Among dozens of DNA polymerases cloned from thermophilic bacteria, Taq DNA polymerase from Thermus aquaticus has been most frequently used in polymerase chain reaction (PCR) that is being applied to gene cloning, DNA sequencing, gene expression analysis, and detection of infectious and genetic diseases. Since native Taq DNA polymerase is expressed at low level in T. aquaticus, recombinant Escherichia coli system was used to produce Taq DNA polymerase in a large amount. Taq DNA polymerase was expressed as a soluble form under the control of tac promoter in E. coli, and purified by heat treatment and ion exchange chromatographies. The purified Taq DNA polymerase was nearly homogeneous and exhibited a similar DNA amplification activity with a commercial Taq DNA polymerase.
어류의 insulin-like growth factor-I (IGF-I)의 생화학적 작용기작을 연구하기 위하여 한국산 조피볼락의 IGF-I cDNA 유전자 cloning을 행하였다. 완전한 cDNA 유전자 염기서열은 PCR과 RACE 방법을 통하여 얻어진 DNA로부터 결과를 얻을수 있었다. 결정된 IGF-I의 염기서열은 flounder, chinook salmon, human IGF-I의 염기서열과 비교한 결과 각각 93.6%, 90.7%, 85.4%의 높은 상동성을 보였다. 생화학적으로 활성이 있는 재조합 IGF-I을 얻기 위하여 IGF-I의 B-C-A-D domain 부분을 PCR로 얻은 뒤 E. coli BL21(DE3)에 넣어 overexpression 시켰다. Ni-NTA colummn을 사용하여 순수한 재조합 단백질을 정제할수 있었다. 정제된 단백질은 SDS-PAGE 상에서 7 kDa의 단일 band를 보여 주었으며 [$^3H$]-thymidine 결합정도를 측정하는 방법으로 활성을 가지고 있음을 확인할수 있었다.
Choi, Jae Young;Kim, Yang-Su;Wang, Yong;Kang, Joong Nam;Roh, Jong Yul;Shim, Hee Jin;Woo, Soo-Dong;Jin, Byung Rae;Je, Yeon Ho
Molecules and Cells
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제28권1호
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pp.19-24
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2009
The goal of this study was to create a novel baculovirus expression system that does not require recombinant virus purification steps. Transfection of insect cells with transfer vectors containing barnase under control of the Cotesia plutellae bracovirus (CpBV) promoters ORF3004 or ORF3005 reduced cell growth. Co-transfection with bApGOZA DNA yielded no recombinant viruses and nonrecombinant backgrounds. To further investigate the detrimental effects of barnase on insect cells, two recombinant bacmids harboring the barnase gene under control of the CpBV promoters, namely bAcFast-3004ProBarnase and bAcFast-3005ProBarnase, were constructed. While no viral replication was observed when only the recombinant bacmids were transfected, recombinant viruses were generated when the bacmids were co-transfected with the transfer vector, pAcUWPolh, through substitution of the barnase gene with the native polyhedrin gene by homologous recombination. Moreover, no non-recombinant backgrounds were detected from unpurified recombinant stocks using PCR analysis. These results indicate that CpBV promoters can be used to improve baculovirus expression vectors by means of lethal gene expression under the control of these promoters.
In order to express recombinant porcine TGF-${\beta}1$ protein in a baculovirus expression system the entire TGF-${\beta}1$gene containing extra amino acids at the N terminus was cloned into pFBa and pFBb of the Bac-To-$Bac^{TM}$ baculovirus expression system. One of the clones contained 106 extra amino acids and was designated pFBa-106 TGF-${\beta}1$, and the other had 28 extra amino acids and was designated pFBb-28 TGF-${\beta}1$. The orientation of the gene was identified with restriction enzyme mapping and PCR with internal TGF-${\beta}1$ primers. Sf-9 cells were infected at a m.o.i. of 10 by the recombinant viruses generated from the two expected sizes of 55 kD and 46.4kD. these precursor forms of TGF-${\beta}1$ with a polyclonal antibody against human TGF-${\beta}1$. No mature form of TGF-${\beta}1$ protein was detected on SDS gels and an immunoblot indicated that TGF-${\beta}1$ precursor is not properlu processed in insect cells.
A cDNA fragment encoding the chloroplastic fructose-1, 6-bisphosphatase (FBPase) was cloned via PCR from the cDNA library of pea leaves. The cloned cDNA, about 1.05 kbp without signal sequence, was introduced into a pET-28a vector for expression in E. coli strain BL21(DE3)pLysS. The recombinant FBPase was purified through $Ni^+-NTA$ affinity chromatography and characterized. Molecular mass of the monomer was about 42,000. Enzymatic activity of the purified enzyme as the native pea chloroplastic FBPase was the highest at alkaline pH (pH 9.0). The recombinant enzyme was activated by a reducing agent DTT and was insensitive to AMP. The activation energy (Ea) and Arrehenius frequency factor were 42.67 kcal/mol and $2.65{\times}10^{14}/s$, respectively, slightly higher than those of the native enzyme. $K_M$ and $V_{max}$ were $99.98{\mu}M$ and $52.9{\mu}M/min$, respectively, which were comparable with the native enzyme.
Bifidobacterium is recognized as one of the most beneficial microorganisms in our gut. Many researches on bifidobacteria have been done to understand their roles in the gut. The objective of the present study was to develop a bioluminescent labelling plasmid vector for bifidobacteria to facilitate their visualization in vitro, in situ, and in vivo. A plasmid replicon (2.0 kb) of plasmid pFI2576 previously identified from B. longum FI10564 was amplified by PCR and cloned into pUC19 plasmid vector (2.68 kb). The cloned replicon was subcloned into pTG262 ($luc^+$) recombinant plasmid vector (7.4 kb) where a luciferase gene ($luc^+$) from pLuc2 (8.5 kb), an Escherichia coli and lactobacilli shuttle vector, was inserted into pTG262 plasmid vector. The final recombinant DNA, pTG262::pFI2576 rep ($luc^+$), was transferred into a B. catenulatum strain. This recombinant strain showed 3,024 relative luminescence units at $OD_{600}$ value of 0.352. Thus, this recombinant plasmid construct can be broadly used for labelling bifidobacteria.
Adjuvant is an immune enhancer commonly used during vaccination to enhance the host immune response. In the present study, we produced the several recombinant protein from immune related gene of olive flounder (Paralichthys olivaceus). Especially, to produce the soluble type of recombinant protein, we constructed the MBP (Maltose binding protein) fusion G-CSF (Granulocyte colony stimulating factor) recombinant protein among the flounder immune related genes. To verify the immune stimulatory effect and safety of this recombinant protein (rPoGCSF), expression changes of several immune genes were tested using quantitative real-time PCR method with gene specific primer from flounder head kidney leukocytes. As a result, we confirmed that the rPoGCSF has an ability of immune stimulatory effect, also it has broad range of pH and temperature.
To enhance the expression and secretion of pediocin PA-1 from heterologous bacterial hosts, the promoter and deduced signal sequence (PS) of an $\alpha$-amylase gene from a Bifidobacterium adolescentis strain was fused with pediocin PA-1 structural and immunity genes (AB) and the resulting functions were evaluated in Escherichia coli. Two recombinant PCR products were created-one with just the deduced signal sequence and one with the sequence plus the Ser and Thr sequences that are the next two amino acids of the signal sequence. These two products, the PSAB (---AQA::KYY---) and PSABST (---AQA$\underline{ST}$::KYY---), respectively, were inserted into a TA cloning vector (yT&A) and named pPSAB, which was previously reported, and pPSABST. The two recombinant plasmid DNAs were transferred into E. coli JM109 and the transformants displayed antimicrobial activity, where the activity of E. coli JM109 (pPSAB) was stronger than that of E. coli JM109 (pPSABST), indicating that the ST amino acid residues were not necessary for secretion and might have even decreased the antimicrobial activity of recombinant pediocin PA-1.
To obtain the recombinant circumsporozoite (CS) protein for the diagnosis of patients and seroepidemiology of Plasmodium vivax malaria which have been prevalent in northern part of Kyonggido, the CS protein gene was amplified by the polymerase chain reaction (PCR) from genomic DNA of the Korean vivax malaria patient. The gene consists of 1,123 nucleotides except signal peptide sequences and had an uninterrupted reading frame encoding a protein of 374 amino acids with a central region of 20 tandem repeats of the nonapeptide. The CS protein gene was expressed in Escherichia coli and purified, the molecular weight of recombinant CS protein was about 44 kDa (monomer) under denaturing purification and about 65 kDa (dimer) under native purification by SDS-PAGE. The purified recombinant CS protein which has antigenicity to malaria patients in Western blot analysis and Enzyme-linked immunosorbent assay, reacted only with the serum of P. vivax (PV210) infected malaria patients with no cross reaction to the P. falciparum malaria patient. The recombinant CS protein purified in this study will serve as a useful antigen to support the diagnosis of malaria patients and seroepidemiology.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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