Three novel hepcidin isoforms were isolated and characterized from the perciform fish species Oplegnathus fasciatus. These hepcidin isoforms (designated rbhepc5, rbhepc6 and rbhepc7) were found to share a conserved, tripartite gene structure and a considerable sequence homology one another. A comparison of their mature peptide sequences with those of other perciform hepcidin orthologs indicated that these three hepcidin isoforms as well as four other isoforms previously identified in this species, appear to belong to the HAMP2 group of hepcidin genes. Analysis of the 5'-upstream sequences showed that the proximal non-coding regions of rbhepc5~7 do not possess canonical TATA signals; instead, they harbor several binding motifs for transcription factors involved in immune modulation. Reverse transcriptase-PCR analysis demonstrated that the rbhepc5~7 are expressed predominantly in the liver, and that the transcription of rbhepc5~7 is rapidly induced in the liver, but not in other tissues, by experimental challenge with any of three different bacterial species. However, transcription of rbhepc6 appeared to be negligible under both basal and stimulated conditions, as judged by the redundancy count of randomly chosen reverse transcriptase-PCR clones.
A partial cDNA encoding a Korean radish isoperoxidase was obtained from a cDNA library prepared from 9 day old radish root. In order to obtain Korean radish isoperoxidase cDNA, 5' RACE (rapid amplification cDNA end) PCR was performed and a cDNA (prxK1) encoding a complete structural protein was obtained by RT (reverse transcription)-PCR. Sequence analysis revealed that the length of the cDNA was 945 base pairs, and that of the mRNA transcript was ca. 1.6 kb. The deduced amino acid of the protein were composed of 315 amino acid residues and the protein was 92% homologous to turnip peroxidase, and 46% to 50% homologous to other known peroxidases. The 945 bp cDNA encoding Korean radish isoperoxidase was overexpressed in Escherichia coli up to approximately 9% of total cellular protein. The recombinant fusion protein exhibited 43 kDa on SDS-PAGE analysis and the activity level of the recombinant nonglycosylated protein was two fold higher in IPTG induced cell extracts than that of uninduced ones.
피부에서 melanin은 자외선 차단의 주요한 역할을 한다. Tyrosinase는 멜라닌 생합성과정에서 초기 단계에 관여하는 중요한 효소로서 이것의 조절을 통한 피부 멜라닌화 억제에 관해 많은 연구가 되어져왔다. 본 연구에서는 해녀콩 추출물에서 mushroom tyrosinase 활성억제, B16F10 melanoma 세포를 이용한 dopa oxidase 활성억제 및 멜라닌 합성 억제 효과를 확인하였다. Tyrosinase mRNA 발현에서의 억제 효과를 확인하기 위하여 RT-PCR을 이용하였으며, $CHCI_3$ 층에서 분리해낸 A 분획에서 tyrosinase mRNA 발현을 억제시킴을 확인하였다.
Astringent persimmon (Diospyros kaki Thunb.) is an important fruit crop in Korea; it possesses significant medicinal potential. However, knowledge regarding the pathogens affecting this crop, particularly, viruses and viroids, is limited. In the present study, reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and high-throughput transcriptome sequencing (HTS) were used to investigate the viruses and viroids infecting astringent persimmons cultivated in Korea. A one-step multiplex RT-PCR (mRT-PCR) method for the simultaneous detection of the pathogens was developed by designing species-specific primers and selecting the primer pairs via combination and detection limit testing. Seven of the sixteen cultivars tested were found to be infection-free. The RT-PCR and HTS analyses identified two viruses and one viroid in the infected samples (n = 51/100 samples collected from 16 cultivars). The incidence of single infections (n = 39/51) was higher than that of mixed infections (n = 12/51); the infection rate of the Persimmon cryptic virus was the highest (n = 31/39). Comparison of the monoplex and mRT-PCR results using randomly selected samples confirmed the efficiency of mRT-PCR for the identification of pathogens. Collectively, the present study provides useful resources for developing disease-free seedlings; further, the developed mRT-PCR method can be extended to investigate pathogens in other woody plants.
In this study, a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) assay was developed for the rapid, sensitive, and inexpensive detection of nervous necrosis virus (NNV) in olive flounder, Paralichthys olivaceus, in Korea. A set of six specific primers was designed to target the RNA 2 gene encoding the coat protein of Korean NNV strains. The RT-LAMP reaction successfully detected NNV after 30 min at $65^{\circ}C$. When the sensitivities among RT-LAMP, RT-PCR, and nested RTPCR were compared, the RT-LAMP was shown to be able to detect the RNA template at $2.58{\times}10^{-2}\;TCID_{50}/ml$, whereas the RT-PCR and nested RT-PCR were only able to detect the RNA template at $2.58{\times}10^2\;TCID_{50}/ml$ and $2.58TCID_{50}/ml$, respectively. Thus, the sensitivity of the RT-LAMP assay was higher than those of the RT-PCR assays. In the specificity test of the RT-LAMP, 2 genotypes of NNVs (SJNNV and RGNNV) were positive; however, no other fish viruses were positive with the primers, indicating that the RT-LAMP assay is only specific to NNV. A total of 102 olive flounder were collected from hatcheries between 2009 and 2011. The occurrence of NNV in olive flounder was determined to be 53.9% (55/102) by the RT-LAMP. On the other hand, the prevalence based on the nested RT-PCR and RT-PCR results was 33.8% (34/102) and 20.6% (21/102), respectively. This result indicates that the RT-LAMP assay developed in this study is suitable for early field diagnosis of NNV with high sensitivity.
Halobacteria 의 gvpD. gvpE 유전자는 가스포 형성에 관여하는 유전자로, 이들은 그 transcripts 의 분석에 있어 특유의 연약성 때문에 많은 실험상의 문제를 야기시키고 있다. 본 실험은 연약한 mRNA 를 reverse transcriptase 를 사용, DNA 로 바꾸고 이를 다시 PCR(Polymerase Chain Reaction) 방법으로 증폭시킴으로써, 유전자의 연약한 mRNA 를 다시 상보적인 안정한 DNA 로 대치케 하여 RNA 상의 cloning, RNA sequencing 을 용이하게 하였다. 결과는 유전자 gvpD 에서 거의 전 ORF(Open Reading Frame) 의 범위에서 northern hybridization 에서 발견치 못한 transcipts 를 확인할 수 있었다.
To study the specific tools for the diagnosis of Newcastle disease virus (NDV) in chicken, polymerase chain reaction (PCR) and its presumable conditions were evaluated for the detection of hemagglutinin-neuraminidase (HN) gene of NDV RNA. For these purposes, Kyojeongwon strain of the NDV was propagated in allantoic cavity of SPF embryonating chicken eggs, and viral RNA was extracted from fractionated virus after the allantoic fluids were ultracentrifuged with sucrose gradient. The first-strand cDNA was then made for the HN gene of NDV RNA by reverse transcription at $42^{\circ}C$ for 1 hour using specific primer complementary to the HN gene. The single-stranded cDNA was used as template in the PCR of the HN-DNA, and various conditions of the PCR were evaluated to set up method for the specific detection of the HN-DNA. The PCR conditions promising for the detection of HN gene consist of preheating at $94^{\circ}C$, 5 min, 30 cycles of denaturation at $94^{\circ}C$, 1 min, annealing at $55^{\circ}C$, 1 min and polymerization at $72^{\circ}C$, 2 min, and a cycle of extension at $72^{\circ}C$, 5 min. when NDVs of allantoic fluids without fractionation were applied to the above PCR condition, the HN genes were detected effectively not only from Kyojeongwon but from other velogenic strains such as Herts and a field isolate.
Staphylococcus aureus strains are important foodborne pathogens that produce various toxins. To evaluate the risk of the enterotoxins, four S. aureus strains from kimbap and two clinical samples were isolated and identified, and their expression of the enterotoxin genes were analyzed using a reverse transcription real-time PCR. Various enterotoxin genes were detected, including sea, seg, seh, sei, sen, seo, and sem, where each isolate contained one or two. When the mRNA detection of the enterotoxin genes was analyzed using a reverse transcriptase PCR, various levels of expression were found depending on the species and enterotoxin gene. Therefore, it is reasonable to suggest that the poisoning risk of S. aureus can be effectively evaluated based on the gene expression at the mRNA level.
Kim, Nam-Yeon;Oh, Jonghee;Lee, Su-Heon;Kim, Hongsup;Moon, Jae Sun;Jeong, Rae-Dong
The Plant Pathology Journal
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제34권6호
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pp.575-579
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2018
Apple stem grooving virus (ASGV) is considered to cause the most economically important viral disease in pears in Korea. The current PCR-based methods used to diagnose ASGV are time-consuming in terms of target detection. In this study, a novel assay for specific ASGV detection that is based on reverse transcription-recombinase polymerase amplification is described. This assay has been shown to be reproducible and able to detect as little as $4.7ng/{\mu}l$ of purified RNA obtained from an ASGV-infected plant. The major advantage of this assay is that the reaction for the target virus is completed in 1 min, and amplification only requires an incubation temperature of $42^{\circ}C$. This assay is a promising alternative method for pear breeding programs or virus-free certification laboratories.
SYMMV는 콩에서 빈번하게 발생하는 바이러스이며, 이 바이러스의 발생률은 계속해서 증가하고 있다. 본 연구에서는 콩에 발생하는 SYMMV를 신속하게 검출하기 위해서 RT-LAMP를 적용하였다. RT-LAMP 방법은 등온에서 단시간에 유전자 증폭이 가능하고, 전기영동 없이도 형광물질을 이용해 바이러스를 검출할 수 있는 이점이 있다. 프라이머는 SYMMV coat protein gene의 염기서열을 기반으로 4개의 프라이머를 설계하였다. 실험결과 SYMMV RT-LAMP는 $65^{\circ}C$에서 50분간 증폭시켰을 때 최적의 효율을 보였다. 또한, RT-LAMP와 RT-PCR과의 민감도를 비교한 결과 RT-LAMP 방법이 10-100배 정도 더 우수한 민감도를 가지는 것으로 밝혀졌다. 본 실험 결과를 토대로 기존의 진단법과 비교하여 높은 민감도와 짧은 소요시간에 이점이 있는 RT-LAMP는 SYMMV의 현장 및 연구실에서의 진단에 적용될 수 있을 것이라 생각된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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