In order to micropropagate uniform plantlets of Alocasia cadieri Chantrier in vitro, the shoot tips were cultured on media containing various concentrations of BA and thidiazuron (TDZ). Multiple shoot formation from shoot tips was very effective on medium containing 0.1mg/L TDZ. The formed shoots from shoot tips were separated into a shoot, and cultured on media with BA, TDZ, and NM combination for proliferation. The shoots were multiplied very vigorously on medium with 0.5mg/L TDZ and 0.5mg/L NAA. The rooting and growth of multiplied shoots were more effective on medium with 2.0g/L activated charcoal, rather than those with IBA and NAA. Rooted plantlets show high survival in soil mixed with perlite 1: vermiculite 1 or vermiculite alone.
In this study, we established a novel somatic embryogenesis and plant regeneration system through cell suspension culture of white dandelion (Taraxacum coreanum NAKAI.). Embryogenic calli could be initiated from leaf and root explants of sterile seedlings on solid Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1.0 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) after 3-week cultures. To proliferate embryogenic calli rapidly, cell suspension culture was performed with transferred to liquid MS medium with various combinations of plant growth regulators (PGRs) including 2,4-D, ${\alpha}$-naphthalene acetic acid (NAA), indole-3-acetic acid (IAA), $N^6$-benzylamino purine (BAP), thidiazuron (TDZ), and kinetin. During suspension cultures, embryogenic calli not only greatly proliferated, but shoot organogenesis also simultaneously occurred from the surface of somatic embryos. Among them, TDZ at lower concentration, 0.1 mg/L produced the highest efficiency of somatic embryo formation and shoot organogenesis. Rooting of embryogenic calli with adventitious shoots was done on solid MS medium containing 0.1 mg/L NAA and 0.3% activated carbon. Nearly 80% of embryogenic calli with shoot organogenesis could be rooted normal. Well-rooted plantlets were transferred into pots under a greenhouse condition, and plants derived from this system appeared phenotypically normal.
Leaf and petiole explants of kiwifruit were cultured on MT basal medium supplimented with 2,4-D, kinetin, NAA, and BA. Higher organogenic callus formation was observed on the media with NAA + BA than on the media added with 2,4-D + kinetin. Adventitious buds were formed only on media with NAA and BA. Leaf was better explant than petiole. When callus and adventitious buds were subcultured, shoot formation responsed best on medium with 0.1 mg/L NAA + 2.0 mg/L zeatin. When shoots were cultured on medium with 0.5 mg/L IAA + 0.1 mg/L BA after soaking for 1 hr at IBA solution, rooting was more effective than non-IBA treatment. Rooted shoots developed into normal plants.
In the present study, in vitro multiple shoot induction was achieved from cotyledonary node and stem nodal explants of cv. NARI-6 of safflower (Carthamus tinctorius L.). Among various growth regulators tested, MS salts and B5 vitamins supplemented with BA (6-Benzy-laminopurine) $17.76\;{\mu}M$ and KN (Kinetin) $6.96\;{\mu}M$ phytohormonal combination was found to be the most effective in initiating numerous shoot buds after 30 days of culture than BA ($4.44-44.39\;{\mu}M$) or KN ($2.32-46.40\;{\mu}M$) alone in the medium. In addition, 0.8% (w/v) agar (Hi-media) and 3.0% sucrose (w/v) was the optimum level for the formation of adventitious shoots. Further results showed the maximum shoot elongation occurred on MS medium with BA ($8.88\;{\mu}M$) and $GA_3$($11.56\;{\mu}M$) combinations. Efficient rooting occurred on quarter strength MS medium with NAA $10.74\;{\mu}M$. The regenerated plantlets were acclimatized and successfully transferred to the field.
In order to establish a in vitro propagation system for gold tree[Dendropanax morbifera $L_{EV}$], the effects of auxins and cytokinins on shoot multiplication and rooting were investigated. Germination rate was the best in MS medium. The fresh weight and number of shoot were the best on the medium containing 0.1 or 1.0 mg/l BAP and 0.5 or 1.0 mg/l NAA. Shoots were successfully rooted in MS medium with 1.0 mg/l NAA. Roots were easily formed by the addition of auxins, especially 0.1 or 1.0 mg/l BAP.P.
Yang, Seung Koo;Son, Dong-Mo;Choi, Kyung Ju;Kim, Sang Chaul;Kim, Wol-Soo;Chung, Soon Ju
Horticultural Science & Technology
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v.19
no.4
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pp.483-487
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2001
This study was carried out to investigate the role of attached leaflet on rooting and growth by one nodal cutting in tomato. As cutting sources 4 to 6 nodes could be obtained from one nursery seedling. Medium for cutting was a mixture with perlite plus peat moss (1 : 1, v/v), and each plug capacity was 30mL in the 72 cells-plug tray. Plant height and the number of leaves were significantly increased by attached leaflet cutting in 'Pepe' and 'Coco' cherry tomato. Dry weights of top and root were increased as much as 3 to 15 times in the cutting attached leaflet. Rooting percentage was 93.5% in one node cutting and 86% in the cutting with hypocotyl node part. At 20 to 24 days after nodal cutting, healthy nursery plant could be produced to transplant in field. The nursery plants by nodal cutting (NPNC) showed more fibrous roots and less tap roots than that of seedling. In terms of rooting pattern, NPNC rooted at the whole ground stem part, while rooting of seedling occurred at basal part of hypocotyl.
This study was conducted to elucidate the effect of light sources and explant types on in vitro shoot multiplication and rooting of a rare and endangered plant Abeliophyllum distichum. Both apical buds and axillary buds were used as explants under 4 different light sources, cool white florescent light (F), 100% blue light-emitting diode (LED) (B), 50% blue and 50% red LED mixture (BR), and 100% red LED (R). Clear difference was observed in terms of shoot proliferation by light sources types but not by position-dependent explant types. Multiple shoot induction rates were enhanced under both B and BR light sources. Spontaneous rooting was induced in shoot induction medium under B light source. Both the rates of rooting and numbers of roots per explant were higher in apical bud explants compared to axillary bud explants. Interestingly R light source stimulated shoot elongation but inhibited root development. Therefore, our results suggest that the use of apical bud explants under B or BR light sources is suitable for in vitro micropropagation of a rare and endangered plant species, Abeliophyllum distichum.
Lee, Na Nyum;Kim, Ji-Ah;Kim, Yong-Wook;Choi, Yong Eui;Moon, Heung Kyu
Journal of Plant Biotechnology
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v.42
no.3
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pp.228-234
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2015
Using either the apical or axillary bud of the endangered species Abeliophyllum distichum Nakai, we tested the effect of bud position and culture method on shoot proliferation and rooting. In shoot proliferation, the axillary bud explant was more effective than the apical bud and the effect was fostered by BA treatment, whereas no differences were observed in shoot elongation by the explant position. Spontaneous rooting was observed in the MS basal medium and resulted in conspicuous differences in the explant position : more than 80% in apical bud explant and 28% in axillary bud explant was achieved, respectively. The positional effects were also observed in BA pre-treatments: generally vertical culture method appeared to be better in shoot proliferation, growth, and rooting than that of the horizontal culture method regardless of the BA pre-treatment duration. The highest shoot multiplication was achieved through the vertical culture method with axillary bud explant, whereas the best shoot elongation and rooting was obtained using the vertical culture method with the apical bud explant. Apical bud explant was superior to axillary bud explant in ex vitro micro-cuttings and revealed a significant difference in shoot growth and root development. The above results suggest that explant position and culture method influence the efficiency of micropropagation for a rare and endangered plant Abeliophyllum distichum.
The low seed propagation is one of the problem needed a lot of seed tuber for the propagation in yam. Therefore this experiment was carried out to understand the possiblility of seed tuber propagation by tissue culture of yam. In-vitro stem node of yam was cultured by concentration treatments of 1/2, 1/4 and 1/8 with MS medium additted with each concentration levels of IAA, NAA, IBA, kinetin and BA. Acorrding to the Iower concentration than MS medium, length of shoots was promoted, leaf emergence shoots and rooting shoots were increased at 1/8 MS medium during the culturing period of stem node in yam. Fixed IBA and kinetin under the concentration of MS mdeium was inhibited severely by the heigh concentration additted with lAA $1mg\;/\;{\ell}\;and\;NAA\;4mg\;/\;{\ell}$. But fixed IBA $5mg\;/\;{\el}l\;and\;kinetin\;2mg\;/\;{\ell}$ with concentration of 1/8MS medium was remarkably promoted leaf emergence shoots and rooting shoots by $1mg\;/\;{\ell}$ of additted lAA and NAA. Percentage of induced shoots was increased by combination treatments of lAA. $1.5mg\;/\;{\ell}\;and\;kinetin\;2mg\;/\;{\ell}$, also leaf emergence shoots and rooting shoots were promoted by combination treatments of lAA $1.5mg\;/\;{\ell}\;and\;kinetin\;2mg\;/\;{\ell}$.
An efficient, rapid and large-scale in vitro clonal propagation of agronomically important Indian cereal crop genotypes (NSH27 & K5) of Sorghum bicolor (L.) Moench. by enhanced shoot proliferation in shoot tip segments was designed. MS medium fortified with plant growth regulators and coconut water markedly influenced in vitro propagation of Sorghum bicolor. In vitro plantlet production system has been investigated on Murashige and Skoog (MS) medium with the synergistic combination of 6-benzyladenine ($22.2\;{\mu}M$), kinetin ($4.6\;{\mu}M$), adenine sulphate ($2.8\;{\mu}M$), 5% coconut water and 3% sucrose which promoted the maximum number of shoots as well as beneficial shoot length. Subculturing of shoot tip segments on a similar medium enabled continuous production of more than 100 healthy shoots with similar frequency. When the healthy shoot clumps were cultured on MS medium fortified with 6-benzyladenine ($22.2\;{\mu}M$), kinetin ($4.6\;{\mu}M$), adenine sulphate ($2.8\;{\mu}M$), ${\alpha}$-naphthaleneacetic acid ($2.7\;{\mu}M$), ascorbic acid ($30.0\;{\mu}M$) and 5% coconut water, a rapid production of axillary and adventitious buds was developed after 8 wk culture. More than 300 shoots were produced 10 wk after culture. Rooting was highest (100%) on half strength MS medium containing 22.8 mM IAA. Micropropagated plants established in garden soil, farmyard soil and sand (2:1:1) were uniform and identical to the donor plant with respect to growth characteristics. These plants grew normally without showing any traits.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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