethyl ester (BTEE) which is a specific substrate of trypsin and chymotrypsin, respectively. However, the enzyme showed activity forward N-CBZ-L-tyrosine p-nitrophenyl ester (CBZ-Tyr-pNE), NCBZ-L-tryptophan p-nitrophenyl ester (CBZ-Trp-pNE), and N-CBZ-L-proline p-nitrophenyl ester (CBZ-Pro-pNE). The protease did not showed tryptic and chymotryptic activity, which was not reported in shrimp hepatopancreas.
쌀의 생전분(生澱粉) 상태와 호화전분(糊化澱粉) 상태에 대한 전분분해효소의 작용특성과 이용방법(利用方法)을 조사하기 위하여 생전분과 호화전분에 세균성 ${\alpha}-amylase$ 및 glucoamylase를 처리하고, 생성되는 당의 종류를 정량하였다. 생전분에 ${\alpha}-amylase$를 작용시켰을 때에는 glucose(45%), maltese(33%), maltotriose(19%), maltotetrose 이상의 당류(3%) 등의 순서로 생성되었고, 호화전분에 작용(作用)했을 때에는 maltotriose(31%), maltose(31%), maltotetrose 이상의 고당류 (22%), glucose (15%)의 순서로 생성(生成)되었다. 한편 glucoamylase를 처리하였을 때에는 생전분과 호화전분에서 다같이 주로 glucose가 생성되었다. 전자현미경으로 분해된 상태를 확인한 결과, 생전분은 ${\alpha}-amylase$에 의하여 pinhole이 생성되고 전분입자의 표면침식이 잘되있고, 호화전분은 입자의 중앙부위에 공동(空洞)이 생성(生成)되었다. 이상의 결과(結果)로 보아 세균성 ${\alpha}-amylase$는 생전분 입자의 표면에 작용하여 말단기부터 glucose 및 maltose 단위로 분해하며 호화된 전분입자에는 임의의 장소에서 전분을 가수분해함을 알 수 있었다.
Lee, Hyun Woo;Jung, Won Kyeong;Kim, Yong Ho;Ryu, Bum Han;Kim, T. Doohun;Kim, Jungho;Kim, Hoon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제26권2호
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pp.315-325
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2016
A novel esterase gene, est7K, was isolated from a compost metagenomic library. The gene encoded a protein of 411 amino acids and the molecular mass of the Est7K was estimated to be 44,969 Da with no signal peptide. Est7K showed the highest identity of 57% to EstA3, which is an esterase from a drinking water metagenome, when compared with the enzymes with reported properties. Est7K had three motifs, SMTK, YSV, and WGG, which correspond to the typical motifs of family VIII esterases, SxxK, Yxx, and WGG, respectively. Est7K did not have the GxSxG motif in most lipolytic enzymes. Three additional motifs, LxxxPGxxW, PLGMxDTxF, and GGxG, were found to be conserved in family VIII enzymes. The results of the phylogenetic analysis and the alignment study suggest that family VIII enzymes could be classified into two subfamilies, VIII.1 and VIII.2. The purified Est7K was optimally active at 40ºC and pH 10.0. It was activated to exhibit a 2.1-fold higher activity by the presence of 30% methanol. It preferred short-length p-nitrophenyl esters, particularly p-nitrophenyl butyrate, and efficiently hydrolyzed glyceryl tributyrate. It did not hydrolyze β-lactamase substrates, tertiary alcohol esters, glyceryl trioleate, fish oil, and olive oil. Est7K preferred an S-enantiomer, such as (S)-methyl-3-hydroxy-2-methylpropionate, as the substrate. The tolerance to methanol and the substrate specificity may provide potential advantage in the use of the enzyme in pharmaceutical and other biotechnological processes.
Simila, Janika;Gernig, Anita;Murray, Patrick;Fernandes, Sara;Tuohy, Maria G.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제20권12호
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pp.1653-1663
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2010
The first gene (${\alpha}$-gal1) encoding an extracellular ${\alpha}$-Dgalactosidase from the thermophilic fungus Talaromyces emersonii was cloned and characterized. The ${\alpha}$-gal1 gene consisted of an open reading frame of 1,792 base pairs interrupted by six introns that encoded a mature protein of 452 amino acids, including a 24 amino acid secretory signal sequence. The translated protein had highest identity with other fungal ${\alpha}$-galactosidases belonging to glycosyl hydrolase family 27. The ${\alpha}$-gal1 gene was overexpressed as a secretory protein with an N-terminal histidine tag in the methylotrophic yeast Pichia pastoris. Recombinant ${\alpha}$-Gal1 was secreted into the culture medium as a monomeric glycoprotein with a maximal yield of 10.75 mg/l and purified to homogeneity using Hisbinding nickel-agarose affinity chromatography. The purified enzyme was maximally active at $70^{\circ}C$, pH 4.5, and lost no activity over 10 days at $50^{\circ}C$. ${\alpha}$-Gal1 followed Michaelis-Menten kinetics ($V_{max}\;of\;240.3{\mu}M/min/mg,\;K_m\;of\;0.294 mM$) and was inhibited competitively by galactose ($K_m{^{obs}}$ of 0.57 mM, $K_i$ of 2.77 mM). The recombinant T. emersonii ${\alpha}$-galactosidase displayed broad substrate preference, being active on both oligo- and polymeric substrates, yet had strict specificity for the ${\alpha}$-galactosidic linkage. Owing to its substrate preference and noteworthy stability, ${\alpha}$-Gal1 is of particular interest for possible biotechnological applications involving the processing of plant materials.
The NS2B-NS3(pro) polyprotein segment from the dengue virus serotype 2 strain 16681 was purified from overexpressing E. coli by metal chelate affinity chromatography and gel filtration. Enzymatic activity of the refolded NS2B-NS3(pro) protease complex was determined in vitro with dansyl-labeled peptide substrates, based upon native dengue virus type 2 cleavage sites. The 12mer substrate peptides and the cleavage products could be separated by reversed-phase HPLC, and were identified by UV and fluorescence detection. All of the peptide substrates (representing the DEN polyprotein junction sequences at the NS2A/NS2B, NS2B/NS3, NS3/NS4A and NS4B/NS5 sites) were cleaved by the recombinant protease NS2B-NS3(pro). No cleavage was observed with an enzymatically inactive S135A mutant of the NS3 protein, or with a modified substrate peptide of the NS3/NS4A polyprotein site that contained a K2093A substitution. Enzymatic activity was dependent on the salt concentration. A 50% decrease of activity was observed in the presence of 0.1M sodium chloride. Our results show that the NS3 protease activity of the refolded NS2B-NS3(pro) protein can be assayed in vitro with high specificity by using cleavage-junction derived peptide substrates.
신경수초 염기성 단백질(MBP)에 대한 탈인산화의 자리 특이성에 대한 연구를 시험관에서 수행하였다. MBP에서 인산화된 자리를 알아내기 위해서 MBP를 단백질 키나제 C로 인산화 시키고 단백질 탈인산화 효소 PP2A로 탈인산화시켰다. 인산화된 MBP는 트립신으로 잘라내어서 역상 HPLC 크로마토그래피로 펩티드 조각들을 분리하였다. 각 조각들을 섬광 계측한 후 일부 펩티드의 아미노산 서열을 결정하였다. 일곱 개의 방사능을 보이는 펩티드 조각이 검출되었으며 두번째 조각($P_2$)의 $Ser^{55}$에 해당하는 아미노산이 인산화 반응에 가장 큰 민감도를 보였다. 그러나 탈인산화는 다섯번째 고작($P_5$)의 인산이 가장 잘 방출되는 것으로 나타났다. 이 결과는 MBP가 단백질 탈인산화 반응에 적절한 기질임을 보여주고 있다.
Kim, Sung-Moon;Jang, Sang-Ho;Son, Na-Rae;Han, Ching-Tack;Min, Kwan-Sik;Lee, Hak-Kyo;Hwang, Sue-Yun
Animal cells and systems
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제16권4호
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pp.280-288
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2012
Targeted degradation of proteins through ubiquitin-mediated proteolysis is an important control mechanism in various cellular processes. The process of ubiquitin conjugation is achieved by three enzyme complexes, among which the ubiquitin ligase complex (E3) is in charge of substrate specificity. The SCF (SKP1-CUL1-F-box) family portrays the largest and the most characterized member of the E3 ligases. For each SCF complex, the ubiquitination target is recognized by the F-box protein subunit, which interacts with the substrate through a unique C-terminal domain. We have characterized a novel F-box protein CFL-1 that represents a single LRR-type F-box (FBXL) in the Caenorhabditis elegans genome. CFL-1 is highly homologous to FBXL20 and FBXL2 of mammals, which are known to regulate synaptic vesicle release and cell cycle, respectively. A green fluorescence protein (GFP)-reporter gene fused to the cfl-1 promoter showed restricted expression around the amphid and the anus. Modulation of CFL-1 activity by RNAi affected the time interval between defecations. RNAi-treated worms also exhibited reduced tendency to form dauer when exposed to daumone. The potential involvement of CFL-1 in the control of defecation and pheromone response adds to the ever expanding list of cellular processes controlled by ubiquitin-mediated proteolysis in C. elegans. We suggest that CFL-1, as a single LRR-type F-box protein in C. elegans, may portray a prototype gene exerting diverse functions that are allocated among multiple FBXLs in higher organisms.
세균은 지방을 분해할 수 있는 다양한 리파제를 생산한다. 리파제는 반응조건에 따라서 지방의 합성도 수행할 수 있는데 , 이러한 효소반응과정에서 고도의 기질특이성과 위치특이성 및 입체특이성을 보이기 때문에 제약산업과 정밀화학산업에서 효소촉매로서 널리 사용되고 있다. 지금가지 200종류 이상의 리파제효소가 보고되었으며, 이것들은 효소생산기원과 아미노산 상동성을 기준으로 6개의 family로 분류된다. 지난 10년 간 세균 리파제 6종에 대한 3D구조가 밝혀졌다. 이것들은 모두 중심부분에$\alpha/\beta$폴딩구조와 세린, 히스티딘, 아스팔틴산으로 구성된 활성부위를 공통적으로 갖고 있다. 활성부위를 양친성 $\alpha$나선구조가 뚜껑처럼 덮고 있으며, 물과 오일의 경계면을 만나면, 이 뚜껑이 열리고 효소활성이 크게 증가하는 '계면활성화' 현상을 보인다. P. cepacia 리파제 구조에는 기질과 결합하는 4개의 포켓이 있는데 이중 하나는 옥시음이온 구멍이고, 다른 세 개는 기질의 sn-1, sn-2, sn-3 지방산과 결합하는 부위이다. 이 포켓의 크기와 방향 및 소수성정도에 의해서 효소의 기질특이성과 입체특이성이 결정된다. 현재 이러한 구조연구를 기반으로 사용목적에 따른 맞춤 효소를 생산하기 위한 효소 개량연구가 활발히 진행되고 있다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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