In order to establish efficient plant regeneration from embryogenic suspension cultures of soybean, Glycine max L, we examined the effects of auxin type and concentration, cytokinin type and concentration, and amino acid type and concentration on the growth of embryogenic clumps from induced callus, and the effect of desiccation of mature somatic embryos obtained from these clumps on the frequency of somatic embryo germination. Embryogenic callus was induced from the edge of the cotyledons cultured on MS medium containing 6% sucrose, 40 mg/L 2,4-D, 0.2% gelrite and pH 5.7. The growth of embryogenic clumps was best in early staged, embryogenic callus that was placed in suspension culture of MS medium containing 5 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L asparagine. Single somatic embryos were isolated from the clumps and plated on the same medium for maturation. When the mature single somatic embryos were desiccated for 96 h, somatic embryo germination came up to approximately 90%. The plantlets germinated after embryos desiccation for 2 weeks were transfered to MS medium containing 3% sucrose,0.2% gelrite and pH 5.7.
Callus induction and somatic embryogenesis are fundamental to cotton tissue culture biotechnology. An efficient protocol for callus induction, somatic embryogenesis and their maturation have been developed to regenerate plantlets from cotton (Gossypium hirsutum L.) variety coker 312. Embryogenic callus was initiated from hypo-cotyl region that was used as an explant at seedling stage when it was about 7-8 days old. Callus induction was achieved through culturing hypocotyls (5-7mm) on $MS_{1a} medium supplemented with 2,4-D (0.1 mg/L) and KT (0.5 mg/L) for six weeks. A friable, colorless, bulky and well proliferating callus becomes greenish with the addition of NAA (2.0 mg/L), ZT (0.1 mg/L) and removal of 2,4-D (M $S_{1b}$) cultured for two weeks then again transferred to $MS_{1a}. 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) promoted the proliferation of embryogenic callus, but had a negative effect on the differentiation and germination of somatic embryos. ZT (0.1mg/L) and activated charcoal (2g/L), both hormones play an important role in differentiation and germination of somatic embryos in hypocotyls derived embryogenic callus but in case of cotton, such a capability have been observed on MS medium with 1.92 g/L $KNO_3$, but it is considered to attain somewhat more improvement. High embryogenesis frequency was achieved through nutrient deficient stress treatment. The frequency of globular embryogenesis (two-three folds) was achieved when well proliferating callus was (from $MS_{1a}$ media) cultured on MS (1/5 strength) medium for four weeks. Here the development of anthocyanins is the best indicator for somatic embryogenesis. However, when embryoid callus was cultured on MS (full strength) medium, the globular embryos were developed into normal plantlets immediately. In this procedure 27.49% cotyledenary embryos were developed. Of that 70% cotyledenary embryos were developed not only into normal plantlets but rooted simultaneously, when cultured on MS (with 0.05 mgg/L giberrelic acid) medium. So complete plants could be regenerated through somatic embryogenesis from hypocotyl explants within 6 months.s.
Zygotic embryos just after harvest of seeds were immature globular to heart stage. Maturation of zygotic embryos rapidly proceed when zygotic embryos together with small excised parts of endosperm were cultured on 1/3-strength MS solid medium with 2% sucrose, and the zygotic embryos were germinated within two months. Embryogenic callus was formed from the excised segments of germinating zygotic embryos of Eleutherococcus pedunclus on Murashige and Skoog (MS) medium with $4.5{\mu}M$ 2,4-D. The embryogenic callus formation occurred at a low frequency (less than 7%) from hypocotyl segments. The embryogenic calli were maintained on the same medium as primary medium. High frequency somatic embryogenesis was obtained after the cells were transferred to medium lacking 2,4-D. Cotyledonary embryos were germinated and converted into plantlets on medium with $20{\mu}M$$GA_3$. Embryogenic callus and somatic embryos were produced spontaneously on the surfaces of roots and/or hypocotyls of plantlets. The frequency of embryogenic callus formation was 85% in roots and 34% in hypocotyls. Therefore maintain of cell lines performed very easily. Plantlets with developed epicotyls at more than 3 cm acclimatized at high frequency (89%). While plantlets with small epicotyls (less than 1 cm) were acclimatized at low rate (32%). The soil survived plantlets produced new sprouts after over wintering in the field.
This study was carried out to investigate the appropriate medium and constitutionof growth regulators for somatic embryogenesis for development of rapid mass propagation system via somatic embrygenesis in Rehmennia glutinosa. Embryogenic callus formation from leaf explant was more effective when 4mg / l BA with 0.5mg / l NAA than that of treated with only auxins or cytokinins. LS medium was suitable for embryogenic callus formation. LS medium with 4mg / l BA with 0.5mg / l NAA was effective for the maintenance and proliferation of embryogenic callus. In suspension culture, addition of 1mg / l BA to LS medium was proper for somatic embryogenesis. The highest rate of shoot developement form cotyledon stage embryo was obtained in 1/2 LS medium and plantlet survived by 75% after transplanted to the soil. after 4 weeks.
Cotyledonary and hypocotyl explants of melon seedlings were cultured on Murashige and Skoog's (MS) medium supplemented with various concentrations of 2,4-Dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) and benzyladenine (B.A).Up to 22% of cotyledonary explants and 7%, of hypocotyl explants, respectively: Produced somatic embryos through intervening two types of calli: bright yellow compact (BYC) callus and pale-yellow compact (PYC) callus. BYC callus was capable of producing somatic embryos at initial culture, but it became necrotic as subrulhues proceeded. In contrast UC callus was incapable of producing somatic embryos during initial culture (first 6 weeks), but it became bright-yellow friable (BYF) callus with forming a few globular embryos after 2 months of subculture, indicating that the callus turned embryogenic. The embryogenic capacity of BYF maintained for over one year when the callus was sucultured at 4-week interval. Upon transfer onto MS basal medium the callus gave rise to numerous somatic embryos and subsequently converted to plantlets. Plantlets were transplanted to potting soil and grown to maturity in the phyotron.
For the induction of somatic embryogenic callus, the penduncle explants of Corydalis remota for peatinata were cultured on MS basal media supplemented with 2,4-D, kinetin and zeatin. The highest embryogenic callus formation was observed on the media containing 2.0 mg/L of 2,4-D and 2.0 mg/L of zeatin. The somatic embryogenesis on the media with 0.5 mg/L of cytokinin (zeatin or kinetin) were excellent under light condition, however somatic embryos abnormally developed into plantlets. Normal dicotyledonary plantlets were found on MS medium supplemented with 1.0 mg/L of zeatin. When MS medium with 2,4-D plus cytokinin and with BAP were used, the secondary somatic embryogenesis took place in root explants of the regenerants derived from in vitro somatic embryogenic callus.
Callus induction and embryogenesis were studied in three different genotypes of Acanthopanax senticosus, to develop a protocol for somatic embryogenesis and acclimatization. Young leaf, stem, node, petiole, peduncle, flower and root explants were collected from 3-year old trees of A. senticosus accessions (Korea, Russia and Japan). Callus was obtained from all cultured explants but showed the higher rate of callus formation in flower cultured. For the three A. senticosus accessions, callus was well formd on MS media containing 2mg/ l of 2,4-D and 2mg/ l of TDZ, 4mg/ l of 2,4-D and 1mg/ l of TDZ than other treatments. For three A. senticosus accessions, when callus transferred to MS medium with 2,4-D, embryogenic cell formed. For A. senticosus accessions Korea, embryogenic cells were obtained on callus induced from petiole, stem, node and root explants, and induction rate was lower than 3%. 200mg of embryogenic callus was transferred to MS free liquid medium and somatic embryos of heart stage were obtained after 45days of culture. When somatic embryo of germination stage were transferred to solid medium, most of the embryos were regenerated into plantlets on 1/4 MS medium. Normal plants with both shoots and roots were transferred to greenhouse soil and were successfully acclimatized.
Somatic embryos were induced through embryogenic callus derived from immature zygotic embryo culture of native Prunus yedoensis in Mt. Halla and regenerated into plantlets successfully. Embryogenic callus was induced most effectively on MS medium with 1.0 mg/L 2, 4-D and 0.1 mg/L BAP at an efficiency of approximately 60% using 45 day-old zygotic embryos after full blooming. Globular somatic embryos were induced from embryogenic callus on MS medium with 1.0 mg/L 2, 4-D and 0.1 mg/L BAP and these globular embryos developed to heart-shaped and cotyledonary embryos on hormone-free MS medium. Normal somatic embryos germinated 49% on 1/2 MS medium and the plants regenerated from the somatic embryos were morphologically normal.
In the present study, a simple one medium formulation protocol for callus culture, somatic embryogenesis and in vitro production of ${\beta}-carboline$ alkaloids and diosgenin in Tribulus terrestris L. was developed. Extensive callus induction and proliferation was obtained in leaf explant on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with $5.0{\mu}M$ 6 benzyl adenine (BA) and $2.5{\mu}M$${\alpha}-naphthaleneacetic$ acid (NAA). The embryogenic callus was maintained on subculture to fresh parental medium at 4-week intervals over a period of 28 months. The frequency of embryo formation was at a maximum ($18.1{\pm}0.9$ per g of callus) on MS medium containing $5.0{\mu}M$ BA and $2.5{\mu}M$ NAA together with $75mg\;1^{-1}$ casein hydrolysate. Globular embryo developed into torpedo stage embryo under the influence of starvation. The accumulation of ${\beta}-carboline$ alkaloids (harmaline and harmine) and steroidal saponin (diosgenin) in non-embryogenic and embryogenic callus culture derived from leaf explant was compared with root, leaf, stem, and fruit of the mother plant. The embryogenic callus accumulated equivalent amounts of harmaline ($66.4{\pm}0.5{\mu}g/g$ dry weight), harmine ($82.7{\pm}0.6{\mu}g/g$ dry weight), and diosgenin ($170.7{\pm}1.0{\mu}g/g$ dry weight) to that of the fruit of T. terrestris. The embryogenic callus culture of this species might offer a potential source for production of important pharmaceuticals.
We describe culture conditions for a high-efficiency in vitro regeneration system of Papaver nudicaule through somatic embryogenesis and secondary somatic embryogenesis. The embryogenic callus induction rate was highest when petiole explants were cultured on Murashige and Skoog (MS) medium containing 1.0 mg $1^{-1}$${\alpha}$-naphthaleneacetic acid (NAA) and 0.1 mg $1^{-1}$ 6-benzyladenine (BA) (36.7%). When transferred to plant growth regulator (PGR)-free medium, 430 somatic embryos formed asynchronously from 90 mg of embryogenic callus in each 100-ml flask. Early-stage somatic embryos were transferred to MS medium containing 1.0 mg $1^{-1}$ BA and 1.0 mg $1^{-1}$ NAA to germinate at high frequency (97.6%). One-third-strength MS medium with 1.0% sucrose and 1.0 mg $1^{-1}$$GA_3$ had the highest frequency of plantlet conversion from somatic embryos (91.2%). Over 90% of regenerated plantlets were successfully acclimated in the greenhouse. Secondary somatic embryos were frequently induced directly when the excised hypocotyls of the primary somatic embryos were cultured on MS medium without PGRs. Sucrose concentration significantly affected the induction of secondary embryos. The highest induction rate (89.5) and number of secondary somatic embryos per explant (9.3) were obtained by 1% sucrose. Most secondary embryos (87.2-94.3%) developed into the cotyledonary stage on induction medium. All cotyledonary secondary embryos were converted into plantlets both in liquid and on semisolid 1/3-strength MS medium with 1.0% sucrose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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