Chondroitin sulfate proteoglycan (CSPG) inhibits neurite outgrowth of various neuronal cell types, and CSPG-associated inhibition of neurite outgrowth is mediated by the Rho/ROCK pathway. Mesenchymal stromal/stem cells (MSCs) have the potential to differentiate into neuron-like cells under specific conditions and have been shown to differentiate into neuron-like cells by co-treatment with the ROCK inhibitor Y27632 and the hypoxia condition mimicking agent $CoCl_2$. In this study, we addressed the hypothesis that a ROCK inhibitor might be beneficial to regenerate neurons during stem cell therapy by preventing transplanted MSCs from inhibition by CSPG in damaged tissues. Indeed, dose-dependent inhibition by CSPG pretreatment was observed during morphological changes of Wharton's jelly-derived MSCs (WJ-MSCs) induced by Y27632 alone. The formation of neurite-like structures was significantly inhibited when WJ-MSCs were pre-treated with CSPG before induction under Y27632 plus $CoCl_2$ conditions, and pretreatment with a protein kinase C inhibitor reversed such inhibition. However, CSPG treatment resulted in no significant inhibition of the WJ-MSC morphological changes into neuron-like cells after initiating induction by Y27632 plus $CoCl_2$. No marked changes were detected in expression levels of neuronal markers induced by Y27632 plus $CoCl_2$ upon CSPG treatment. CSPG also blocked the morphological changes of human bone marrow-derived MSCs into neuron-like cells under other neuronal induction condition without the ROCK inhibitor, and Y27632 pre-treatment blocked the inhibitory effect of CSPG. These results suggest that a ROCK inhibitor can be efficiently used in stem cell therapy for neuronal induction by avoiding hindrance from CSPG.
Glutathione (GSH), the main cellular antioxidant, dynamically influences tumor growth, metastasis, and resistance to therapy in the tumor microenvironment (TME), which comprises cancer cells, immune cells, stromal cells, and non-cellular components, including the extracellular matrix, metabolites, hypoxia, and acidity. Cancer stem cells (CSCs) and T cells are minor but significant cell subsets of the TME. GSH dynamics influences the fate of CSCs and T cells. Here, we explored GSH dynamics in CSCs and T cells within the TME, as well as therapeutic approaches that could target these dynamics.
Human embryonic stem (ES) cells are derived from the inner cell mass of the preimplantation embryo and have the capacity to differentiate into various types of cells in the body. Hence, these cells may potentially be an indefinite source of cells for cell therapy in various degenerative diseases including neuronal disorders. For clinical applications of human ES cells, directed differentiation of these cells would be necessary. The objective of this study is to develop the culture condition for the expansion of neural precursor cells derived from human ES cells. Human ES cells were able to differentiate into neural precursor cells upon a stepwise culture condition. Neural precursor cells were propagated up to 5000-fold in cell numbers over 12-week period of culture and evaluated for their characteristics. Expressions of sox1 and pax6 transcripts were dramatically up-regulated along the differentiation stages by RT-PCR analysis. In contrast, expressions of oct4 and nanog transcripts were completely disappeared in neural precursor cells. Expressions of nestin, pax6 and sox1 were also confirmed in neural precursor cells by immunocytochemical analysis. Upon differentiation, the expanded neural precursor cells differentiated into neurons, astrocytes, and oligodendrocytes. In immunocytochemical analysis, expressions of type III ${\beta}$-tubulin and MAP2ab were observed Presence of astrocytes and oligodendrocytes were also confirmed by expressions of GFAP and O4, respectively. Results of this study demonstrate the feasibility of long-term expansion of human ES cell-derived neural precursor cells in vitro, which can be a potential source of the cells for the treatment of neurodegenerative disorders.
Min, Joongkee;Kim, Jeong Hoon;Choi, Kyoung Hyo;Yoon, Hyung Ho;Jeon, Sang Ryong
Journal of Korean Neurosurgical Society
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v.60
no.4
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pp.404-416
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2017
Objective : Functional and neural tissue recovery has been reported in many animal studies conducted with stem cells. However, the combined effect of cytokines and stem cells has not yet been adequately researched. Here, we analyzed the additive effects of granulocyte colony-stimulating factor (GCSF) on adipose-derived stem cells (ADSCs) infusion in the treatment of acute spinal cord injury (SCI) in rats. Methods : Four days after intrathecal infusion tubes implantation in Sprague-Dawley rats, SCI was induced with an infinite horizon impactor. In the Sham group (n=5), phosphate-buffered saline was injected 3, 7, and 14 days after SCI. GCSF, ADSCs, and ADSCs with GCSF were injected at the same time in the GCSF (n=8), ADSC (n=8), and ADSC+GCSF groups (n=7), respectively. Results : The ADSC and ADSC+GCSF groups, but not the GCSF group, showed significantly higher Basso-Beattie-Bresnahan scores than the Sham group during 8 weeks (p<0.01), but no significant difference between the ADSC and ADSC+GCSF groups. In the ladder rung test, all four groups were significantly different from each other, with the ADSC+GCSF group showing the best improvement (p<0.01). On immunofluorescent staining (GAP43, MAP2), western blotting (GAP43), and reverse transcription polymerase chain reaction (GAP43, nerve growth factor), the ADSC and ADSC+GCSF groups showed higher levels than the Sham and GCSF groups. Conclusion : Our analyses suggest that the combination of GCSF and ADSCs infusions in acute SCI in the rat does not have a significant additive effect. Hence, when combination agents for SCI stem cell therapy are considered, molecules other than GCSF, or modifications to the methodology, should be investigated.
Kim, Yeon-Ju;Ji, Seung Taek;Kim, Da Yeon;Jung, Seok Yun;Kang, Songhwa;Park, Ji Hye;Jang, Woong Bi;Yun, Jisoo;Ha, Jongseong;Lee, Dong Hyung;Kwon, Sang-Mo
Molecules and Cells
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v.41
no.6
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pp.582-590
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2018
Endothelial progenitor cells (EPCs) and outgrowth endothelial cells (OECs) play a pivotal role in vascular regeneration in ischemic tissues; however, their therapeutic application in clinical settings is limited due to the low quality and quantity of patient-derived circulating EPCs. To solve this problem, we evaluated whether three priming small molecules (tauroursodeoxycholic acid, fucoidan, and oleuropein) could enhance the angiogenic potential of EPCs. Such enhancement would promote the cellular bioactivities and help to develop functionally improved EPC therapeutics for ischemic diseases by accelerating the priming effect of the defined physiological molecules. We found that preconditioning of each of the three small molecules significantly induced the differentiation potential of $CD34^+$ stem cells into EPC lineage cells. Notably, long-term priming of OECs with the three chemical cocktail (OEC-3C) increased the proliferation potential of EPCs via ERK activation. The migration, invasion, and tube-forming capacities were also significantly enhanced in OEC-3Cs compared with unprimed OECs. Further, the cell survival ratio was dramatically increased in OEC-3Cs against $H_2O_2$-induced oxidative stress via the augmented expression of Bcl-2, a pro-survival protein. In conclusion, we identified three small molecules for enhancing the bioactivities of ex vivo-expanded OECs for vascular repair. Long-term 3C priming might be a promising methodology for EPC-based therapy against ischemic diseases.
Natural Killer (NK) cells are the lymphocytes that are derived from hematopoietic stem cells, developed in the bone marrow from hematopoietic stem cells (HSC) by sequential acquisition of functional surface receptors, and express the repertoire of inhibitory and activating receptors. Recently, Osteopontin (OPN) has been identified as a critical factor for differentiation of natural killer cells. However, the detailed mechanism of OPN-induced NK differentiation has been still to be elucidated. Here, we determined the signaling pathway and possible receptor for OPN in NK differentiation. OPN induced expression of Bcl-2 and activation of Erk kinase. Inhibition of Erk pathway decreased the effect of OPN on NK differentiation. In addition, the expression of integrin ${\alpha}9$ was significantly increased by OPN during NK differentiation, suggesting the possible role of a major signaling molecule for OPN- induced NK differentiation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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