Iris odaesanensis Y. N. Lee. is an important endangered and native plant belonging to the family Iridaceae in Korea. This study describes a method for rapid micropropagation of this species via from leaf, rhizome and root explants derived calli. Leaf, rhizome and root explants were cultured on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 2,4-dichlorophenoxy acetic acid (2,4-D) for callus induction. Rhizome explants yielded calli at a frequency of 72% when cultured at 1.0 mg/l 2,4-D. Calli were maintained at 1.0 mg/l 2,4-D. These calli were transferred to MS medium supplemented with 0, 0.5, 1.0, and 2.0 mg/l 2,4-D in combination with 0, 0.5, 1.0, and 3.0 mg/l BA for adventitious shoot induction. The highest number of adventitious shoot (228.9 per petri-dish) were formed at 1.0 mg/l 2,4-D and 1.0 mg/l BA. WPM medium was the best to convert calli into plantlets, where up to 98.2% of calli were regenerated into plantlets. This in vitro propagation protocol should be useful for conservation of this endangered plant.
Calli were successfully induced from immature embryos of Citrus junos SIEB. cultured on 1/2 MS medium supplemented with 40.4 BA. Plant were regenerated from immature embryo derived callus on MS medium with 5 $\mu$M BA. The calli were morphologically characterized by two types: one was whitish and the other was yellowish. After 16 weeks of culture, shoots and root were formed on calli. Plantlets were transplanted to soil and successfully grown to a whole plant Also, the arrangement of the cells showed many differences according to developmental stages of callus and organogenesis. The small cells were compact in callus cultured for 6 weeks and the extended cells which divided actively appeared in it after 8 weeks of culture. The globular protrusion of compacted cells occurred in callus after 10 weeks of culture, and the neighboring cells were liquefied. Oil sac surrounded by the liquefied cell was observed in the leaf and was formed by rupture of liquefied cells.
The experiment was carried out to investigate the influence of light condition and polarity of explant on adventitious shoot formation from cotyledon of apple in vitro The treatment of light culture after 10days dark treatment showed effective result than other treatments on the rate of adventitious shoot formation on light intensity treatments and also the treatment of blue light treatment after 4days dark treatment showed more effective result than other treatments in light quality treatments. The polarity of explant influence on adventitious shoot formation. Adventitious multiple shoot formation occured at the proximal end of an excised cotyledon. In other words. shoot organogenesis occured at the proximal cut surfaces of both proximal and distal explants rather than at the distal cut surface of proximal explants.
This study was carried out to establish a reproducible culture system for callus formation and adventitious shoot development from young stem segments of Vigna radinta, and histological work for orgin of callus tissue and adventitious shoot. Induction of callus from young stem explants of Vigna radiata was very effective on MS inorganic salts supplemented with 0.5 mg/L 2,4-D and 1.0 mg/L kinetin. For the adventitious shoot regeneration from the callus tissues, the hormone combination of 0.75 mg/L NAA, 1.5 mg/L kinetin and MS salts resulted in about 21% efficiency. Histological examination showed that callus tissues originated from out-growths by callus cambium rings with do novo meristematic activities, which were localized at the outside of the vascular cambium. Adventitious shoots were developed from shoot apical meristem originated from the surface of callus masses. The shoot apical meristem produced leaf primordium, which then became leaf.
An efficient procedure was developed for adventitious shoot bud induction and plantlet regeneration from various explants of the ten genotypes of Pepper (Capsicum annuum L.) using Thidiazuron (TDZ). Among various treatments at 1.0-3.0 mg/L TDZ Induced maximum number of adventitious shoots depending upon the explant type and genotype compared to other treatments. Among the explants tested, leaf induced maximum number of adventitious shoots than the cotyledons. TDZ-mediated organo-genesis was possible in 10 pepper cultivars, the extent of the response being genotype-dependent. Of the ten genotypes tested, C. annuum cvs CA960, $G_4$ and X-235 were produced maximum number of adventitious shoots and Sell was the least, and all other genotypes gave moderate response. Elongation of multiple shoots was observed on medium supplemented with SA (0.05 mg/L) in combination of IAA (0.05 mg/L). Differences in ability for in vitro shoot regeneration and elongation depend upon the variety and explant type. The elongated shoots were success. Fully rooted on MS medium containing at 1.0 mG/L IAA. Plantlets regenerated from different explants of ten genotypes were found to be diploid (2n=24) and were devoid of any chromosomal aberrations. Regenerated plants were successfully established in soil where 85-90% of them developed into morphologically normal and fertile plants.
A reliable and effective tissue culture system was established for Perilla frutescens (perilla) using different cultivar, explant source, and growth regulator composition in medium. MS medium supplemented with 2.0 mg/L BA and 0.1 mg/L NAA was maximum at shoot induction. Cotyledon explants formed more shoots than hypocotyl explants. The frequency of plant regeneration through organogenesis was higher (22.8%) than that (6.1%) of somatic embryogenesis. Five genotypes of perilla were screened for the feasibility of shoot regeneration, cotyledon explant of 'Manbaek' showed the highest shoot induction at a frequency of 27.3% among the tested cultivars.
The effects of plant growth regulators on callus formation and organogenesis in shoot tip explant of Belancanda chinensis were examined. Shoot tip explants cultured in full salt strength of MT(Murashige and Tucker) medium containing 2,4-D 1.0 or 2.0mg/l were vigorously formed callus. Full salt strength of MT medium and 1/2 MT medium supplemented with zeatin 1.0mg/l were more effective than that with combination treatments of 2,4-D on the formation of shoots from calli. When shoots regenerated from shoot tips were transplanted into 1/2 MT medium added with 1.0mg/l, 41% of shoots formed roots.
The most effective cytokinin source for adventitious shoot regeneration of in vitro grown leaves from 'Gala' apple was BA with the concentration of 4.0 mg/L, while auxin source was IAA, IBA and NAA with the concentration of 0.1 mg/L, respectively. As the result of combinational treatment of BA and NAA, 6.0 or 8.0 mg/L BA with 0.5 mg/L NAA was effective for adventitious shoot regeneration from leaf tissues of 'Gala', 0.1 mg/L NAA + 8.0 mg/L BA and 1.0mg/L NAA + 8.0 mg/L BA for internode, and 0.1 mg/L NAA + 4.0 mg/L BA for petiole.
Combinations of plant growth regulators, darkness treatments, and the order of expanding leaves for explants were evaluated for optimizing in vitro shoot regeneration rate of 'Whangkeumbae' pear. In a MS medium, supplemented with $8.88{\mu}M$ 6-benzylaminopurine (BA) and $0.49{\mu}M$ indole-3-butyric acid (IBA), green foci were observed on the surface of the callus 8 days after culture initiation. Some adventitious buds were later induced from those green foci, resulting in the appearance of normal shoots. In a medium containing $22.20{\mu}M\;BA$, the surface of the callus became compact and greenish, and many adventitious buds were formed over the entire area of the callus surface. When comparing BA concentration via histological observation, the section which had been treated with $22.20{\mu}M\;BA$ exhibited closer cell aggregation than those with $8.88{\mu}M\;BA$. The darkness treatment enhanced the formation of adventitious shoots for up to 3 weeks. The youngest two expanding leaves, proximal to the shoot apex, were proved to be the most regenerative, and yielded the highest shoot number per regenerating leaf. A fourth strength MS medium, which was supplemented with $0.54{\mu}M\;NAA$, yielded good quality plantlets, with regard to root number and root length.
To establish rapid micropropagation through organogenesis from apices-derived callus or direct adventitious shoot of three calla lily cultivars(Zantedeschia spp, cv. Sunlight, cv. Chiante, cv. Pink Persuation) were cultured on Murashige and Skoog medium supplemented with different plant growth regulators. The formation rate of callus, organogenesis and in viかo tuber production among the three cultivars were tested. Callus was obtained from cvs. Sunlight, Chiante and Pink Persuasion; the best cultivar was Sunlight. Sunlight induced $53.3\%$ callus and Chiante had the highest rate of $56.7\%$ direct shoot regeneration on medium with 2.0 mg/L BA. Regeneration frequencies ranged from 20 to $70\%$ on medium with 2.0-3.0 mg/L BA. The highest percentage of regeneration and the greatest number of shoots were obtained on medium containing 3.0 mg/L BA in three cultivars. Cytokinins induced multiple shoot formation; 1.0 mg/L of 2ip, 5.0 mg/L of BA, and 1.0 m/L of BA induced 16, 14 and 12 multiple shoots in cvs. Sunlight, Chiante and Pink Persuasion, respectivly. 1.0 mg/L of IAA enhanced root growth in cvs. Sunlight and Chiante while cv. Pink Persuasion exhibited enhanced root growth at 2.0 mg/L of IBA. NAA, however, induced no change in root growth. The addition of 90 g/L sucrose enhanced in vitro tuber formation and following tuber expansion in cv. Sunlight, while 70 g/L of sucrose was effective in cvs. Chiante and Pink Persuasion.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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