Park, Young-Suk;Lee, Kyung-Ok;Oh, Moon-Ju;Chai, Young-Gyu
BMB Reports
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v.30
no.3
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pp.234-236
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1997
Chronic hepatitis C virus (HCV) infection is associated with the rapid development of cirrhosis and hepatocellular carcinoma. It has been reported that the amount of HCV RNA may be correlated with the progression of hepatitis and may be a prognostic marker for treatment of HCV patients. The direct detection of HCV RNA by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) is widely used to determine the presence of circulating virions. The most relevant limit of this approach is the lack of quantitative information about the viral titer. In the present study, we developed the method for HCV quantitation using competitive reverse transcription (CRT)-PCR using the deleted HCV standard. The serially diluted standard was added in titrated amounts to the target HCV RNA. The mixture was then reverse transcribed and amplified in the same reaction tube. The methods were evaluated using over 110 HCV-PCR positive samples in Koreans. About 59% of the samples were judged to contain $10^{5}-10^{6}$ copies of HCV RNA in 1 ml of serum.
LEE JAE HYUNG;CHOI TAE-JIN;NAM SOO WAN;KIM YOUNG TAE
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.4
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pp.838-843
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2005
Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) is a small secretory protein and a member of the nerve growth factor (NGF) gene family. We cloned the flounder BDNF gene from a flounder brain cDNA library. The nucleotide sequence of the cloned gene showed an open reading frame (ORF) consisting of 810 bp, corresponding to 269 amino acid residues. The tissue distribution of flounder BDNF was determined by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) in brain, embryo, and muscle tissues. To express fBDNF using a eukaryotic expression system, we constructed the vector mpCTV-BDNF containing the fBDNF gene and transformed this vector into Chlorella ellipsoidea. Stable integration of introduced DNA was confirmed by PCR analysis of genomic DNA, and mRNA expression in C. ellipsoidae was confirmed by RT-PCR analysis.
To develop a biomarker for the monitoring of the contamination of estrogenic endocrine disrupters in the aquatic environment, reverse transcription -polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis of vitellogenin (Vg) mRNA expression was optimized in Bombina orientalis, a Korean red bellied toad species. Based on partial cDNA sequences of both Vg and beta actin genes of B. orientalis, specific primers for RT-PCR of Vg and beta actin mRNAs were developed. Semiquantitative RT-PCR of the Vg mRNA in liver was optimized using a beta actin mRNA as an internal control in both sexes. In female RT-PCR using $1\;\mu{g}$ of the liver cDNA resulted in a linear increment in the PCR product of Vg from 18 to 34 cycles of amplification. In male, on the contrary, the RT- PCR product was first detected at 30 cycles of amplification and a linear increment was observed from 30 to 40 cycles of amplification, suggesting that male B. orientalis expresses minute amount of Vg mRNA which is a $2^{-12}$ equivalent of female. In conclusion, the optimized protocol for semiquantitative RT-PCR analysis of Vg mRNA level in B. orientalis male liver will be useful for the environmental monitoring the xenoestrogen contamination in the freshwater environment in Korea.
Rabid raccoon dogs (Nyctereutes procyonoides koreensis) have been responsible for animal rabies in South Korea since the 1990s. A recombinant rabies vaccine strain, designated as ERAGS, was constructed for use as a bait vaccine. Therefore, new means of differentiating ERAGS from other rabies virus (RABV) strains will be required in biological manufacturing and diagnostic service centers. In this study, we designed two specific primer sets for differentiation between ERAGS and other RABVs based on mutation in the RABV glycoprotein gene. Polymerase chain reaction analysis of the glycoprotein gene revealed two DNA bands of 383 bp and 583 bp in the ERAGS strain but a single DNA band of 383 bp in the field strains. The detection limits of multiplex reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) were 80 and 8 FAID50/reaction for the ERAGS and Evelyn-Rokitnicki-Abelseth strains, respectively. No cross-reactions were detected in the non-RABV reference viruses, including canine distemper virus, parvovirus, canine adenovirus type 1 and 2, and parainfluenza virus. The results of multiplex RT-PCR were 100% consistent with those of the fluorescent antibody test. Therefore, one-step multiplex RT-PCR is likely useful for differentiation between RABVs with and those without mutation at position 333 of the RABV glycoprotein gene.
Immunocapture reverse transcription polymerase chain reaction (IC-RT-PCR) was applied to the detection of Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV), Kyuri green mottle mosaic virus (KGMMV), and Zucchini green mottle mosaic virus (ZGMMV) on Cucurbitaceae crops. These seed-borne tobamoviruses were accurately detected from the infected leaves and seeds by IC-RT-PCR. This method was estimated to be about 100 times more sensitive than ELISA, and also it allowed the direct confirmation of ELISA results by using the captured antigens from a completed ELISA microwell. This convenient and reliable method could be used routinely for large-scale field surveys or seed tests of Cucurbitaceae crops.
A subtracted cDNA library of a marine scuticociliate, Philasterides dicentrarchii, in response to 17β-estradiol exposure was constructed using suppression subtractive hybridization (SSH). As a result of SSH, 275 clones were isolated, and among them, only glutathione peroxidase (GPX) gene was isolated as an antioxidative enzyme responding to 17β-estradiol. The semi-quantitative reverse-transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis revealed that the transcription of GPX gene of P. dicentrarchii was clearly increased by exposure to 17β-estradiol. The GPX transcription was also clearly increased by exposure to xenoestrogens such as bisphenol A (BPA) and genistein.
Hyoungsuk Park;Kyoung Won Cho;Lindsey Yoojin Chung;Jong Min Kim;Jun Hyuk Song;Kwang Nam Kim
Pediatric Infection and Vaccine
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v.30
no.2
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pp.62-72
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2023
Purpose: A change is expected in the pattern of respiratory viruses including human coronavirus (HCoV) after the coronavirus disease 2019 (COVID-19) outbreak. Accordingly, identifying the distribution of respiratory viruses before the COVID-19 outbreak is necessary. Methods: We retrospectively analyzed the results of samples of nasal swabs collected from children under aged ≤18 years who were hospitalized at Myongji Hospital, Gyeonggi-do due to acute respiratory infections from 2017 to 2019. Viruses were detected by real-time reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). Results: Out of 3,557 total patients, 3,686 viruses were detected with RT-PCR including coinfections. Of the 3,557 patients, 2,797 (78.6%) were confirmed as PCR-positive. Adenovirus and human rhinovirus (hRV) were detected throughout the year, and human enterovirus was most detected during summer. Respiratory syncytial virus, influenza virus, and HCoV were prevalent in winter. In patients with croup, parainfluenza virus was most frequently detected, followed by hRV and HCoV. The PCR positive rate in summer and winter differed significantly. Conclusions: Respiratory virus patterns in northwestern Gyeonggi-do were not much different from previously reported data. The data reported herein regarding respiratory virus epidemiological information before the COVID-19 outbreak can be used for use in comparative studies of respiratory virus patterns after the COVID-19 outbreak.
The World Health Organization (WHO) has declared the coronavirus disease 2019 (COVID-19) as an international health emergency. Current diagnostic tests are based on the reverse transcription-quantitative polymerase chain reaction (RT-qPCR) method, which is the gold standard test that involves the amplification of viral RNA. However, the RT-qPCR assay has limitations in terms of sensitivity and quantification. In this study, we tested both qPCR and droplet digital PCR (ddPCR) to detect low amounts of viral RNA. The cycle threshold (CT) of the viral RNA by RT-PCR significantly varied according to the sequences of the primer and probe sets with in vitro transcript (IVT) RNA or viral RNA as templates, whereas the copy number of the viral RNA by ddPCR was effectively quantified with IVT RNA, cultured viral RNA, and RNA from clinical samples. Furthermore, the clinical samples were assayed via both methods, and the sensitivity of the ddPCR was determined to be equal to or more than that of the RT-qPCR. However, the ddPCR assay is more suitable for determining the copy number of reference materials. These findings suggest that the qPCR assay with the ddPCR defined reference materials could be used as a highly sensitive and compatible diagnostic method for viral RNA detection.
We developed a sensitive, nested reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) to detect Hantaan, Seoul, Belgrade, Puumala and Sin Nombre viruses in animal tissues. Total RNA was extracted from blood, lung or kidney samples of experimentally-infected hamsters by using the guanidine isothiocyanate buffer-acid phenol-chloroform method. Genus-reactive outer primers were derived from the consensus region of the G1 gene sequences of several hantaviruses. Serotype-specific primers were selected within the region amplified by the outer primers. To examine the sensitivity and specificity of the test, we diluted known quantities of Hantaan, Seoul, Belgrade, Puumala and Sin Nombre viruses in human or hamster immune sera before performing the nested RT-PCR. We could detect as little as 1 pfu of virus, even in the presence of high-titer neutralizing antibodies, and the serotype-specific primers amplified only homologous serotype viruses. RT-PCR with these primers demonstrated virus in the blood of experimentally-infected hamsters as early as four days to as late as 30 days after infection. A comparison of a standard immunofluorescent antibody screening test (IFAT) to nested RT-PCR with RNA extracted from lung or kidney tissues of the hamsters, demonstrated that RT-PCR to be more sensitive for identifying viruses in these tissues.
Journal of the korean academy of Pediatric Dentistry
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v.42
no.4
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pp.312-318
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2015
The aim of this study was to investigate the possibility of the supernumerary teeth for the stem cell source in dentistry. The Real Time Quantitative Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction (Real Time qRT-PCR) method was used to evaluate the differentiation toward the odontoblast of the supernumerary dental pulp stem cells (sDPSCs). Supernumerary dental pulp stem cells were obtained from 3 children (2 males and 1 female, age 7 to 9) diagnosed that the eruption of permanent teeth was disturbed by supernumerary teeth. The common genes for odontoblasts are alkaline phosphatase (ALP), osteocalcin (OC), osteonectin (ON), dentin matrix acidic phosphoprotein 1 (DMP-1), dentin sialophosphoprotein (DSPP). The sDPSCs were treated for 0 days, 8 days and 14 days with additives and then Real Time qRT-PCR was performed in intervals of 0 days, 8 days and 14 days. The alizarin-red solution staining was performed to visualize the stained color for the degree of calcification at 7 days, 14 days, 21 days and 28 days after treating additives to the sDPSCs. From the result of the Real Time qRT-PCR, the manifestation exhibit maximum value at 8 days after additive treatment and shifted to a decrease trend at 14 days. Alizarin-red solution staining exhibit light results at 7 days after staining and generalized dark result at 14 days. Consequently, in studies with sDPSCs, appropriate treatment time of additives for Real Time qRT-PCR is 8 days. Also, a suitable period of Alizarin-red solution staining is 14 days.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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